Hémocultures positives

ARTICLE DE REVUE 59
Aperçu des différents germes des hémocultures positives et des mesures à prendre
Hémocultures positives: interpré-
tation et prise en charge initiale
Michael Osthoffa, Nina Khannaa, Daniel Goldenbergerb, Victor Wüscherc, Ursula Flückigerc
a Klinik für Infektiologie und Spitalhygiene, Universitätsspital Basel
b Klinische Mikrobiologie, Universitätsspital Basel
c Zentrum für Innere Medizin, Hirslanden Klinik Aarau
Chez l’adulte, les hémocultures font partie des examens diagnostiques les plus fré-
quents à l’hôpital. Elles sont déterminantes pour le diagnostic et la prise en charge
de nombreuses infections, et ce, même si le taux de résultat positif est faible avec
–% et que les contaminations sont fréquentes. L’annonce d’hémocultures posi-
tives requiert généralement une évaluation de la situation clinique et une décision
thérapeutique rapides.
Introduction
Lorsqu’un patient se présente aux urgences avec une
anamnèse de èvre et/ou de frissons ou que les analyses
de laboratoires indiquent une leucocytose/leucopénie
avec une CRP (protéine C réactive) ou une procalcito-
nine élevée, on prélève généralement deux à trois paires
d’hémocultures. En fonction de l’évaluation clinique et
du foyer, le patient reçoit aux urgences une antibiothé-
rapie empirique, souvent par un antibiotique à large
spectre, avant d’être transféré dans un autre service ou
envoyé en soins intensifs. L’annonce d’hémocultures
positives parvient aux médecins  à  heures plus
tard (parfois seulement après  à jours en cas de germes
à croissance lente). Dès que le médecin en charge a reçu
l’information, celui-ci devrait se demander si l’hémo-
culture positive correspond à la maladie infectieuse
pour laquelle il traite le patient, ou bien s’il s’agit d’une
contamination et qu’il convient de revoir le diagnostic.
Par ailleurs, il convient d’évaluer si l’antibiothérapie
initiée doit être modiée et s’il convient de passer d’un
antibiotique à large spectre à un antibiotique à spectre
plus étroit
(streamlining)
. Si le patient n’a pas encore
reçu de traitement antibiotique, il faudrait initier en
temps utile (dans les  à heures au maximum) un trai-
tement antibiotique ou, dans le cas de levures, un
traite ment antimycotique.
Dès que les hémocultures s’avèrent positives, le labora-
toire réalise une coloration de Gram de manière à ce
que la première notication que reçoivent les méde-
cins traitants spécie aussi si les hémocultures sont
positives à des coques ou bâtonnets Gram-positifs ou
bien à des coques, bâtonnets Gram-négatifs ou levures.
L’identication précise comprenant un test de résistance
s’eectue  à heures plus tard. Au sein de l’Hôpital
universitaire de Bâle, le temps jusqu’à l’identication
d’une hémoculture positive a pu être réduit à heures
grâce à la désorption-ionisation laser assistée par ma-
trice couplée à la spectrométrie de masse à temps de
vol (MALDI-TOF MS), ce qui permet une adaptation plus
rapide du traitement antibiotique et, le cas échéant,
une recherche du foyer []. Dans cet article, nous souhai-
tons décrire les questions que doit se poser le médecin
Michael Ostho
SWISS MEDICAL FORUM – FORUM MÉDICAL SUISSE 2016;16(3):59–67

ARTICLE DE REVUE 60
traitant en cas d’hémocultures positives et en vue de
l’identication des germes et l’antibiogramme, an
que le patient bénécie d’une prise en charge optimale.
Cet article ne remplace en aucun cas les avis des infec-
tiologues, qu’il convient de consulter en cas d’hémo-
cultures positives. Par ailleurs, il n’est pas possible d’en-
trer en détail dans chaque tableau clinique infectieux
et, en particulier, il n’est pas possible d’expliquer plus
en détail le traitement antibiotique. L’objectif de cet
article est de donner au médecin non formé en infec-
tiologie un aperçu des diérents spectres bactériens
des hémocultures positives chez l’adulte et de lui expli-
quer les mesures à prendre par la suite. Cet article
n’abordera pas le problème de l’utilité et de l’interpréta-
tion des hémocultures chez le nouveau-né et l’enfant.
