Étude des projections axonales sérotoninergiques dans un modèle

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Étude des projections axonales sérotoninergiques dans
un modèle murin de la maladie de Parkinson et des
dyskinésies induites par la lévodopa
Mémoire
Charles-Étienne Couture
Maîtrise en neurobiologie
Maître ès sciences (M.Sc.)
Québec, Canada
© Charles-Étienne Couture, 2016
Résumé
OBJECTIFS: La libération de dopamine par les afférences à sérotonine (5-HT) du striatum constitue un
déterminant pré-synaptique important des dyskinésies induites par la L-Dopa (DILs), un effet délétère du
traitement pharmacologique de la maladie de Parkinson. En effet, les axones 5-HT seraient en mesure de
libérer de façon non-physiologique de la dopamine lorsque la L-Dopa est administrée au patient, contribuant
ainsi à l’expression des DILs. Certaines afférences striatales 5-HT contiennent un transporteur vésiculaire du
glutamate (VGluT3) et nous croyons que sa présence puisse avoir un effet synergique sur la libération de
dopamine. L’objectif général de ce mémoire est donc d’évaluer la quantité de VGluT3 présent au sein des
axones 5-HT et de mesurer son implication dans l’expression des DILs. MÉTHODES : Dix-huit souris C57/Bl6
ont été séparées en trois groupes expérimentaux. Douze souris ont reçu une injection intracérébrale de 6hydroxydopamine (6-OHDA) dans le faisceau prosencéphalique médian afin de léser les afférences
dopaminergiques du striatum. Six souris lésées ont reçu des injections systémiques de L-Dopa (12 jours, 1
fois/jour). Six autres souris ont reçu une injection intracérébrale du véhicule afin de servir de contrôle. La
sévérité des mouvements involontaires anormaux induits par la L-Dopa (équivalent des dyskinésies) a été
quantifiée selon une échelle reconnue. Un double marquage en immunofluorescence pour le transporteur
membranaire de la 5-HT (SERT) et le VGluT3 a permis d’évaluer la densité des varicosités SERT+ et
SERT+/VGluT3+ dans le striatum dorsal et de comparer ces données entre les trois groupes expérimentaux.
RÉSULTATS: Chez les trois groupes de souris, un faible pourcentage des varicosités axonales 5-HT sont
également VGluT3+. Ces varicosités doublement marquées sont souvent retrouvées sur une même branche
axonale. Aucune différence significative n’a été observée entre les trois groupes expérimentaux en ce qui a
trait à la proportion de varicosités SERT+ qui contiennent le VGluT3+. CONCLUSION: Nos données
expérimentales ne nous permettent pas de conclure que la densité des varicosités axonales SERT+ ou
SERT+/VGluT3+ au sein du striatum dorsal varie en fonction de la sévérité des mouvements involontaires
anormaux induits par l’administration de L-Dopa.
iii
Abstract
Objectives: The release of dopamine by serotonin (5-HT) afferent projections of the striatum is known to be a
major pre-synaptic determinant of L-Dopa-induced dyskinesia, a debilitating side effect of the pharmacological
treatment of the Parkinson’s disease. The fact that 5-HT axons are able to release dopamine in a nonphysiological manner following the administration of L-Dopa might lead to the expression of dyskinesias. Some
striatal 5-HT axons are known to contain VGluT3 and we hypothesize that this vesicular glutamate transporter
has a synergic effect on dopamine packaging into synaptic vesicles and its release. The main goal of this
research project is to measure VGluT3 in 5-HT striatal afferent projections and to evaluate its role in the
expression of dyskinesias. Methods: Eighteen C57Bl6 mice were divided in 3 experimental groups. Twelve
mice received intracerebral injection of 6-hydroxydopamine (6-OHDA) in the medial forebrain bundle to lesion
the striatal dopaminergic afferent projections. Systematic daily injections of L-Dopa (during 12 days) were
administrated in 6 of these 6-OHDA-lesioned mice. The other 6 mice received injections of the vehicle only
and served as controls. The abnormal involuntary movements (the equivalent of dyskinesias in primates) were
scored using a well-known and widely used motor scale. Double immunofluorescence for the 5-HT membrane
transporter (SERT) and VGluT3 was performed to evaluate the density of immunolabeled axon varicosities
and assess statistical differences between the 3 experimental groups. Results: Among the 3 groups, only a
small percentage of 5-HT axonal varicosities express VGluT3 and these doubly labeled varicosities often occur
along the same axonal branch. There is no significant difference between the 3 experimental groups regarding
the density of SERT or SERT/VGluT3 axon varicosities in the dorsal striatum. Conclusion: Our data indicate
that the density of SERT or SERT/VGluT3 immunolabeled axon varicosities in the dorsal striatum is not
correlated with the severity or the expression of abnormal involuntary movement following L-Dopa
administration
v
Table des matières
Résumé .............................................................................................................................................. iii
Abstract .............................................................................................................................................. v
Table des matières........................................................................................................................... vii
Liste des tableaux ............................................................................................................................. ix
Liste des figures ............................................................................................................................... xi
Liste des abréviations .................................................................................................................... xiii
Remerciements ................................................................................................................................ xv Introduction .................................................................................................................... 1 1.1 Historique ................................................................................................................................................ 1
1.2 Les noyaux du raphé.............................................................................................................................. 1
1.3 Le noyau raphé dorsal ........................................................................................................................... 2
1.3.1 Contenu chimique des neurones du raphé dorsal chez la souris .............................................. 4
1.3.2 La sérotonine................................................................................................................................... 5
1.3.3 Le glutamate .................................................................................................................................... 7
1.4 Projections sérotoninergiques ascendantes en provenance du noyau raphé dorsal ................. 10
1.4.1 L’innervation sérotoninergique des ganglions de la base ........................................................ 10
1.4.1 Importance de la collatéralisation des axones sérotoninergiques ........................................... 11
1.5 La maladie de Parkinson et l’implication de la sérotonine ............................................................... 13
1.5.1 Les symptômes de la maladie de Parkinson .............................................................................. 13
1.5.2 Les caractéristiques neuropathologiques de la maladie de Parkinson ................................... 14
1.5.5 Les modèles animaux de la maladie de Parkinson .................................................................... 15
1.5.6 Les traitements pharmacologiques de la maladie de Parkinson .............................................. 16
1.5.7 Les dyskinésies induites par la L-Dopa ...................................................................................... 17
1.5.8 L’implication de la sérotonine dans les dyskinésies induites par la L-Dopa .......................... 18
1.6 Objectifs du projet .............................................................................................................................. 19
2. Matériel et Méthode .................................................................................................................................... 19
2.1 Les animaux .......................................................................................................................................... 19
2.2 Injections unilatérales de 6-hydroxydopamine (6-OHDA)................................................................. 20
2.3 Traitement à la L-Dopa ......................................................................................................................... 20
2.4 Traitement du tissu .............................................................................................................................. 21
2.5 Immunomarquage TpH2 / VGlut3 ........................................................................................................ 21
2.6 Immunomarquage SERT / VGluT3 ...................................................................................................... 22
2.8 Immunohistochimie TH ........................................................................................................................ 23
2.9 Stéréologie ............................................................................................................................................ 24
2.11 Statistiques ......................................................................................................................................... 26
3. Résultats ...................................................................................................................................................... 27
vii
3.1-Observations générales ........................................................................................................................... 27
3.2 Description du contenu neurochimique des corps cellulaires formant les noyaux du raphé dorsal
et médian ..................................................................................................................................................... 27
3.3 Distribution régionale des varicosités axonales SERT et VGluT3 en condition normale .............. 31
3.4 Validation du modèle parkinsonien et dyskinétique ......................................................................... 36
3.5 Densité des varicosités axonales SERT+ et SERT+/VGluT3+ dans le striatum dorsal chez la
souris parkinsonienne et dyskinétique .................................................................................................... 36
4. Discussion ................................................................................................................................................... 40
4.1 Description de la distribution de SERT et de VGluT3 ....................................................................... 40
4.2 L’innervation SERT+/VGlut3+ du système ventriculaire ................................................................... 41
4.3 Quantification stéréologique des varicosités axonales en contexte parkinsonien et dyskinétique
..................................................................................................................................................................... 42
4.4 Considérations techniques ................................................................................................................. 43
4.5 L’impact du nombre de varicosités sérotoninergiques riches en VGluT3 sur la sévérité des
mouvements involontaires anormaux induits par la L-Dopa ................................................................. 43
4.6 Limites du modèle murin parkinsonien .............................................................................................. 45
5. Conclusion .................................................................................................................................................. 47
Bibliographie ................................................................................................................................................... 49
viii
Liste des tableaux
Tableau 1 Distribution régionale du VGluT3, du SERT ainsi que de leur co-localisation dans les varicosités
axonales. .................................................................................................................................................. 33
ix
Liste des figures
Figure 1: Distribution des neurones 5-HT dans le tronc cérébral humain. .......................................................... 3 Figure 2: Sections transversales des noyaux du raphé dorsal. .......................................................................... 6 Figure 3: Mécanismes fonctionnels des transporteurs vésiculaires et de leur synergie moléculaire .................. 8 Figure 4: Conceptualisation du protocole expérimental .................................................................................... 25 Figure 5: Sections transversales des noyaux raphé dorsal et médian immunomarquées pour la TpH et le
VGluT3. .................................................................................................................................................... 29 Figure 7: Image confocale à fort grossissement montrant la distribution du VGluT3 et des axones SERTimmunomarqués dans les principales composantes associées aux ganglions de la base. ..................... 34 Figure 8: Image confocale à fort grossissement du marquage VGluT3 et SERT retrouvé dans certaines
structures associées au système limbique chez la souris. ....................................................................... 35 Figure 9: Validation du protocole expérimental ainsi que du modèle animal .................................................... 37 Figure 10: Histogramme comparant la densité des varicositées axonales SERT et SERT/VGluT3 ainsi que le
nombre de varicosités axonales par mm d'axone pour le groupe sham, 6-OHDA et L-DOPA. ............... 39 xi
Liste des abréviations
+
5-HT
6-OHDA
AIMs
D1
DRc
DRd
DRif
DRv
DRvl
GB
L-Dopa
DILs
MFB
MP
NRD
NRM
SERT
SN
SNc
SNr
VGluT1
VGluT2
VGluT3
VGLUT3
VMAT2
Immunopositif
Immunonégatif
Sérotonine
6-hydroxydopamine
Mouvements involontaires anormaux
Récepteur dopaminergique 1
Sous-noyau caudal du raphé dorsal
Sous-noyau dorsal du raphé dorsal
Sous-noyau interfasciculaire du raphé dorsal
Sous-noyau ventral du raphé dorsal
Sous-noyaux ventrolatéraux du raphé dorsal
Ganglions de la base
3,4-dihydroxyphénylalanine
Dyskinésies induite par la L-Dopa
Faisceau prosencéphalique médian
Maladie de Parkinson
Noyau raphé dorsal
Noyau raphé médian
Transporteur sérotoninergique
Substance noire
Substance noire compacte
Substance noire réticulée
Transporteur vésiculaire du glutamate 1
Transporteur vésiculaire du glutamate 2
Transporteur vésiculaire du glutamate 3
Gène du transporteur vésiculaire du glutamate 3
Transporteur vésiculaire des monoamines 2
xiii
Remerciements
Mes premiers remerciements vont à tous ceux qui ont rendu possible la réalisation de ce projet.