Spectre de germes en cas d’hémoculture
positive
En Europe comme en Amérique du Nord, les staphy-
locoques dorés
(Staphylococcus aureus)
, les staphylo-
coques à coagulase négative (SCN),
Escherichia coli
et
autres entérobactéries représentent les germes les plus
fréquemment isolés dans les hémocultures [,]. Cela
recoupe les données de l’Hôpital universitaire de Bâle
de l’année  (g. ). Le taux de bactériémies polymi-
crobiennes peut représenter jusqu’à % de l’ensemble
des bactériémies pertinentes [].
Quand réaliser des hémocultures?
Avec  à %, le «taux de résultats positifs» des hémo-
cultures est très faible et se voit encore réduit en raison
d’un taux de contamination pouvant aller jusqu’à %
[,]. Au sein de l’Hôpital universitaire de Bâle, entre
 et , un total de  des  hémocultures
prélevées étaient positives (,%). Les critères permet-
tant de prédire une bactériémie avec une grande pro-
babilité font défaut. Ainsi, considérées séparément, ni
la èvre, ni la leucocytose, ni une CRP élevée n’in-
diquent une hémoculture positive avec une valeur pré-
dictive susamment élevée [,]. Même les médecins
expérimentés sont incapables d’évaluer avec abilité
lasurvenue d’une bactériémie [,].
Chez quels patients une mise en hémoculture est-elle
«bénéque» (tab.)? Chez les patients immunodépri-
més et les patients âgés, il convient de réaliser des hé-
mocultures en cas de suspicion d’infection pertinente
(nécessitant une hospitalisation) ou de dégradation de
l’état général d’étiologie inconnue, car ces groupes
depatients présentent un risque élevé de bactériémies
et ne présentent pas toujours les signes cliniques clas-
siques (èvre, leucocytose, frissons, etc.) [,]. En outre,
un prélèvement d’hémocultures doit obligatoirement
être réalisé avant toute prise d’antibiotiques chez les
patients atteints de sepsis sévère ou de choc septique.
Le taux d’hémocultures positives est proportionnel à
Tableau 1: Indications pour le prélèvement d’hémocultures
en cas de suspicion d’infection (non exhaustif).
– Patients gravement malades: choc septique et sepsis
(sévère), patients en soins intensifs
– Diagnostics (suspectés): endocardite, fièvre d’origine
inconnue, arthrite septique, spondylodiscite, méningite
bactérienne, cholangite, infection du cathéter, pyéloné-
phrite (en prise en charge stationnaire ou lorsque le pré-
lèvement d’une culture urinaire n’est pas possible avant
l’adminis tration d’antibiotiques)
– Consommation de drogues par voie intraveineuse, immuno-
suppression, patients âgés (>65–70ans), corps étranger
intravasculaire (pacemaker, valve cardiaque artificielle,
cathéter veineux central), particulièrement en cas de fièvre
et de suspicion d’infection pertinente ou de dégradation
inexpliquée de l’état général
– Patient fébrile de retour de pays tropicaux
– Fièvre neutropénique
– Recherche ciblée de bactériémie supplémentaire en cas
de mise en évidence de staphylocoque doré ou de Candida
spp. à partir de biopsies tissulaires profondes avant le
début d’une antibiothérapie ciblée
– Frissons (à distinguer des légers tremblements)
– Hémocultures de suivi après 48–72heures en cas
de bactériémie à staphylocoque doré et Candida spp.
ou en cas d’endocardite infectieuse
Figure 1: Répartition en pourcentage des isolats de l’ensemble des hémocultures
positives au sein de l’Hôpital universitaire de Bâle (2013; n = 1514).
% de l’ensemble des hémocultures positives
E. coli
SCN
Streptocoques
K. pneumoniae
Candida spp.
E. faecium
S. pneumoniae
Enterobacter spp.
E. faecalis
Staphylocoque doré
SWISS MEDICAL FORUM – FORUM MÉDICAL SUISSE 2016;16(3):59–67

ARTICLE DE REVUE 61
la gravité de l’état du patient (<% chez les patients
ambulatoires avec èvre contre >% en cas de choc
septique []). Le seul signe clinique relativement able
d’une bactériémie est la présence de forts frissons (à
diérencier des légers tremblements) []. D’autres in-
dications indépendantes du degré de la maladie sont la
suspicion d’une endocardite et l’évaluation d’une èvre
d’origine inconnue (FOI), les patients consommant des
drogues par voie intraveineuse, les patients avec un
cathéter veineux central (CVC) ou un corps étranger
endovasculaire (par ex. pacemaker, valve cardiaque ar-
ticielle, etc.), la suspicion d’une infection en rapport
avec la maladie, une détérioration inexpliquée de l’état
général ou encore une augmentation inexpliquée des
paramètres inammatoires. En outre, en présence d’un
foyer infectieux cliniquement pertinent (nécessitant
une hospitalisation), des hémocultures devraient être
prélevées (par ex. en cas de suspicion d’arthrite septique,
de spondylodiscite, de cholangite ou de méningite bac-
térienne), en particulier si un traitement antibiotique
par voie intraveineuse est prévu.
Pour tous les autres patients, la probabilité pré-test d’une
hémoculture positive et ses conséquences doivent être
prises en compte. La mise en évidence d’une èvre
>, °C ne doit en aucun cas entraîner le prélèvement
automatique d’hémocultures, car cela abaisse certaine-
ment encore le taux d’hémocultures positives déjà faible
et engendre des dépenses inutiles. Par exemple, le taux
d’hémocultures positives en cas de pneumonie acquise
en ambulatoire chez des patients ne nécessitant pas de
prise en charge en soins intensifs est inférieur à %
[]. De plus, même une hémoculture positive n’a que
rarement une inuence sur la prise en charge d’une
pneumonie, en tout cas dans les pays où les taux de ré-
sistance aux principaux agents pathogènes de la pneu-
monie sont faibles []. Il en va de même pour l’érysipèle
non compliqué et la cellulite. Toutefois, des hémocul-
tures positives permettent généralement de procéder
àune thérapie ciblée avec un spectre d’action souvent
plus réduit ainsi que de localiser le foyer infectieux.
Combien d’hémocultures faut-il prélever?
Une «hémoculture» est toujours composée de deux
acons: le premier, aérobie; le second, anaérobie. Bien
que l’incidence des bactériémies anaérobies ait baissé
au cours des dernières années, le prélèvement exclusif
de acons d’hémoculture aérobie n’est pas conseillé.
Nous recommandons le prélèvement de deux acons
d’hémoculture remplis de manière optimale avant le
début de l’antibiothérapie. Cette recommandation est
basée sur les données d’une publication de  [] et
sur le fait que la quantité de sang cultivé inuence de
manière décisive la sensibilité des hémocultures. Pour
chaque millilitre de sang, la probabilité de découvrir
une bactériémie augmente de –% [, ]. Deux hémo-
cultures permettent généralement d’identier avec
abilité jusqu’à % des bactériémies; ce taux est de
plus de % avec trois hémocultures. Hormis la quan-
tité de sang, le type de germe en cause est décisif. Dans
le cas d’une hémoculture (paire ou bien  × acons)
prélevée dans le cadre d’une étude, la probabilité de dé-
tecter un staphylocoque doré était déjà de % []; pour
trois hémocultures (paires ou  × acons), cette pro-
babilité était de %. En revanche, les
Pseudomonas
aeruginosa
et
Candida spp.
ne peuvent être mises en
évidence dans une hémoculture que dans % des cas.