Je tiens à remercier tout spécialement mon directeur de recherche Dr Martin Parent pour m’avoir accordé
l’opportunité d’intégrer son laboratoire et pour avoir partagé avec moi sa passion de la neuroanatomie et de la
recherche fondamentale.
J’aimerais également remercier Marie-Josée Wallman, la professionnelle de recherche de notre laboratoire,
pour sa gentillesse et son support technique, éducatif et humain tout au long de la réalisation de ce projet. Le
laboratoire n’aurait pas été le même sans mes estimés collègues Lara Eid, Dave Gagnon, Sarah Petryszyn et
Laurent Goetz qui m’ont aidé à cheminer dans le processus de la réalisation de ce mémoire. C’est grâce à
vous s’il faisait si bon venir travailler à compter des varicosités!
Je remercie particulièrement les docteurs André Parent et Martin Lévesque pour avoir accepté de faire partie
du comité chargé de l’évaluation de ce mémoire.
Ces remerciements ne seraient pas complets sans prendre le temps de remercier toute la famille et les amis
qui ont été d’un grand support. Je tiens à remercier particulièrement ma conjointe Laurence Plouffe qui a
accepté que je parte réaliser mon rêve de faire de la recherche et qui a dû endurer la distance. Elle fut
également d’une aide précieuse lors de la rédaction du mémoire. Encore Merci.
xv
Introduction
1.1 Historique
Découverte dans les années 1930 (Vialli and Erspamer, 1937), la sérotonine ou 5-hydroxytryptamine (5-HT)
fut d’abord nommée entéramine. En effet, on s’est aperçu que l’extrait de cellules entérochromaffines
contenant de l’entéramine pouvait induire des contractions intestinales. Parallèlement à l’expérience sur
l’entéramine, en 1949, on mentionne le terme sérotonine (5-HT) suite à la découverte d’une molécule
vasoconstrictrice (Rapport et al., 1949). Toutefois, ce n’est qu’en 1952 que l’entéramine et la 5-HT furent
reconnues comme étant une seule et même molécule (Erspamer, 1952). La première démonstration de la
présence de 5-HT dans le cerveau fut rapportée un an plus tard (Twarog et Page, 1953 cité dans Woolley &
Shaw, 1954) et Woolley & Shaw (1954) furent les premiers à suggérer l’implication de la 5-HT dans certaines
maladies mentales. Aujourd’hui, la 5-HT est reconnue comme un neurotransmetteur majeur du système
nerveux central jouant, entre autres, un rôle crucial dans les processus impliquant la modulation de l’humeur,
la perception sensorielle, la récompense, la colère, l’agression, l’appétit, la mémoire, la sexualité, l’attention et
la locomotion (Berger & al., 2009).
1.2 Les noyaux du raphé
Au début des années 1960, Falck et Hillarp découvrent que l’imprégnation du tissu cérébral par des vapeurs
de paraformaldéhyde transforme les monoamines contenues dans ce tissu en dérivés fluorescents (Falck et
al., 1962). Cette méthode histochimique relativement simple a permis à Dalhstrom et Fuxe (1964) de
démontrer, et ce pour la première fois, l’existence, dans le cerveau des mammifères, de neurones contenant
de la 5-HT ainsi que d’autres neurones riches en dopamine ou en noradrénaline. Ces auteurs ont donc pu
décrire en détails les caractéristiques morphologiques ainsi que la distribution des différentes populations
neuronales 5-HT. Celles-ci forment une colonne cellulaire plus ou moins continue qui s’étend le long de la
ligne médiane sur les trois étages du tronc cérébral soit le mésencéphale, le pont (ou protubérance) et le
bulbe rachidien (Fig.1). Les neurones 5-HT peuvent être classés en 9 entités distinctes chez les mammifères
(désignées B1 à B9 par Dahlström & Fuxe, 1964), mais que l’on fusionne généralement en un groupe rostral
et un groupe caudal dont l’organisation hodologique diffère fondamentalement (Felten and Sladek, 1983).
Cette distinction s’appuie également sur le fait que, durant le développement embryonnaire, ces deux grands
1
groupes de neurones 5-HT se développent suite à l’expression différentielle de gènes selon leur position sur
l’axe rostro-caudal (Li et al., 2001).
Situé entre le bulbe rachidien et la partie caudale du pont, le groupe caudal est constitué des noyaux raphés
obscurus, pallidus et magnus projetant principalement leurs axones vers le tronc cérébral, le cervelet et la
moelle épinière. Situés le plus caudalement, les neurones 5-HT du noyau raphé obscurus (B2) forment une
feuille de chaque côté de la ligne médiane entre les décussations pyramidales et la partie caudale du noyau
hypoglosse. Situés plus ventralement, les neurones 5-HT du noyau raphé pallidus (B1) forment une colonne
sur la ligne médiane entre la partie caudale du noyau hypoglosse et la section ventromédiane de la formation
réticulée au niveau de la région caudale du pont. Situés dans la section rostrale du bulbe et la partie caudale
du pont, les neurones 5-HT du noyau raphé magnus (B3) se distribuent le long de la ligne médiane,
paramédiane et latérale à partir de l’olive inférieure jusqu’au niveau du nerf trijumeau (Fig. 1).
Le groupe rostral est constitué des noyaux raphés dorsal (NRD) et médian (NRM) où sont concentrés près de
85% des neurones 5-HT du cerveau chez l’humain (Hornung, 2003). Situé entre la partie caudale du pont et le
mésencéphale, le groupe rostral contient des neurones 5-HT qui projettent leurs axones principalement vers la
partie antérieure du cerveau, mais aussi, de façon beaucoup moins importante, vers le tronc cérébral et le
cervelet. Reposant sur le plancher du quatrième ventricule, le groupe B4 représente l’extension la plus
caudale du groupe rostral chez le rongeur. Il est toutefois absent chez les primates. Il n’est pas associé à un
noyau spécifique du raphé, mais s’étend entre les noyaux d’origine des nerfs vestibulaires et abducens. Le
noyau raphé pontin (B5) est situé ventromédialement au faisceau longitudinal médian (medial forebrain bundle
MFB), entre le noyau du nerf facial et l’olive supérieure. Pour sa part, le NRD, comprenant les groupes B6-B7
de Dalstrom et Fuxe, renferme le plus grand nombre de neurones 5-HT du tronc cérébral. Il s’étend de la
partie rostrale du pont, où l’on retrouve le locus coerulus, au mésencéphale renfermant le noyau trochléaire.
Pour sa part, le NRM, comprenant les groupes B8 et B9 de Dalstrom et Fuxe, est localisé entre le pôle caudal
du locus coeruleus et la partie caudale du noyau du nerf oculomoteur.
1.3 Le noyau raphé dorsal
Chez l’humain, le NRD contient environ 235 000 neurones (Baker & al., 1991). Chez le rongeur, il se divise en
trois parties: la partie rostrale, médiane et caudale (Abrams & al., 2004).
2
Figure 1: Distribution des neurones 5-HT dans le tronc cérébral humain (figure modifiée de
Nieuwenhuys & al., 2008).
Représentation en vue dorsale du tronc cérébral humain. La partie gauche du schéma montre l’organisation
cytoarchitecturale des différents noyaux 5-HT, alors que la partie droite illustre les régions et noyaux suivants :
région tegmentaire médiane (gris pâle); région tegmentaire latérale (gris foncé); noyaux du raphé (rouge),
locus coeruleus (orange).
3
D’un point de vue morphologique, 4 types de neurones peuvent être distingués selon la forme de leur corps
cellulaire : (1) rond, (2) ovoïde, (3) fusiforme ou (4) triangulaire. Cette distinction morphologique a permis
d’identifier 5 sous-noyaux au sein du NRD (Kerry & al., 1990). Ces sous-noyaux sont le sous-noyau
interfasciculaire (DRif), le sous-noyau ventral (DRv), le sous-noyau ventro-latéral (DRvl), le sous-noyau dorsal
(DRd) et le sous-noyau caudal (DRc) (Fig. 2).
Le DRif est situé sur la ligne médiane et séparé ventralement du NRM par une bande dépourvue de neurones
5-HT ; dorsalement il fusionne avec le DRv. Le DRif est constitué majoritairement de neurones de type
fusiforme, mais également de neurones ronds.
Le DRv est situé dorsomédialement au MFB dans la région centrale de la substance grise au niveau du noyau
occulomoteur accésoire. Le DRv contient principalement des neurones de type ronds, mais également des
neurones de type triangulaires.
Le DRvl est situé dorsomédialement au MFB. Bien que constitué majoritairement de neurones ronds, il
contient également des neurones triangulaires.
Le DRd, pour sa part, se retrouve près du noyau trochléaire et comprend principalement des neurones de type
rond, fusiforme et triangulaire densément regroupés. Il s’agit du plus volumineux des cinq sous-noyaux
formant le NRD.
Le DRc chez l’homme se retrouve 1 mm plus rostral que l’isthme et il s’étire sur plus de 15 mm, ce qui en fait
le sous-noyau le plus long. Il est principalement formé de neurones de type fusiforme, triangulaire et ovoïde.
1.3.1 Contenu chimique des neurones du raphé dorsal chez la souris
L’analyse détaillée du NRD chez la souris a révélé une composition neurochimique hétérogène, incluant plus
d’une dizaine de neurotransmetteurs ou neuropetides distincts (Fu et al., 2010). Outre la 5-HT, on y retrouve
de la dopamine, du glutamate, du GABA, de la somatostatine, de la substance P, de la dynorphine, de la
neurotensine et du neuropetide Y. Un niveau de complexité supplémentaire provient du fait que plus d’un
neurotransmetteur ou neuropeptide peuvent être contenus dans un même neurone. La description détaillée de
chacun des neurotransmetteurs contenus dans le NRD dépassant le cadre de ce mémoire, seuls ceux
nécessaires à sa compréhension, soit la 5-HT et le glutamate, seront décrits en détail.
4
1.3.2 La sérotonine
La 5-HT est synthétisée à partir du tryptophane, un acide aminé qui provient exclusivement de l’alimentation et
qui possède la capacité de passer facilement la barrière hématoencéphalique. L’accumulation de tryptophane
à l’intérieur du neurone s’effectue grâce à un transporteur membranaire considéré comme l’étape limitante. Le
tryptophane sera hydroxylé par l’une des deux isoformes connues du tryptophane hydroxylase (TpH1 et
TpH2). Alors que la TpH1 est exprimée principalement dans la région gastro-intestinale, la glande pinéale, la
rate et le thymus, la TpH2 est exclusivement exprimée dans le cerveau. Le produit de l’hydroxylation est
ensuite décarboxylé par une décarboxylase des acides aminés (DAA). La 5-HT est empaquetée dans les
vésicules synaptiques par le transporteur vésiculaire des monoamines 2 (VMAT2) suivant un échange entre
deux molécules d’hydrogènes provenant de l’intérieur de la vésicule contre une molécule de 5-HT. Une fois
relâchée à l’extérieur du neurone par exocytose, la 5-HT peut se lier à l’un des sept grands types de
récepteurs 5-HT comprenant chacun plusieurs sous-types de récepteurs pour un grand total de 23 récepteurs
5-HT différents dont chacun possède sa distribution propre dans le cerveau.
À l’exception du récepteur 5HT3 , les récepteurs 5-HT sont des récepteurs métabotropiques couplés aux
,
protéines G. Une fois que la 5-HT s’est liée à un récepteur, elle peut retourner à l’intérieur d’une cellule via un
transporteur transmembranaire spécifique (SERT). Par la suite, la 5-HT peut être catabolisée par la
monoamine-oxydase A ou B (MAOA ou MAOB), produisant un métabolite appelé acide 5-hydroxyindolacétique (5-HIAA) (Purves et al., 2001).
La 5-HT semble jouer un rôle important dans la modulation du comportement moteur (Jacobs and Fornal,
1997). Ce neurotransmetteur ne peut, à lui seul, déclencher un potentiel d’action au sein des motoneurones
dont le corps cellulaire est situé dans la corne ventrale de la moelle épinière. Cependant, via les projections
axonales descendantes des neurones du raphé, la 5-HT peut modifier de façon substantielle le potentiel
membranaire des motoneurones, facilitant ainsi le déclenchement d’un potentiel d’action suite à l’arrivée
d’entrées excitatrices supplémentaires. En absence de 5-HT, les capacités motrices des animaux ne semblent
pas être drastiquement affectées (Jacobs and Fornal, 1997). Toutefois, on remarque que l’absence de 5-HT
est associée à une augmentation des comportements exploratoires chez une grande variété de mammifères,
ce qui sous-tend l’idée d’un lien complexe entre les comportements moteurs et la 5-HT. Une indication
supplémentaire du lien étroit entre la 5-HT et la motricité provient de l’étude de la distribution des axones 5HT. En effet, une forte innervation 5-HT est présente au niveau des motoneurones primaires de la moelle
épinière, ainsi que des principales structures des GB auxquels sont associés plusieurs comportements
psychomoteurs (Steinbusch, 1981).
5
Figure 2: Trois sections transversales du noyau raphé dorsal (figure modifiée de Paxinos & Franklin,
2004).
Illustration d’une section rostrale contenant le sous-noyau ventral (en bleu), d’une section médiane contenant
les sous-noyaux intrafasciculaire (en jaune), ventro-latéral (en vert) et dorsal (en rouge) et d’une section
caudale contenant le sous-noyau intrafasciculaire et le sous-noyau caudal (en mauve).
6
1.3.3 Le glutamate
Le glutamate est un acide aminé synthétisé lors de la transformation du glucose en ATP durant le cycle de
l’acide citrique. Traversant la barrière hématoencéphalique, le glucose est acheminé dans le milieu
intracellulaire des neurones et des astrocytes par des transporteurs membranaires. La synthèse du glutamate
s’effectue lors de l’étape limitante du cycle de l’acide citrique, soit la décarboxylation de l’α-kétoglutarate en
succinyle-CoA par l’α-kétoglutarate déshydrogénase. En effet, la cinétique de la réaction enzymatique entre
l’α-kétoglutarate et l’α-kétoglutarate déshydrogénase amène à l’accumulation de l’α-kétoglutarate. La
présence de l’aspartate-aminotransférase transfère une amine comme l’alanine à l’α-kétoglutarate afin de
former du glutamate (Mason & al., 1992). Cette synthèse peut s’effectuer dans les neurones et les astrocytes.
Toutefois, dans les astrocytes, le glutamate est transformé en glutamine par la glutamine synthéase
(Akiyama & al., 1990). Par la suite, la glutamine est relâchée dans le milieu extracellulaire et captée par les
neurones afin d’être convertie en glutamate par la glutaminase.
Suite à la synthèse du glutamate dans le cytosol, un mécanisme d’empaquetage dans des vésicules
synaptiques devient nécessaire. Bien que la séquence exacte des mécanismes impliqués soit encore
inconnue, l’empaquetage du glutamate ferait intervenir deux protéines transmembranaires distinctes (Juge et
al., 2010). Il s’agirait premièrement d’une pompe à proton (H+) dépendante de l’ATP augmentant le nombre de
H+ à l’intérieur de la vésicule synaptique et deuxièmement, d’un transporteur vésiculaire au glutamate (VGluT)
permettant au glutamate d’entrer à l’intérieur de la vésicule synaptique. L’utilisation de l’ATP par la pompe
permet de créer un gradient de H+ à l’intérieur de la vésicule. Comme le glutamate est chargé négativement,
celui-ci aura tendance à entrer par le transporteur afin de respecter le principe d’homéostasie de charge
électrique. Il semblerait également que l’anion chlore (Cl-) puisse jouer un rôle important, que ce soit pour les
vésicules synaptiques en général (Xie & al., 1983), que pour celles contenant du glutamate (Naito and Ueda,
1985). En effet, le Cl- aurait un effet activateur à faible concentration et un effet inhibiteur à forte concentration.
Dans un article de revue, El Mestikawy & al., (2011) proposent que, à faible concentration, le chlore (Cl-)
puisse se lier à un site provoquant le changement structurel du transporteur afin de permettre l’entrée du
glutamate. À forte concentration, le Cl- agirait comme tampon au H+, ce qui résulterait en une diminution de la
différence de potentiel membranaire et donc une diminution de l’entrée de glutamate.
7
Figure 3 : Mécanismes fonctionnels des transporteurs vésiculaires et synergie moléculaire (figure
adaptée de El Mestikawy et al., 2011)
L’empaquetage de la 5-HT est dépendant du gradient électrochimique de protons (H+) maintenu entre
l’intérieur et l’extérieur de la vésicule synaptique (la valeur intravésiculaire du pH est illustrée de jaune - pH
basique - à orange - pH acide). Ce gradient est maintenu grâce une pompe ATPase (illustrée en bleu). La 5HT est empaquetée grâce au transporteur de monoamines 2 (illustré en rouge) selon l’échange d’une
molécule de 5-HT pour deux H+. Cet échange a pour conséquence de diminuer rapidement le nombre de H+
à l’intérieur de la vésicule. De par sa charge négative, l’entrée de glutamate par liaison au transporteur du
glutamate 3 (illustré en vert) facilite l’entrée de H+ par la pompe à H+ ATPase. Cette synergie aurait comme
conséquence de favoriser l’empaquetage de la 5-HT au sein des vésicules synaptiques.
8
Trois transporteurs vésiculaires du glutamate ont été identifiés à ce jour : VGluT1, VGluT2 et VGluT3. Ils ont
initialement été identifiés comme transporteurs sodium-dépendant du phosphate inorganique par Ni & al.,
(1994), avant d’être formellement identifiés comme transporteurs vésiculaires du glutamate (Bellocchio & al.,
2000). Le VGluT1 est principalement présent dans le cortex cérébral, l’hippocampe et le cervelet (Ni et al.,
1994) alors que le VGluT2 est davantage localisé dans les structures sous-corticales (Varoqui & al., 2000). Le
VGluT3 est, quant à lui, présent dans les structures corticales et sous-corticales (Gras 2002). Contrairement
au VGluT1 et au VGluT2, le VGluT3 est principalement localisé dans les corps cellulaires des neurones pour
lesquels la libération du glutamate n’était pas connue. Les deux principaux systèmes qui co-expriment le
VGluT3 sont les neurones libérant l’acétylcholine ou la 5-HT (Gras et al., 2002). Il a été démontré que le
VGluT3 aurait un rôle de synergie vésiculaire (Gras et al., 2008). En effet, la présence de VGluT3 sur les
membranes vésiculaires favoriserait l’empaquetage de l’acétylcholine ou de la 5-HT dans les vésicules
synaptiques. Puisque les transporteurs vésiculaires de l’acétylcholine ou de la 5-HT doivent faire sortir 2 H+
pour chaque molécule de neurotransmetteur qui entre, la présence de VGluT3 sur la membrane vésiculaire,
de par sa charge négative, faciliterait l’entrée de H+ créée par la pompe à H+ vésiculaire (Fig. 3).
L’élaboration d’un modèle de souris transgéniques dont l’expression du VGLUT3 a été supprimée (VGLUT3KO) a permis de mieux comprendre le rôle comportemental de ce transporteur vésiculaire du glutamate. Bien
qu’il soit fortement présent dans le striatum en condition normale, tant dans les interneurones cholinergiques
que dans les afférences 5-HT, l’absence du transporteur VGluT3 ne semble avoir d’effet significatif sur le
comportement moteur des souris transgéniques (Gras et al., 2008). La 5-HT étant également impliquée dans
la régulation de l’humeur, les compétences sociales et l’anxiété (Dinan, 1996), il a été démontré que la
suppression du VGLUT3 chez la souris augmente les comportements anxieux ainsi que les comportements de
type obsessifs-compulsifs (Amilhon et al., 2010). De plus, une étude menée chez des souris dont les neurones
riches en VGluT3 émettent une fluorescence caractéristique a permis de démontrer un rôle significatif de ce
transporteur dans le circuit de la récompense (Liu et Al. 2014).
Une fois que le glutamate contenu dans les vésicules synaptiques est relâché à l’extérieur du neurone, il peut
se lier à deux grandes familles de récepteurs : les récepteurs ionotropiques, dont l’activation provoque
l’ouverture d’un canal et l’entrée d’ions, et les récepteurs métabotropiques, dont l’activation est reliée à une
cascade de seconds messagers intracellulaires. Lorsque le glutamate est relâché dans la fente synaptique,
son élimination doit s’effectuer rapidement à cause de son haut niveau de toxicité (Choi, 1985). Cette
recapture rapide est principalement effectuée par les astrocytes grâce à l’un des 5 transporteurs d’acides
aminés excitateurs connus à ce jour (Kanai & Hediger, 1992 ; Arriza & al., 1997; Fairman & al., 1995). Une
fois dans le cytoplasme des astrocytes, le glutamate est transformé en glutamine par la glutamine synthèse
9
(Akiyama et al., 1990). La glutamine est ensuite convertie en glutamate par la glutaminase afin d’être à
nouveau empaquetée dans des vésicules synaptiques.
1.4 Projections sérotoninergiques ascendantes en provenance du
noyau raphé dorsal
1.4.1 L’innervation sérotoninergique des ganglions de la base
Chez l’humain, les axones 5-HT s’arborisent dans pratiquement toutes les structures majeures de l’encéphale
(Wallman & al., 2011) et ce neurotransmetteur est particulièrement abondant dans le cortex, le thalamus et les
ganglions de la base (GB). En ce qui a trait aux GB, on remarque que la substance noire (SN) est la structure
la plus densément innervée alors que le noyau subthalamique est deux fois moins innervé que la SN
(Wallman et al., 2011). Le pallidum reçoit une innervation modérée comparativement aux autres composantes
des GB. Le striatum est la structure dont l’innervation en 5-HT est la plus hétérogène. Quoique le noyau caudé
soit légèrement moins innervé que le putamen, ces deux composantes du striatum reçoivent une innervation
5-HT tout aussi hétérogène l’une que l’autre. En effet, dans la partie caudale du putamen, un gradient
dorsoventral est clairement visible où la partie ventrale est nettement plus innervée que la partie dorsale. Au
niveau post-commissural, les axones sont distribués de façon uniforme, sauf dans la bordure dorsale du
noyau caudé où l’innervation est moins abondante que dans le reste du striatum (Wallman & al. 2011). Une
analyse quantitative de l’innervation 5-HT du striatum chez le rat a permis d’observer une différence
importante entre sa partie dorsale et sa partie ventrale (Soghomonian & al., 1987). En effet, la partie ventrale
du striatum semble être deux à trois fois plus riche en axones 5-HT que la partie dorsale. Toutefois, aucune
distinction entre deux compartiments du striatum nommés matrice et striosomes, n’a pu être observée.