En contrepartie de la plus grande sensibilité obtenue par
le prélèvement de plus de deux hémocultures, on re-
trouve des coûts élevés, une limitation du confort/de la
sécurité du patient ainsi qu’une spécicité plus faible
en raison d’un taux de contamination plus élevé. Dans
la mesure où la sensibilité gagnée par le prélèvement
d’une troisième culture est faible (%), le prélèvement
de deux hémocultures est considéré comme optimal.
Les suspicions d’endocardite, les infections par
Candida
spp
. ou d’autres organismes plus diciles à cultiver
ainsi que la FOI représentent des scénarios dans les-
quels le prélèvement de trois hémocultures nous paraît
judicieux. En outre, chez les patients disposant de CVC,
des hémocultures devraient être prélevées à partir de
chaque cathéter en plus d’un prélèvement périphérique
[] (voir également la partie sur les infections des ca-
théters). Une période d’incubation prolongée de plus
de jours n’est plus nécessaire que dans des cas excep-
tionnels.
Contrairement au volume, le prélèvement séparé d’hé-
mocultures sur une certaine période ne joue pour la
sensibilité qu’un rôle secondaire. On distingue d’ordi-
naire les bactériémies transitoires, intermittentes et
continues []. Les interventions chirurgicales avec lé-
sion de la peau/des muqueuses et les tissus non stériles
(biopsies, incisions/drainages d’abcès mais aussi bros-
sage des dents) entraînent des bactériémies de courte
durée, tandis que les infections intravasculaires (endo-
cardite, infection du cathéter ou de la gree, plus rare-
ment au début d’une infection par le typhus ou la
brucellose) entraînent généralement des bactériémies
conti nues. Autrefois, on considérait les infections au
niveau des organes (pyélonéphrite, pneumonie) ou les
abcès non drainés comme le prototype d’une bactérié-
mie intermittente. Une question fait cependant débat: la
bactériémie est-elle vraiment intermittente dans ces cas
ou bien s’agit-il en réalité d’une bactériémie continue
avec alternance d’épisodes de grande densité des germes
dans le sang et d’épisodes de bactériémie
low-level
[]?
SWISS MEDICAL FORUM – FORUM MÉDICAL SUISSE 2016;16(3):59–67

ARTICLE DE REVUE 62
Le fait que le volume sanguin ait une inuence bien plus
grande sur la sensibilité des hémocultures que le carac-
tère séparé et décalé de leur prélèvement [,] sug-
gère qu’il s’agit bien la plupart du temps de bactérié-
mies pseudo-intermittentes.
Habituellement, il est recommandé de réaliser un pré-
lèvement de deux hémocultures à au moins minutes
d’intervalle (sites de prélèvement séparés). En cas de
suspicion d’une endocardite chez des patients ayant
reçu un traitement antibiotique préalable ou bien lors
de l’évaluation de FIO, il est recommandé de procéder à
un prélèvement sur heures (par ex. en cas d’endo-
cardite subaiguë: une hémoculture lors de l’entrée, une
après heures et une après  heures, et si cela se justie
cliniquement, à nouveau après heures) (tab. ). Chez
les patients gravement malades (choc septique), nous
recommandons un prélèvement simultané de deux
àtrois hémocultures sans intervalle, an que le début
d’une antibiothérapie ne soit pas retardé par un prélè-
vement en série de deux hémocultures et que la sensi-
bilité de cette approche soit comparable [, , , ].
En règle générale, la sensibilité des hémocultures baisse
considérablement après l’initiation d’un traitement an-
tibiotique [,]. Toutefois, il est parfois judicieux de
prélever des hémocultures, surtout si le patient est gra-
vement malade ou en cas de suspicion d’endocardite
[]. Néanmoins, si des hémocultures ont été prélevées
avant le début du traitement, nous déconseillons de
procéder à des prélèvements répétés dans les premières
heures comme c’est souvent le cas en présence de
èvre, car le bénéce est moindre et le traitement est
rarement inuencé []. En sont exclues les infections
par staphylocoque doré et
Candida spp.
ainsi que les in-
fections de cathéter sans retrait de celui-ci, pour les-
quelles il est décisif pour la suite de la prise en charge
de documenter les hémocultures négatives après  à
heures [, , ].