1.4.3 Types d’axones sérotoninergiques
L’étude de la morphologie des axones 5-HT permet de regrouper ceux-ci en plusieurs catégories. Steinbusch,
(1981) propose trois types d’axones 5-HT chez le rat, soit les types A, B et C. Les fibres de types A seraient
longues, dépourvues de varicosités axonales, et préférentiellement orientées suivant l’axe rostro-caudal. Les
axones de type B seraient encore plus fins que ceux de type A. Sans orientation particulière, ils se
10
différentieraient toutefois par la présence de varicosités. Finalement, les axones de type C se caractériseraient
par leur abondance dans les régions les plus densément innervées ainsi que par l’absence de varicosités
axonales. Kosofsky & Molliver (1987) proposent plutôt deux catégories d’axones 5-HT, soit les axones de type
M et D, qui se différencieraient par la forme de leurs varicosités. Les axones de type M, qui proviendraient
principalement du noyau raphé médian, seraient caractérisés par la présence de varicosités volumineuses,
rondes et relativement espacées les unes des autres. Les axones de type D, qui émergeraient surtout du
noyau raphé dorsal, seraient caractérisés par de petites varicosités tant de forme ronde que de forme
fusiforme. Par contre, le traçage unicellulaire complet d’un neurone provenant du NRD a permis d’observer les
deux catégories de varicosités axonales sur une même axone (Gagnon & al., 2014). Ce résultat vient donc
nuancer la présence d’une distinction morphologique des axones 5-HT basée sur la provenance des
projections au sein des noyaux du raphé.
1.4.1 Importance de la collatéralisation des axones sérotoninergiques
Tel que mentionné plus haut, les projections 5-HT ascendantes proviennent principalement du noyau raphé
dorsal, mais également du noyau raphé médian. Chez le rat, les axones 5-HT peuvent être divisés en deux
grands systèmes ascendants distincts, soit le système transtegmentaire et le système paraventriculaire
(Parent et al., 1981). Le système paraventriculaire circule le long de la partie dorsale du faisceau longitudinal
de Schütz. Ces axones émettent des collatérales dans les collicules supérieurs et inférieurs ainsi que dans
l’organe subcommissural, mais la vaste majorité d’entre eux passe dorsalement à la commissure postérieure
avant de plonger ventralement pour rejoindre la partie dorsale de l’hypothalamus. C’est durant ce trajet que
des collatérales axonales se détachent afin d’aller innerver densément la matière grise périventriculaire
(Parent et al., 1981). Quant aux axones 5-HT qui forment la voie transtegmentaire, ils plongent ventralement
juste au-dessus de la limite dorsale du noyau interpédonculaire (Lidov et al., 1980). Formant un arc en
direction rostrale, les axones pénètrent ensuite dans l’aire tegementaire ventrale avant de poursuivre leur
course dans le MFB. À ce niveau, un grand nombre de collatérales axonales sont émises et innervent la
substance noire compacte (SNc) et réticulée (SNr). La voie paraventriculaire et transtegmentaire fusionnent
dans le MFB, au niveau de la partie caudale de l’hypothalamus, et circulent dans l’aire hypothalamique
latérale. Les axones empruntant le fasciculus retroflexus s’arborisent principalement dans la partie médiane de
l’habenula. Ceux qui circulent dans les stries médulaire et terminale du thalamus s’arborisent dans l’habenula
mais également dans l’amygdale. Ceux passant par le fornix, se projettent dans l’hippocampe, la bandelette
diagonale de Broca, le septum et l’induseum griseum. Ceux passant par le faisceau cingulaire de
l’hippocampe et la capsule interne se rendent au globus pallidus et au striatum. Finalement, les axones qui
11
cheminent ventralement traversent les noyaux olfactifs pour finalement s’arboriser dans la couche
glomérulaire du bulbe olfactif.
La reconstruction entière et individuelle de plusieurs neurones du NRD a permis d’apporter des évidences
directes de l’importance de la collatéralisation des axones 5-HT (Gagnon & Parent, 2014). Dans le cas des
neurones du NRD, il ressort qu’un même neurone est en mesure d’innerver simultanément plusieurs
structures cibles grâce à un jeu de collatérales axonales complexes. L’innervation du striatum émerge
principalement d’axones dont le corps cellulaire repose dans la région médiane de la partie caudale du NRD.
Deux types de patron d’innervation ont été rapportés. Le premier type regroupe les axones dont les premiers
branchements innervent la région dorsolatérale du striatum. L’axone principal poursuit sa trajectoire et
traverse le claustrum pour déployer son arborisation terminale dans le cortex préfrontal. Le deuxième type
d’axone passe par la SN sans émettre de collatérale, mais plusieurs boutons axonaux sont visibles. L’axone
poursuit sa course à travers l’hypothalamus latéral, le noyau préoptique magnocellulaire, le globus pallidus,
puis la partie dorsale du corps calleux. C’est à ce niveau qu’une collatérale majeure se sépare de l’axone
principal pour former plusieurs petites collatérales et innerver la partie dorsale du striatum. L’axone principal
continue ensuite sa course vers le cortex moteur où il déploie son arborisation terminale. Ce travail présentant
plusieurs reconstructions neuronales unitaires (Gagnon & Parent, 2014) démontre
l’importance de
l’arborisation axonale d’un même neurone qui varie en fonction de la structure cible. Cette importante
collatéralisation axonale représente un substrat morphologique aux diverses fonctions associées à la 5-HT.
Enfin, en envoyant une copie d’un même message à plusieurs neurones localisés dans différentes structures
cibles, les neurones du NRD seraient en mesure de moduler et de synchroniser l’activité de plusieurs régions
du cerveau.
Le traçage unitaire des neurones du NRD a également permis de caractériser la présence du VGluT3 à la fois
à l’intérieur des corps cellulaires 5-HT ainsi qu’au sein des varicosités axonales 5-HT retrouvées dans les
structures cibles et appartenant aux neurones injectés. En effet, les corps cellulaires 5-HT du NRD observés
lors de cette étude contenaient tous le VGluT3. Cependant, une proportion seulement des varicosités
axonales 5-HT contenait le VGluT3 et cette proportion variait en fonction de la région innervée. En effet, 93 %
de varicosités 5-HT contenaient le VGluT3+ dans le striatum par rapport à 75 % dans le cortex moteur. Le fait
que tous les corps cellulaires 5-HT contiennent le VGluT3 mais que seulement certaines collatérales axonales
en soit pourvues suggère fortement l’existence d’un mécanisme de triage des vésicules synaptiques au sein
d’axones fortement collatéralisés (Gagnon & Parent, 2014).
12
La co-transmission du glutamate et de la 5-HT par les neurones du NRD pourraient accroître significativement
la plasticité synaptique importante au cours du développement, du vieillissement ainsi que dans plusieurs
processus neuropathologiques. Bérubé-Carrière et al. (2009) ont observé au microscope électronique que
l’incidence synaptique de la 5-HT varie en fonction des sites d’innervation et que la proportion de jonction
synaptique reste très faible. Il a été suggéré que cette faible incidence synaptique puisse représenter le
substrat morphologique de la transmission volumique. Contrairement aux axones 5-HT, il a été démontré que
la vaste majorité des varicosités axonales glutamatergiques présentent une ou plusieurs synapses (BérubéCarrière et al., 2009). Au sein du système 5-HT, il est tentant de proposer que les varicosités contenant à la
fois la 5-HT VGluT3+ soient celles qui présentent un contact synaptique alors que celles étant dépourvues de
VGluT3, soient celles qui n’en présentent pas.
1.5 La maladie de Parkinson et l’implication de la sérotonine
Affectant près d’un million de personnes en Amérique du Nord, la maladie de Parkinson (MP) est la deuxième
maladie neurodégénérative en importance, après la maladie d’Alzheimer (Lang and Lozano, 1998).
Apparaissant en moyenne vers 65 ans, l’âge demeure le principal facteur de risque connu (Lang and Lozano,
1998). Suivant le diagnostic, le taux de mortalité est d’au moins deux fois plus élevé par rapport au
vieillissement normal (Bennett et al., 1996). Décrit pour la première fois dans un fascicule intitulé «An Essay
on the Shaking Palsy» publié en 1817 par James Parkinson, la cause exacte de la MP demeure inconnue
dans la majorité des cas. La découverte de formes familiales rares de parkinsonisme a toutefois permis
d’identifier plusieurs gènes codant pour l’α-synucléine (PARK1-PARK11) impliqués dans le développement de
la MP (recensés dans (Moore et al., 2005). Par contre, les études effectuées chez des jumeaux identiques
n’ont pas montré une héritabilité importante de la MP, ce qui laisse supposer une interaction importante entre
les facteurs environnementaux et génétiques dans la pathogenèse de la MP (Marsden, 1987).
1.5.1 Les symptômes de la maladie de Parkinson
De façon générale, la plupart des patients parkinsoniens vont présenter les trois symptômes cardinaux de la
maladie, soit de la bradikinésie (ou de l’akinésie dans les stades plus avancés), des tremblements aux repos
et de la rigidité musculaire. Plusieurs patients vont également présenter de l’instabilité posturale. Bien que les
symptômes moteurs de la MP soient plus apparents, cette maladie est également caractérisée par un
ensemble de symptômes non-moteurs qui peuvent parfois être très handicapants. Ceux-ci peuvent précéder
13
d’une dizaine d’années les symptômes moteurs (Shulman et al., 2001). Moins visibles, ces symptômes sont
mal diagnostiqués dans 64% des cas et mènent souvent à des hospitalisations pouvant faire quadrupler le
coût du traitement de la MP (Chaudhuri and Naidu, 2008). Les symptômes non-moteurs comprennent : a) des
troubles neuropsychiatriques, b) des perturbations du sommeil, et c) des affections du système autonome et
digestif (Chaudhuri and Naidu, 2008). Ces trois grandes catégories regroupent près de 50 symptômes
spécifiques. L’auto-administration d’un test particulier chez 545 patients parkinsoniens a révélé que ces
derniers souffraient en moyenne de 9 à 12 symptômes non-moteurs (Martinez-Martin et al., 2007). Après l’âge
de 65 ans, le nombre de symptômes non-moteurs tend à augmenter significativement (Martinez-Martin et al.,
2007).
Les troubles neuropsychiatriques regroupent principalement la dépression, l’anxiété, l’apathie et les
dysfonctions cognitives. La dépression est un symptôme non-moteur important de la MP puisqu’elle affecte
jusqu’à 45% des patients (Burn, 2002). Ce symptôme serait attribuable à une dysfonction des systèmes
dopaminergique, noradrénergique et 5-HT (Remy, 2005). L’anxiété fait également partie des symptômes nonmoteurs fortement associés à la dépression chez les parkinsoniens. En effet, 75% des patients parkinsoniens
dépressifs vont également souffrir d’anxiété (Schiffer et al., 1988). Parallèlement au problème de dépression
et d’anxiété, les troubles cognitifs représentent des symptômes importants de la MP. En effet, jusqu’à 80% des
patients vont montrer des déficits cognitifs allant d’un trouble léger jusqu’à la démence (Aarsland et al., 2003).
1.5.2 Les caractéristiques neuropathologiques de la maladie de Parkinson
La principale caractéristique neuropathologique de la MP est la dégénérescence sélective des neurones
dopaminergiques de la SNc située dans le mésencéphale et dont les axones innervent le striatum. De plus, on
note la présence d’inclusions intracellulaires typiques que l’on retrouve autant dans les corps cellulaires (corps
de Lewy) que dans l’axone (neurites de Lewy) des neurones affectés (Baba et al., 1998). L’analyse
biochimique de la composition des corps de Lewy a montré une forte présence d’α-synucléine alors que
l’étude neuropathologique de tissus post-mortem humain provenant de patients parkinsoniens a révélé un
patron particulier de mort neuronale. En effet, on observe une perte de neurones dopaminergiques plus
importante dans la partie ventrale que dans la partie dorsale de la SNc (Falck et al., 1962). Des marquages
immunohistochimiques pour la calbindine ont permis de mettre en évidence une perte neuronale plus
importante des régions dépourvues de cette protéine servant à lier le calcium (Damier & al., 1999). La
dégénérescence sélective de neurones dopaminergiques nigrostriés entraîne une diminution significative de la
quantité de dopamine au sein du striatum. Dans les stades précoces de la MP, la dégénérescence des axones
14
DA est observée principalement dans la région dorsolatérale du putamen, correspondant au territoire
sensorimoteur du striatum (Fearnley and Lees, 1991). La région ventrale du striatum (noyau accumbens)
correspondant au territoire limbique du striatum et recevant une innervation dopaminergique en provenance
de l’aire tegmentaire ventrale est relativement bien préservée dans les premiers stades de la MP.
En ce qui concerne les neurones 5-HT, l’étude post-mortem de tissus provenant de patients parkinsoniens a
démontré la présence de corps de Lewy. Cependant, ces inclusions neuronales semblent être principalement
restreintes aux noyaux du raphé les plus caudaux et ce, dans les stades les plus avancés de la maladie
(Braak et al., 2002). Toutefois, certains corps de Lewy ont également été observés dans le NRD et le NRM
(Halliday et al., 1990). Une seule étude post-mortem a rapporté des corps de Lewy dans l’ensemble des
noyaux du raphé (Paulus and Jellinger, 1991). En ce qui a trait à la perte de neurones 5-HT dans la MP, celleci semble se restreindre exclusivement au noyau raphé médian (Cheshire et al., 2015). La mesure de l’acide
5-hydroxyindoleactique (5-HIAA), le métabolite de la 5-HT, donne également un aperçu de l’intégrité de ce
système dans la MP. Comparés aux participants contrôles, les patients parkinsoniens ont montré un niveau de
HIAA inaltéré dans le néocortex, mais nettement plus bas dans l’hippocampe, le noyau caudé, le putamen et
le liquide céphalo rachidien (revue dans Huot & al., 2011).
1.5.5 Les modèles animaux de la maladie de Parkinson
Afin de mieux comprendre la MP, de tester de nouveaux traitements qui pourraient permettre de soulager les
symptômes moteurs et non-moteurs et de comprendre l’impact de ces médicaments sur le cerveau, de
nombreux modèles animaux ont été développés. Que ce soit chez le rongeur ou les primates non-humains,
plusieurs toxines peuvent être utilisées afin de provoquer une lésion dopaminergique qui caractérise la MP. La
description détaillée de chacun de ces modèles dépassant l’objectif de ce mémoire, il ne sera question que du
modèle utilisé dans le cadre de la présente étude, soit l’injection intracérébrale unilatérale de 6hydroxydopamine (6-OHDA) chez la souris.
L’étude détaillée de la synthèse de la norépinéphrine (NE) a mené à la découverte de la (6-OHDA) comme
molécule analogue à la dopamine dans la synthèse de la NE (Senoh & al., 1959). Le caractère toxique de la 6OHDA sur les sites de relâche de la NE au sein des muscles cardiaques chez la souris a été démontré par
Porter & al., (1963), une découverte qui a conduit à l’utilisation de cette molécule pour effectuer des lésions
spécifiques des neurones catécholaminergiques. Toutefois, c’est l’injection intracérébrale unilatérale dans le
striatum, dans la SN ainsi que dans le MFB qui a permis d’observer l’effet toxique de la 6-OHDA sur les
15
neurones dopaminergiques et noradrénergiques. Puisque l’administration de désipramine, un inhibiteur du
transporteur de la NE, permet d’épargner les neurones NE, on peut maintenant utiliser la 6-OHDA pour léser
spécifiquement les neurones dopaminergiques (Breese and Traylor, 1971). L’injection unilatérale de 6-OHDA
permet donc d’étudier les conséquences d’une dénervation dopaminergique, tout en conservant un
hémisphère intact à des fins de comparaison.
Les mécanismes exacts permettant d’expliquer la mort des neurones dopaminergiques induite par la 6-OHDA
demeurent inconnus. Cependant, on croit qu’ils impliquent les mitochondries. En effet, la 6-OHDA pénètre
dans les neurones dopaminergiques grâce au transporteur membranaire de la dopamine (DAT) (Michel and
Hefti, 1990). Sa présence dans le cytosol amène son accumulation dans les mitochondries où elle inhibe de
façon permanente le complexe mitochondrial 1 provoquant une diminution de la respiration cellulaire et,
ultimement, la mort cellulaire (Cleeter, & al., 1992). Une lésion unilatérale à la 6-OHDA se traduit
principalement par des mouvements de rotation spontanés qui peuvent être amplifiés en administrant de
l’amphétamine (Ungerstedt, 1971). Évidement, plusieurs différences notables existent entre ce modèle animal
et la maladie humaine. En effet, la lésion chimique provoquée par l’injection de 6-OHDA induit une mort
cellulaire beaucoup plus subite et drastique que ce qui est observé chez un patient souffrant de la MP. De
plus, aucun corps de Lewy n’est observé chez ce modèle contrairement à ce qu’on retrouve chez les patients
parkinsoniens. Enfin, si la mort des neurones dont l’axone forme la voie nigrostriée se traduit par de l’akinésie
et des tremblements au repos chez l’humain, les symptômes moteurs chez le rongeur se traduisent plutôt par
une propension à tourner, de façon spontanée, vers le côté lésé (Ungerstedt, 1971).
1.5.6 Les traitements pharmacologiques de la maladie de Parkinson
Le fait que la dégénérescence des afférences dopaminergiques soit la principale caractéristique
neuropathologique de la MP a tout naturellement orienté les efforts vers un traitement pharmacologique de
remplacement dopaminergique. En effet, la démonstration de la spécificité de la perte de dopamine dans le
cas de la MP par Ehringer & Hornykiewicz, (1960) a immédiatement stimulé la recherche afin de pouvoir
rapidement proposer un traitement de remplacement de la dopamine perdue. Le premier article présentant
une restauration des capacités motrices suite à l’administration de L-Dopa inégalée par les autres
médicaments disponibles à l’époque sera publié un an plus tard par Birkmayer & Hornykiewicz en 1961. C’est
toutefois la démonstration que le bromocriptine, un agoniste des récepteurs dopaminergiques, a la même
efficacité clinique pour rétablir les capacités motrices qui a finalement convaincu la communauté scientifique
de l’efficacité de la L-Dopa (Calne et al., 1974).
16
Aujourd’hui, deux principales options pharmacologiques sont disponibles, soit l’administration d’agonistes
dopaminergiques ou l’administration du précurseur de la dopamine, la L-Dopa (L-3,4-dihydroxyphenylalanine).
Six agonistes dopaminergiques sont actuellement disponibles soit la bromocriptine, la pergolide, la
cabergoline, le lisurdide, le ropinirole et le pramipexole. On leur reconnait la capacité de soulager les
symptômes moteurs associés à la MP et de retarder l’utilisation de la L-Dopa. Bien qu’encore peu compris,
ces effets seraient liés à une demi-vie plus longue de ces molécules par rapport à la L-Dopa. Toutefois, les
agonistes dopaminergiques peuvent induire plusieurs effets secondaires comme des hallucinations, de la
somnolence, des nausées, des oedèmes ainsi que des troubles d’impulsivité (Stowe et al., 2008).
L’approche pharmacologique la plus répandue face à la MP reste encore le traitement visant à remplacer la
dopamine manquante. L’impossibilité pour la dopamine de traverser la barrière hématoencéphalique oblige la
prise de son précurseur immédiat, la L-Dopa. Celle-ci sera par la suite convertie en dopamine par l’enzyme Laromatique amino acid decarboxylase (AADC) dans les quelques neurones dopaminergiques restants, mais
aussi dans les astrocytes et les neurones 5-HT qui contiennent également l’AADC. La prise de L-Dopa peut,
dans un premier temps, restaurer les capacités motrices perdues. Malgré ses avantages évidents, la L-Dopa
occasionne également beaucoup d’effets secondaires. La courte demi-vie de la L-Dopa provoque une
alternance des moments où les capacités motrices sont restaurées (état “on”) suivi d’un retour brusque des
symptômes moteurs parkinsoniens (état “off”). De plus, la L-Dopa est également associée, entre autres, à des
nausées, de la compulsion au jeu et de l’hypersexualité. Enfin, l’administration de L-Dopa est associée à
l’apparition de mouvements involontaires anormaux de forte amplitude que l’on nomme dyskinésies induites
par la L-Dopa (DIL).
1.5.7 Les dyskinésies induites par la L-Dopa
Après seulement quelques années de traitement pharmacologique à la L-Dopa, la vaste majorité des patients
parkinsoniens vont présenter des effets secondaires qui peuvent parfois être plus handicapants que les
symptômes de la MP. Ces complications peuvent être divisées en trois catégories, soit : a) les dyskinésies
induites par la L-Dopa, b) l’épuisement de l’effet thérapeutique en fin de dose, et c) l’alternance entre des
phases de mouvements et de rigidité (effet on-off). La première complication à survenir est habituellement les
dyskinésies, chez 50% des patients, après seulement 5 à 6 ans de traitement. Une analyse détaillée a permis
de constater que les patients plus jeunes souffrent davantage de DIL et que la dose cumulée de L-Dopa
influence également l’expression des DIL. Après 20 ans de traitement à la L-Dopa, plus de 80% des patients
présentent des dyskinésies (Rajput et al., 2002).