Hémocultures positives – démarche
àsuivre après obtention de la coloration
deGram
Coques Gram-positifs
La coloration de Gram permet de distinguer les coques
Gram-positifs en amas des coques en chaînettes, ce qui
permet de les identier et d’optimiser le traitement
anti biotique.
Les coques Gram-positifs en amas sont généralement
des staphylocoques. On distingue les staphylocoques
dorés des SCN (
S. epidermidis, S. lugdunensis, S. capitis
,
etc.). Les coques Gram-positifs en chaînettes ou paires
(diplocoques) sont le plus souvent des streptocoques
(par ex.
S. pneumoniae
) ou des entérocoques (
E. faecalis
ou
E. faecium
).
En présence de coques Gram-positifs en amas, il est es-
sentiel de diérencier le staphylocoque doré des SCN.
En eet, en présence de staphylocoques dorés, une re-
cherche agressive du foyer (par ex. arthrite, endocardite,
spondylodiscite, etc.) et le cas échéant son traitement
s’avèrent nécessaires. Parallèlement, le spectre du trai-
tement empirique généralement vaste peut être resserré
avec une pénicilline (ucloxacilline) ou une céphalospo-
rine (céfazoline) ecace contre le staphylocoque doré
(streamlining)
; il se peut également qu’il soit nécessaire
de mettre en place un traitement MRSA (traitement
des staphylocoques dorés résistant à la méticilline; van-
comycine ou daptomycine) en cas d’épidémiologie cor-
respondante ou de facteurs de risque (tab.). En outre,
la réalisation d’hémocultures de suivi [] ainsi que la
consultation de l’avis des infectiologues sont recom-
mandées []. A l’inverse, en cas de SCN, il s’agit le plus
souvent d’une contamination ou d’infections moins
agressives (infections de cathéters, etc.). La mise en
évi
dence de SCN chez les patients présentant un corps
étranger endovasculaire (en particulier valves cardiaques
articielles) et la mise en évidence de
S. lugdunensis
(germe du groupe des SCN ayant la même virulence
que le staphylocoque doré) font oce d’exceptions et
devraient, jusqu’à preuve du contraire, être considé-
rées comme pertinentes.
Les coques Gram-positifs en chaînettes sont rarement
dus à une contamination. Souvent, une infection perti-
nente se cache derrière, par ex. par
S. pyogenes
ou
S. aga-
lactiae
, par des streptocoques du groupe
anginosus
ou
bovis
, d’autres espèces de streptocoques viridans (gé-
néralement dans le cadre d’une endocardite ou d’une
mucite post-chimiothérapie), des entérocoques ou
despeptostreptocoques anaérobies
(Finegoldia magna)
.
Tous ont en commun le fait qu’ils sont généralement
sensibles à la pénicilline. Ainsi, en cas de tableau cli-
nique compatible (par ex. érysipèle en cas de
S.pyogenes
,
Tableau 2: Directives pour le prélèvement d’hémocultures.
– 2 × 2 flacons d’hémocultures à intervalle de 30 minutes
avant le début d’un traitement antibiotique en cas d’indication
correspondante (voir tab. 1), ou
– 2–3 × 2 flacons d’hémocultures simultanées chez les patients
gravement malades afin de ne pas retarder l’initiation
d’un traitement antibiotique, ou
– En présence de cathéter veineux central (CVC) ou de cathéter
à chambre implantable, prélèvement simultané d’une hémo-
culture à partir du CVC et d’une hémoculture périphérique.
– Remplissage optimal des flacons d’hémoculture (10 ml).
– Prélèvement aseptisé afin d’éviter les contaminations.
– Indications pour >2 × 2 flacons d’hémocultures sur 24 heures
à intervalle de >2 heures: endocardite, fièvre d’origine incon-
nue, patient avec traitement antibiotique préalable, agents
pathogènes difficilement cultivables (Candida, Brucella, etc.).
SWISS MEDICAL FORUM – FORUM MÉDICAL SUISSE 2016;16(3):59–67

ARTICLE DE REVUE 63
Tableau 3: Démarche à suivre en cas d’hémoculture positive, en fonction des résultats de la coloration de Gram. Résultat Germe possible Foyer possible Traitement empirique Traitement ciblé Alternatives en cas d’allergie
àlapénicilline
Commentaire
Coques Gram-positifs
en amas
Staphylocoque doréEndocardite, cathéter,
pneumonie, arthrite, spondylodiscite, cellulite,
etc.
Amox./acide clav.Flucloxacilline;
en cas de SARM vancomycine
ou daptomycine
Type IV: céfazoline
Type I: vancomycine, daptomycine
ou linézolide
Avis des infectiologues, recherche agressive du foyer et débridement chirurgical,
échocardiogramme transthoracique, hémocultures de suivi
SCN Contamination vs infec-
tions associées à un corps
étranger*
Amox./acide clav., le cas échéant
vancomycine chez les patients en
cours de traitement antibiotique
Si sensible, flucloxacilline,
sinon vancomycine ou daptomycine
Type IV: céfazoline (si sensible)
Type I: vancomycine ou daptomycine
Répéter l’hémoculture si la contamination n’est pas exclue ou bien en cas de corps
étranger intravasculaire
Coques
Gram-positifs
en chaînettes
StreptocoquesErysipèle/cellulite, endo-
cardite, cholangite,
abcès (cérébral, intra-
abdominal)
Amox./acide clav.Pénicilline (± gentamicine
en cas d’endocardite) Amox./acide clav. en cas
d’infection polymicrobienne
Type IV: céfazoline
Type I: vancomycine
Avis des infectiologues en cas d’endocardite
Contaminations rares (streptocoques
viridans) Infection polymicrobienne possible
Enterococcus faecalis
Endocardite, urosepsis,
cholangite, bactériémie primaire
Amox./acide clav.
ou pip./taz. ou imipénem
Amoxicilline (+ gentamicine
en cas d’endocardite); amox./ acide clav. ou pip./taz. en cas
d’infection polymicrobienne
Type I ou IV: vancomycine,
(+ gentamicine en cas d’endocardite),
daptomycine
Avis des infectiologues
Résistant aux céphalosporines
Enterococcus faecium
Cathéter, mucosite, péri- tonite tertiaire
Vancomycine ou daptomycine,
car >90% résistants aux anti-
biotiques bêta-lactames
Vancomycine; daptomycine;
linézolide
Avis des infectiologues
Drainage de l’abcès, ablation du cathéter
Diplocoques
Gram-positifs
Streptococcus
pneumoniae
Pneumonie, méningite,
bactériémie primaire, etc.
Amox./acide clav. ou
ceftriaxone ± vancomycine encas
de méningite
PénicillineType IV: ceftriaxone
Type I: vancomycine ou moxifloxacine
Bâtonnets
Gram-négatifs
Enterobacte-
riaceae
Milieu ambulatoire:
uro sepsis, cholangite, diverticulite, entérite
Milieu hospitalier: pneumonie, cathéter, péri- tonite, infection des plaies
Amox./acide clav. ou ceftriaxone; pip./taz.
En cas de facteurs de risque de
ESBL: ertapénem ou méropénem
En fonction de la résistance etdu foyer: ceftriaxone, amox./acide clav., ertapénem,
ciprofloxacine, etc.