17
1.5.8 L’implication de la sérotonine dans les dyskinésies induites par la L-Dopa
Dans un striatum privé d’innervation dopaminergique, les neurones 5-HT seraient les principaux contributeurs
de la conversion de la L-Dopa exogène en dopamine ainsi que de son relâchement (Carta & al., 2007). En
effet, les terminaisons 5-HT possèdent la machinerie biochimique requise pour transformer la L-Dopa en
dopamine. Cependant, puisqu’elles sont dépourvues du transporteur membranaire de la dopamine (DAT) et
de l’autorécepteur inhibiteur D2, les terminaisons 5-HT relâchent la dopamine de manière non-physiologique et
en trop grande quantité. La relâche de la dopamine par les varicosités axonales 5-HT conduit à des poussées
excessives de dopamine extracellulaire se traduisant cliniquement par l’apparition de dyskinésies (Carta et al.,
2008). L’hypothèse de l’implication de la 5-HT dans l’apparition et le maintien des dyskinésies induites par la
L-Dopa est confortée par la réduction de ces mouvements anormaux involontaires (AIMs), soit l’équivalent des
DIL chez l’animal, suite à une diminution de l’activité des neurones 5-HT, tel que démontré par de nombreuses
approches. En effet, il est pratiquement impossible d’induire des AIMs chez des animaux dont les afférences
striatales 5-HT ont été préalablement lésées (Carta et al., 2007). À l’inverse, une augmentation de la sévérité
des AIMs peut être observée suite à une greffe de neurone 5-HT dans le striatum (Carlsson & al., 2007). De
plus, une diminution de l’intensité des AIMs a été observée suite à l’administration d’agonistes des récepteurs
5-HT1A/5-HT1B qui réduisent la relâche de neurotransmetteurs par les neurones 5-HT (Carta et al., 2008).
Les études effectuées chez des singes rendus parkinsoniens suite à l’intoxication au MPTP plaide en faveur
d’une hyperinnervation du striatum par les axones 5-HT. En effet, il est possible d'observer un
bourgeonnement des fibres 5-HT dans le striatum suite à une désafférentation dopaminergique (Gagnon & al.
sous presse). Toutefois, aucun bourgeonnement n’est visible dans le noyau accumbens, une région limbique
du striatum dans laquelle l’innervation dopaminergique est préservée chez le singe MPTP. Cette étude nous
porte à croire que les afférences 5-HT puissent prendre la place laissée vacante par la dégénérescence des
afférences dopaminergiques. Les nouveaux axones 5-HT établissent davantage de synapses (Gagnon et al.,
sous presse), ce qui peut être expliqué par le fait que les axones immatures présentent davantage de
synapses qui agissent comme point d’encrage lors de la croissance axonale (Crissman & al., 1993). En ce qui
a trait à la L-Dopa, l’administration de celle-ci semble induire, chez le rongeur ayant subit une lésion
dopaminergique, un bourgeonnement des axones 5-HT dont l’importance varie en fonction de la dose de LDopa administrée (Rylander et al. 2010). Puisque les varicosités axonales glutamatergiques sont fortement
synaptiques (Bérubé-Carrière et al., 2009), il devient donc raisonnable de penser que les axones 5-HT
immatures puissent contenir davantage de VGluT3. De plus, comme la présence du VGluT3 semble induire un
effet synergique sur l’empaquetage vésiculaire des monoamines, la présence de ce transporteur au sein des
18
varicosités axonales 5-HT pourrait favoriser la libération de dopamine suite à l’administration de L-Dopa et
ainsi l’expression des AIMs.
1.6 Objectifs du projet
Bien que le patron d’innervation 5-HT des GB chez la souris soit relativement bien connu, la distribution
détaillée des axones 5-HT et VGluT3 ainsi que la colocalisation des deux molécules n’a pas été rapportée de
façon exhaustive. Ainsi, le premier objectif de notre étude est de décrire le patron de distribution des axones 5HT et VGluT3 dans différentes régions des GB ainsi que dans certaines structures associées au système
limbique. Afin de réaliser cet objectif, une observation minutieuse a été effectuée grâce à un protocole
immunohistochimique appliqué à du tissu provenant de souris C57/Bl6 saines. Le deuxième objectif de notre
étude est d’évaluer l’importance fonctionnelle du VGluT3 au sein des axones 5-HT sur l’expression des
mouvements anormaux induits par l’administration de L-Dopa en contexte de dénervation dopaminergique. Ce
deuxième objectif se divise en deux objectifs spécifiques. Objectifs spécifiques : [1] démontrer que l’état
parkinsonien et l’état dyskinétique se caractérisent par une altération de l’innervation striatale 5-HT. [2]
Démontrer que l’état dyskinétique s’accompagne d’une augmentation de la quantité de VGluT3 au sein des
varicosités axonales 5-HT. Ces objectifs sont également associés à des hypothèses spécifiques. Hypothèses
: [1] dans la MP, la place laissée vacante par les axones dopaminergiques permet aux afférences striatales 5HT de bourgeonner, constituant ainsi un déterminant présynaptique important des DILs. Suite à une
dénervation dopaminergique, la densité des varicosités axonales 5-HT sera augmentée, particulièrement dans
le territoire sensorimoteur du striatum. [2] Suite à un traitement chronique à la L-Dopa, la proportion des
varicosités 5-HT du striatum qui contiennent le VGluT3 sera corrélée positivement avec la sévérité des DILs.
2. Matériel et Méthode
2.1 Les animaux
Au total, 20 souris C57/BL6 âgées de 2 mois et dont le poids variait de 20 à 30g ont été utilisées afin de
réaliser cette étude. Les souris ont été hébergées dans une pièce à température contrôlée avec un cycle de
luminosité jour/nuit de 12 h, sans restriction à l’accès à l’eau ou à la nourriture. Toutes les interventions
chirurgicales et les procédures de soins ont été approuvées par le comité de protection des animaux de
19
l'Université Laval (numéro de certification : 2011165-3) et ont suivi les règles et recommandations du guide
canadien pour le soin et l'utilisation des animaux en laboratoire.
2.2 Injections unilatérales de 6-hydroxydopamine (6-OHDA)
Douze souris ont reçu une injection intracérébrale de 6-OHDA afin de produire une lésion sélective des
neurones dopaminergiques. Pour ce faire, les animaux ont été anesthésiés à l'isoflurane (1,5%) puis placés
dans un cadre stéréotaxique. Afin de préserver les neurones noradrénergiques, de la désipramine (D3900,
Sigma, Canada) a été préalablement administrée en mode intrapéritonéal (i.p.) 30 minutes avant l'injection
intracérébrale de 6-OHDA. Dissoute dans une solution saline d’acide ascorbique, la 6-OHDA (1,5 g, H4381
Sigma, Canada) a ensuite été injectée unilatéralement dans le MFB chez 12 souris. Le MFB a été atteint en
utilisant les coordonnées stéréotaxiques suivantes : antéro-postérieur: -1,2 mm, médio-latéral -1,1 mm et
dorso-ventral 5,0 mm. Ces coordonnées ont été calculées à partir du bregma (antéropostérieur et
médiolatéral) et de la surface du cortex cérébral (dorsoventral), et ce, selon l’atlas stéréotaxique de Paxinos &
Franklin, 2004. Les 6 souris restantes ont reçu une injection d’acide ascorbique afin de servir de contrôle
(sham) (Fig. 4). Trois semaines après la chirurgie, un test de rotations spontanées a été réalisé sur l'ensemble
des 18 souris. Le test a été effectué dans un cylindre transparent avec une caméra Sony Handycam DCR5X43 pendant 10 minutes puis le nombre de tours ipsilatéraux et controlatéraux à la lésion ont été
comptabilisés.
2.3 Traitement à la L-Dopa
Quatre semaines après l’injection unilatérale de 6-OHDA, 6 des 12 souris lésées au 6-OHDA ont reçu une
dose quotidienne de 3 mg/kg (i.p.) de L-Dopa méthyl-ester (D1507-1G; Sigma) et de 12 mg/kg de bensérazide
(B7283-1G, Sigma, Canada) pendant 3 jours. Pour les 10 jours suivants, la dose de L-Dopa a été augmentée
à 6 mg/kg. Ce régime d’administration a permis d’induire des (AIMs) chez toutes les souris ayant été lésées à
la 6-OHDA puis traitées à la L-Dopa. Les 6 souris sham ainsi que 6 souris 6-OHDA ont reçu une injection i.p.
de saline plutôt que de L-Dopa. Dans ce mémoire, le groupe ayant seulement été lésé à la 6-OHDA mais traité
à la saline sera appelé «groupe 6-OHDA» et le groupe ayant été lésé à la 6-OHDA et traité à la L-Dopa sera
appelé «groupe L-Dopa». Le groupe ayant été faussement lésé sera appelé «sham». Sept jours après le
début de l'administration de L-Dopa, la sévérité des AIMs a été évaluée. Cette évaluation a été réalisée à
20
partir d’enregistrements vidéo d’une durée de 10 minutes effectués dans un cylindre transparent, à l’aide d’une
caméra Sony Handycam DCR-5X43, 20 minutes suivant l’administration i.p. de L-Dopa. Neuf jours après le
début du traitement de L-Dopa, la sévérité des AIMs a été évaluée à nouveau selon une échelle
d’évaluation développée par Cenci et al. (1991) qui permet de diviser le comportement selon quatre
composantes (locomoteur, axial, membres antérieurs et oro-lingual). Vingt minutes suivant l’injection i.p. de LDopa ou de saline, les souris ont été filmées dans un cylindre transparent pendant 1 minute et ce, toutes les
20 minutes, pour une durée totale de 140 minutes. Pour chaque minute enregistrée, nous avons accordé un
pointage de 0 à 4 pour chacune des sous-échelles suivant l’amplitude du mouvement observé, à l’exception
de la sous-échelle oro-linguale. En effet, nous n’avons pas été en mesure d’évaluer rigoureusement ce
paramètre dû à un manque de résolution de la caméra et à la vitesse trop grande de rotation des souris. Le
pointage de toutes les autres composantes de l’évaluation comportementale ont été additionnés.
2.4 Traitement du tissu
Quarante deux jours après la lésion au 6-OHDA et 24h après la dernière injection de L-Dopa (ou de saline),
les souris ont été profondément anesthésiées par injection i.p. d’un mélange de kétamine (80 mg/kg) et de
xylazine (10 mg/kg). Ensuite, chaque souris a subi une perfusion transcardiaque de 50 ml d’acroléine (2%) et
de 200 ml de paraformaldéhyde (4%). Les cerveaux ont ensuite été rapidement extraits du crâne et post-fixés
pendant 1h dans une solution de paraformaldéhyde 4%. Ils ont été coupés selon un plan coronal, à une
épaisseur de 50 µm, à 4 °C, en utilisant un vibratome (Leica VT1200S). Les sections ont été conservées à 20°C dans une solution d’antigel composé de tampon phosphate (0,5M), de 30% d’éthylène glycol et de 30%
de glycérol, jusqu’à leur utilisation. Afin d’examiner la colocalisation de SERT et de VGluT3 en condition
normale dans différentes composantes des GB et dans les structures associées, deux souris supplémentaires
ont été utilisées. Ces souris ont été perfusées le jour même de leur arrivée à l’animalerie et le tissu a été
préparé selon le protocole décrit plus haut.