Type IV: ceftriaxone ou céfépime
Type I: ciprofloxacine, le cas échéant méropénem
Recherche du foyer
Pseudomonas
aeruginosa
Pneumonie, cathéter,
mucosite, urosepsis
Pip./taz. ou
céfépime
Pip./taz. ou ceftazidime
ou céfépim ou ciprofloxacine ouméropénem
Type IV: ceftazidime, céfépim
Type I: ciprofloxacine, le cas échéant méropénem
Avis des infectiologues
Anaérobies (groupe
des Bacteroides fragilis, fusobactéries)
Infections abdominales Syndrome de Lemierre
Amox./acide clav.Amox./acide clav. ou pip./taz.,
car infections polymicrobiennes
fréquentes
Type IV: ceftriaxone + métronidazole
Type I: ciprofloxacine + métroni-
dazole; le cas échéant méropénem
Infections polymicrobiennes fréquentes
Bâtonnets
Gram-positifs
Listeria
monocytogenes
Gastro-entérite, méningite,
chorioamniotite
Amox./acide clav.Ampicilline (± gentamicine
ou TMP-SMX en cas de méningite)
Type I ou IV: méropénem,
TMP-SMX
Avis des infectiologues
Patients à risque: femmes enceintes,
personnes immunodéprimées
Résistant aux céphalosporines
Propionibacterium acnes, Coryne-
bacterium spp.
Contamination vs infec- tions associées à un corps
étranger*
Amox./acide clav. en cas de
suspicion d’infection
En fonction de la résistance,
pénicilline ou ceftriaxone ou
vancomycine
VancomycineContaminations le plus souvent, surtout
encas d’hémocultures positives isolées
Diplocoques
Gram-négatifs
Neisseria meningitidis
Méningite, sepsis, arthriteCeftriaxone Pénicilline ou ceftriaxone ou
ciprofloxacine
Type IV: ceftriaxone
Type I: ciprofloxacine
Levures Candida albicans
Candida non- albicans° Saccharomyces
cervisiae
Infections abdominales, infections du cathéter
Fluconazole
En cas de facteurs de risque
(soins intensifs, traitement préa- lable par azolés): échinocandine
En fonction de l’identification
et de la résistance:
fluconazole ou échinocandine
Avis des infectiologues
Les antibiotiques présentés dans le tableau sont des recommandations pour un traitement intraveineux. La posologie et la durée du traitement dépendent entre autres de la fonction rénale, de la fonction hépatique, et du foyer. Les dosages
suivants peuvent servir d’indication en cas de fonction rénale normale (taux de filtration glomérulaire >60 ml/min): Pénicilline G 4 × 5 millions d’unités; amoxicilline 4 × 2 g (6 × 2 g en cas d’endocardite); flucloxacilline 4 × 2 g (6 × 2 g en cas d’endocardite); amox./acide clav. 3 × 2,2 g; pip./taz. 3 × 4,5 g; céfazoline 3 × 2 g; ceftriaxone 1 × 2 g (2 × 2 g en cas de méningite), ceftazidime 3 × 2 g; céfépim 3 × 1 g (3 × 2 g en présence de P. aeruginosa et d’infections sévères); ertapénem
1 × 1g; méropénem 3 × 1 g (3 × 2 g en présence de P. aeruginosa et d’infections sévères); imipénem 4 × 500 mg; daptomycine 6 mg/kg PC (le cas échéant 8–10 mg/kg PC en cas d’infection potentiellement mortelle ou de mise en évidence
destaphylocopque doré ou de E. faecium); vancomycine dosage standard 2 × 1 g, en cas d’infection sévère ou de MRSA, dose de charge de 25 mg/kg PC (max. 2,5 g), puis 2 × 15 mg/kg PC; linézolide 2 × 600 mg; ciprofloxacine 2–3 × 400mg;
moxifloxacine 1 × 400 mg; TMP-SMX: 2–3 × 5 mg/kg PC Composant du triméthoprime; métronidazole 3 × 500 mg; fluconazole 800 mg en dose de charge, puis 1 × 400 mg.
* Infections associées à un corps étranger: endocardite sur valve artificielle, infections de cathéter et de cathéter à chambre implantable, infections de pacemaker, infection de prothèse
° Candida non-albicans: C. glabrata, C. paraspilosis, C. tropicalis, C. krusei
Abréviations: Amox./acide clav. = amoxicilline/acide clavulanique; pip./taz. = pipéracilline/tazobactam; TMP-SMX = triméthoprime-sulfaméthoxazole; SCN = staphylocoques à coagulase négative; PC = poids corporel.
SWISS MEDICAL FORUM – FORUM MÉDICAL SUISSE 2016;16(3):59–67