2.5 Immunomarquage TpH2 / VGlut3
À partir des cerveaux des 2 souris qui ont servi à la description de la distribution de SERT et de VGluT3 en
condition normale, 3 sections coronales de 50 µm d’épaisseur ont été choisies à des coordonnées
stéréotaxiques correspondant à -4.60 mm et -4,96 mm selon l’atlas de Paxinos & Franklin (2004). Ces
21
sections ont été d’abord traitées afin d’éliminer les groupes aldéhydes des fixateurs chimiques utilisés lors de
la perfusion transcardiaque. Pour ce faire, elles ont été incubées pendant 30 minutes dans une solution de
borohydrure de sodium (0,05 g/10 ml), suivi par 5 rinçages au PBS de 5 minutes chacun. Les sections ont
ensuite été incubées pendant 1 heure dans une solution de pré-incubation composée de 0,05% de triton, de
2% de sérum normal d'âne et de 2% de sérum normal de lapin dilué dans du PBS. Cette même solution a, par
la suite, servi de solution de dilution des anticorps utilisés pour ce marquage. À cet égard, les sections ont été
incubées pendant une nuit à 4 °C avec de l’anticorps primaire de mouton (1:250, n° de catalogue AB1541,
Chemicon) et de cochon d’Inde (1:500, n° de catalogue AB5421, Santa Cruz Biotechnology) dirigé
respectivement contre l’enzyme de synthèse de la 5-HT, soit la tryptophane hydroxylase (TpH) et le VGluT3.
Ces incubations ont été suivies par 3 rinçages au PBS. Les anticorps primaires ont été détectés avec des
anticorps secondaires faits chez l’âne dirigés contre le lapin (1: 200, no de catalogue 711-545-152, Jackson)
ou la chèvre (1: 200, n° de catalogue A11057, Invitrogen). Ces anticorps secondaires étaient respectivement
couplés à de l’Alexa Fluor 488® et l’Alexa Fluor 568®. Les sections ont ensuite été étalées sur lame et
recouvertes d’une lamelle dans un milieu de montage adapté à la fluorescence (Dako, n° de catalogue
S3023).
2.6 Immunomarquage SERT / VGluT3
À partir des 2 souris qui ont servi à la description de la distribution de SERT et de VGluT3 en condition
normale, des sections coronales de 50 µm d’épaisseur ont été choisies à des coordonnées stéréotaxiques
correspondant à 0,70 mm, -1,34 mm, -2,06 mm, -3,16 mm et -4,84 mm, selon l’atlas de Paxinos & Franklin
(2004). Quatre sections coronales supplémentaires par souris des groupes expérimentaux sham, 6-OHDA et
L-Dopa prises entre les coordonnées stéréotaxiques 1,18 mm et 0,38 mm ont été utilisées. Toutes les sections
ont été immunomarquées pour SERT de VGluT3 et suivant le même protocole. Ces sections ont été traitées
afin d’éliminer les groupements aldéhydes des fixateurs chimiques utilisés. Pour ce faire, elles ont été
incubées pendant 30 minutes dans une solution de borohydrure de sodium (0,05 g/10 ml), suivi par cinq
rinçages au PBS de 5 minutes chacun. Les sections ont ensuite été incubées pendant 1 heure dans une
solution de PBS composée de 0,05% de triton et de 2% de sérum d'âne normal. Cette même solution a servit
de solution aux anticorps utilisés pour ce marquage. Par la suite, les sections ont été incubées pendant une
nuit à 4 °C avec de l’anticorps primaire de lapin (1: 250, Système Synaptic, n ° de catalogue 135 203 122) et
de chèvre (1:500, Santa Cruz Biotechnology, no de catalogue SC-1458) dirigé respectivement contre VGluT3
et SERT. Les anticorps primaires ont été détectés grâce à des anticorps secondaires faits chez l’âne et dirigés
soit contre le lapin (1:200, Jackson, n° de catalogue 711-545-152) ou contre la chèvre (1:200, Invitrogen, n°
22
de catalogue A11057). Ces anticorps secondaires étaient respectivement couplés à de l’Alexa Fluor 488® et
de l’Alexa Fluor 568®. Les sections ont ensuite été étalées sur lame et recouvertes d‘une lamelle en utilisant
un milieu de montage adapté à la fluorescence (Dako, n° de catalogue S3023). À partir des cerveaux des 2
souris qui ont servi à la description de la distribution de SERT et de VGluT3 en condition normale, 1 section
coronale de 50 µm d’épaisseur par cerveau a été choisie aux coordonnées stéréotaxiques correspondant à
1,10 mm, selon l’atlas de Paxinos & Franklin, 2004. Ces sections ont été traitées au borohydrure de sodium,
tel que décrit plus haut. Après une pré-incubation de 1h, les sections ont été incubées pendant une nuit à 4 °C
avec des anticorps primaires faits chez le lapin, la chèvre ou la souris dirigés respectivement contre VGluT3
(1:250, Synaptic system, no de catalogue 135203122), SERT (1:500, Santa Cruz Biotechnology, no de
catalogue SC-1458) et Ki67, un marqueur de prolifération cellulaire (1: 1500, BG Pharmigen, no de catalogue
556003). Par la suite, 3 rinçages au PBS ont été effectués. Les anticorps ont été détectés grâce à des
anticorps secondaires faits chez l’âne dirigés contre le lapin (1: 200, Jackson no de catalogue 711-545-152), la
chèvre (1: 200, Invitrogen, no de catalogue 711-545-152) ou la souris (1: 200, Jackson, no de catalogue 715175-150). Ces anticorps secondaires étaient respectivement couplés à de l’Alexa Fluor 488®, de l’Alexa Fluor
568® et de l’Alexa Fluor Cy5®. Les sections ont ensuite été étalées sur lame et recouvertes d’une lamelle
dans un milieu de montage contenant du DAPI (Vectashield, 94010). Reconnu pour marquer l’ADN dans les
noyaux cellulaires, le marquage au DAPI a permis d’observer la couche de cellules de l’épendyme.
2.8 Immunohistochimie TH
Afin d’évaluer l’importance de la lésion dopaminergique des souris ayant reçu une injection intracérébrale de
6-OHDA, 2 sections coronales ont été sélectionnées au niveau du striatum et de la SN (0,14 mm et 2.46 mm
selon l’atlas de Paxinos & Franklin, 2004). Ces sections ont d’abord été traitées au borohydrure de sodium afin
d’éliminer les groupements aldéhydes tel que décrit plus haut. Les sections ont ensuite été pré-incubées
pendant 1 heure dans une solution qui a également servi à diluer les anticorps utilisés dans les étapes
subséquentes. Les sections ont été incubées pendant une nuit à 4 °C dans une solution comprenant un
anticorps primaire de lapin (1:1000, Millipore, no de catalogue AB152) dirigé contre l’enzyme de synthèse de
la dopamine, soit la tyrosine hydroxylase (TH). Les anticorps primaires ont été détectés avec un anticorps
secondaire de chèvre dirigé contre le lapin (1: 200, Invitrogen , n ° de catalogue A11057). Les coupes ont été
ensuite rincées 3 fois au PBS avant d’être incubées pendant 1 h à température ambiante dans une solution
comprenant un complexe avidine biotine peroxydase (1:100, laboratoires Vector, no de catalogue PK-4000).
La peroxydase ainsi liée a été révélée par l’incubation des sections pendant 3 minutes à température
ambiante dans une solution comprenant 0,05% de 3,3-diaminobenzidine et 0,005% de H2O2 (Sigma, no de
23
catalogue D5637). La réaction a été arrêtée par 2 rinçages au TBS suivi par 1 rinçage au PB. Les sections ont
été étalées sur des lames chromalum, puis déshydratées grâce à un passage dans une série d'alcool à
concentration croissante. Finalement, elles ont été immergées dans du Toluène. Les sections ont été
recouvertes d’une lamelle en utilisant du Permount comme milieu de montage (Fisher scientifique, no de
catalogue SP15-500).
2.9 Stéréologie
L'échantillonnage stéréologique a été réalisé grâce à un microscope confocal (Zeiss, LSM700) équipé d'une
caméra (AxioCam), d’une platine motorisée, d’un indicateur de l'axe des Z de type Leica, le tout contrôlé par le
logiciel StereoInvestigator (v 7.00.3;. MicroBrightField, Colchester, VT, USA). Afin d’évaluer le nombre de
varicosités axonales SERT-immunoréactives (+) et SERT+ / VGluT3+ dans le striatum dorsal, le contour de la
structure a d’abord été tracé à faible grossissement (4X). Une ligne horizontale a été tracée entre la pointe
ventro-latérale du corps calleux et le ventricule latéral afin de délimiter la limite ventrale du striatum. Ensuite,
une grille formée de rectangles mesurant 247,7 µm par 221,6 µm a été appliquée sur la structure. À chaque
intersection, une zone de comptage mesurant 100 µm x 100 µm a été tracée et examinée à l’aide d’un objectif
63X/1.4 à l’huile. Toutes les varicosités axonales immunomarquées, situées à l'intérieur du cadre de comptage
et n’étant pas en contact avec les lignes d'exclusion ont été comptabilisées, seulement si elles étaient
contenues à l’intérieur du dissecteur optique d’une épaisseur de 20 µm, placé au centre de l’épaisseur de la
section. Les varicosités axonales SERT+ qui montrait un immunomarquage VGluT3 ont été comptabilisées
comme des varicosités axonales SERT+/VGluT3+. Dans le cas contraire, elles étaient considérées comme
des varicosités axonales SERT+. Mesuré avant chaque comptage, l’épaisseur du tissu se situait entre 12,6
µm et 20,6 µm. En moyenne, 14 060 ± 7 699 varicosités axonales par souris ont été comptées, ce qui donne
un coefficient d'erreur (Gunderson, m = 1 et 2 Schmitz-Hof) se situant entre 0,02 et 0,05. La densité a été
calculée en utilisant le nombre total de varicosités axonales estimé et le volume du secteur déterminé à l’aide
de la méthode de Cavalieri. Les résultats sont donc exprimés en nombre de varicosités axonales par mm3 de
tissu. Tous les comptages de varicosités axonales ont été effectués à l’aveugle afin d’éviter tout biais.
24
Figure 4: Conceptualisation du protocole expérimental
Ce calendrier expérimental montre le moment où la dénervation dopaminergique (DA) a été induite par
l’injection intracérébrale de 6-hydroxydopamine (6-OHDA), ou l’injection de l’acide ascorbique chez les
animaux contrôles. Trois semaines après l’injection, les animaux subissent un test comportemental permettant
de valider la lésion DA, les animaux bien lésés tournant du côté ipsilatéral à la lésion (à droite). Au début de la
4e semaine, un groupe de souris reçoit une dose de L-Dopa (3 mg/kg) pendant 3 jours, puis la dose est
augmentée à 6 mg/kg jusqu’à 24h avant la perfusion transcardiaque.
25
2.11 Statistiques
Les différences entre les différents groupes expérimentaux en ce qui a trait aux densités de varicosités
axonales ont été évaluées en utilisant un test de Kruskal-Wallis pour données non paramétriques. Une
différence a été considérée statistiquement significative à P < 0,05. Les analyses statistiques ont été
effectuées en utilisant le logiciel GraphPad Prism (V. 5.0;. GraphPad Software, San Diego, CA, USA). Enfin, la
moyenne a été prise comme une mesure de tendance centrale et l'écart-type a été utilisé comme une mesure
de dispersion.
26
3. Résultats
3.1 Observations générales
L’anticorps dirigé contre la protéine SERT, une protéine membranaire, permet de marquer de façon optimale
l’ensemble des axones 5-HT. L’anticorps contre TpH2, l’enzyme de synthèse de la 5-HT, permet, quant à lui,
une meilleure visualisation des corps cellulaires 5-HT contenus dans les noyaux du raphé. Le marquage pour
VGluT3 est très ponctiforme puisqu’il s’agit d’une protéine vésiculaire. Il permet de visualiser les corps
cellulaires ainsi que les terminaisons axonales qui le contiennent. Les varicosités axonales immunomarquées
pour SERT et/ou VGluT3 ont pu facilement être identifiées et comptées en microscopie confocale, à partir de
nos marquages et d’une approche stéréologique non-biaisée. Une pénétration adéquate des anticorps a pu
être attestée par un marquage uniforme à travers toute l’épaisseur de la section.
3.2 Description du contenu neurochimique des corps cellulaires formant les noyaux du
raphé dorsal et médian
Une observation attentive des noyaux du raphé dorsal (DRN) et médian (MRN), les noyaux d’où origine la
vaste majorité des projections 5-HT ascendantes, a permis de conclure que l’ensemble des neurones TpH2
retrouvés dans le NRD contiennent également le VGluT3. Cependant, on note la présence de plusieurs
neurones VGluT3 qui sont dépourvus de TpH2 (Fig. 5). La densité des neurones VGluT3 immunonégatifs
pour TpH2 est plus élevée dans les ailes latérales du DRN. En ce qui concerne le MRN, une faible proportion
de neurones TpH2 est dépourvue de VGluT3. D’autre part, la comparaison de l’immunoréactivité pour VGluT3
dans le DRN et MRN nous permet de conclure que la quantité de protéines VGluT3 contenues dans les
neurones TpH2 du DRN est supérieure à celle des neurones TpH2 du MRN. Étrangement, l’immunoréactivité
des corps cellulaires VGluT3 dépourvus de TpH2 semble similaire entre les deux noyaux du raphé (Fig. 5).
En examinant les structures cibles des neurones 5-HT, on peut rapidement s’apercevoir que plusieurs
varicosités axonales sont dépourvues de VGluT3. Étant donné que nos observations indiquent que tous les
corps cellulaires 5-HT du DRN contiennent le VGluT3 mais que seulement une proportion des varicosités
axonales retrouvées dans les cibles contiennent le VGluT3, cela laisse présager l’existence d’un mécanisme
de triage complexe des vésicules synaptiques au sein des axones 5-HT que l’on sait être fortement
27
collatéralisés. Cette affirmation est confortée par le fait que plusieurs branches axonales comportant à la fois
des varicosités SERT/VGluT3 et des varicosités simplement marquées pour SERT ont été observées dans
différentes structures cibles.
La densité des varicosités axonales SERT+, VGluT3+ et SERT+/VGluT3+ varie beaucoup en fonction des
structures cibles (Tableau 1). De façon générale, le degré de colocalisation de SERT et VGluT3 reste
relativement faible dans la plupart des régions cérébrales étudiées, à l'exception de quelques régions du tronc
cérébral. Dans le mésencéphale, l’aire tegmentaire ventrale et la SN se caractérisent par un nombre important
de varicosités axonales doublement marquées (SERT+/VGluT3+). Dans le reste du tronc cérébral, le DRN, le
MRN et la zone para-épendymaire contiennent également une proportion importante de varicosités axonales
doublement marquées. Dans ces régions cérébrales, pratiquement toutes les varicosités sont
SERT+/VGluT3+.
3.2 Immunomarquage de la zone supra-épendymaire de la zone sous-ventriculaire
La zone supra-épendymaire se caractérise par une importante densité axonale SERT et ce, dans tout le
système ventriculaire (Fig. 6). En comparaison, la densité des axones SERT est beaucoup moins importante
dans le striatum ainsi que dans la zone sous-ventriculaire, délimitée par un marquage pour Ki67 et DAPI (Fig.
6 C). Une tendance similaire peut être observée en ce qui a trait à l'immunomarquage du VGluT3,
l’immunoréactivité de VGluT3 étant plus dense dans la zone supra-épendymaire que dans le striatum.
L’immunomarquage nous démontre que pratiquement tous les axones SERT+ de la zone supra-épendymaire
sont également immunoréactifs pour le VGluT3+.
28
Figure 5 : Sections transversales des noyaux du raphé dorsal et médian immunomarquées pour la
TpH2 et le VGluT3.
Comparaison entre les corps cellulaires TpH2+ du noyau raphé dorsal (DRN, A) et médian (MRN, B). A) Dans
le DRN, tous les corps cellulaires TpH2+ contiennent également le VGluT3 (tête de flèche) alors que certains
neurones VGluT3 ne contiennent pas de TpH2 (flèche). B) Au contraire, dans le MRN, plusieurs neurones
TpH2+ semblent dépourvus de VGluT3 (tête de flèche) alors que, tout comme dans le DRN, certains neurones
VGluT3 sont dépourvus de TpH2 (flèche).
29
Figure 6: Section transversale prise au niveau du striatum et de la zone sous-ventriculaire (SVZ),
marquée pour VGluT3 (A, vert), SERT (B, rouge), Ki67 (C, bleu pâle) et DAPI (D, bleu foncé).
L’image provient d’un « Z-stack » d’une épaisseur de 20 µm. Abréviations: LV: ventricule latéral; SVZ: zone
sous-ventriculaire; STR: striatum.
30
3.3 Distribution régionale des varicosités axonales SERT et VGluT3 en condition
normale
a) Le striatum. Par rapport aux autres composantes des GB, le striatum présente une innervation SERT
plutôt faible (Fig. 7A). La majorité des axones retrouvés montrent de nombreuses varicosités petites et
allongées, bien que quelques rares varicosités plus grosses et plus rondes ont été aussi observées. Malgré
une densité d’axones SERT+ relativement faible, le striatum montre une importante densité de varicosités
VGluT3+. Cette observation semble être liée à la présence de gros corps cellulaires VGluT3+, qui
correspondent probablement aux interneurones cholinergiques du striatum reconnus pour procurer une
importante innervation locale. En ce qui concerne la colocalisation du SERT et du VGluT3, peu de varicosités
SERT+/VGluT3+ sont observées. Toutefois, quelques axones apparaissent complètement immunoréactifs
pour SERT et VGluT3.
b) Le pallidum. Le globus pallidus (Fig. 7 B) et le noyau entopédonculaire (Fig. 7 C) montrent un niveau
d’innervation 5-HT plus important que celui du striatum. Les axones présentent des varicosités généralement
plus grosses que celles du striatum et semblent suivre une orientation caudo-rostrale et ventro-dorsale. Le
marquage VGluT3 est plus intense dans le globus pallidus et le noyau entopédonculaire comparativement au
striatum, ce qui en fait la structure la plus riche en VGluT3 des GB. En ce qui conerne la co-localisation des
deux protéines, les varicosités axonales SERT+/VGluT3+ sont rarement présentes.
c) Le noyau subthalamique. L’innervation 5-HT du noyau subthalamique est plus intense que celle retrouvée
dans les autres composantes des GB. Les axones sont principalement orientés dans un axe caudo-rostral.
Des petites varicosités rondes ainsi que des plus grosses de forme ovale sont observées en égales
proportion. Contrairement au striatum, la densité des varicosités VGluT3+ est faible dans le noyau
subthalamique, ce qui en fait la structure des GB la moins immunoréactive pour cette protéine. Peu de
varicosités axonales SERT+/VGluT3+ ont pu être observées.
d) La substance noire. Une innervation très dense des axones SERT a été observée au sein de la substance
SNc et SNr (SNr, Fig. 7 E). Toutefois, il semble que la SNr soit davantage innervée par les axones SERT que
la SNc. L’immunoréactivité pour VGluT3 est plus forte dans la SNc que la SNr. Les varicosités axonales
SERT+/VGluT3+ sont présentes dans la SN en faible proportion, mais leur densité semble plus importante
que celle observée dans d’autres composantes des GB.
31
e) Le cortex moteur secondaire. L'innervation 5-HT du cortex moteur secondaire semble très faible
comparativement à celle d’autres structures comme l’hypothalamus latéral (Fig. 8 A). La densité des axones
SERT semble plus importante dans les couches superficielles du cortex cérébral. L’immunomarquage de
VGluT3 est contenu dans les varicosités axonales. Plusieurs varicosités axonales SERT+/VGluT3+ peuvent
être observées et, comparativement aux varicosités SERT+/VGluT3-, elles semblent être plus volumineuses.
f) La région CA1 de l’hippocampe. Dans l’hippocampe, les axones SERT ont la particularité d'être plus
denses dans le stratum oriens (Or) et dans le stratum radial (Rad), comparativement au stratum pyramidal
(Pyr, Fig. 8 B). D'autre part, l'immunomarquage de VGluT3 semble être plus intense dans la couche Pyr et
sous forme de grosses vésicules à l’intérieur du soma des interneurones. La présence des varicosités
axonales SERT+/VGluT3- est plus importante dans la couche pyramidale, bien que quelques rares
terminaisons axonales SERT+/VGluT3+ sont également visibles dans les deux autres couches cellulaires.
g) Le noyau central médian postérieur de l’amygdale (CEmpv). Les axones SERT dans le CEmpv sont
très denses et la majorité semble orientée selon un axe dorso-ventral (Fig. 8 C). De petites et de grosses
varicosités axonales sont facilement visibles et présentes sur un même axone SERT. L’immunomarquage
pour VGluT3 est très dense et se caractérise par la présence de petits axones portant de grosses varicosités
axonales. Les varicosités axonales SERT+/VGluT3+ sont rares et de grande taille.
h) L’hypothalamus latéral. Les projections ascendantes 5-HT en provenance des noyaux du raphé
mésencéphalique empruntent le MFB et l’aire hypothalamique latérale. Ainsi, l'hypothalamus latéral se
distingue par une densité importante d’axones SERT qui s’oriente principalement selon un axe caudo-rostral
(Fig. 8 E). L’immunomarquage de VGluT3 se caractérise par quelques grosses varicosités axonales. Enfin,
l'immunomarquage SERT+/VGluT3+ est rare, mais ce double-immunomarquage se retrouve davantage sur
des axones caractérisés par des terminaisons axonales plus grosses et plus distancées les unes des autres.
32
Tableau 1 Distribution régionale du VGluT3, du SERT ainsi que de leur co-localisation dans les
varicosités axonales.
La densité a été notée selon une échelle qualitative partant d’un seul +, représentant le plus bas niveau de
densité, à quatre +, représentant la plus forte densité.
33
Figure 7: Images prises au microscope confocal montrant l’immunomarquage pour SERT et VGluT3
dans les axones présents dans les principales composantes des ganglions de la base.
L’immunoréactivité pour VGluT3 et SERT est représentée respectivement en vert et en rouge. Dans l'ordre,
l'image en A montre le striatum (STR), B le globus pallidus (GP), C le noyau entopédonculaire (ENT), D le
noyau subthalamique (STN), E la substance noire (SN), et F l'aire tegmentaire ventrale (VTA). La ligne
pointillée trace la limite entre la substance noire réticulée (SNr) et compacte (SNc).
34
Figure 8: Images prises au microscope confocal montrant les axones VGluT3+, SERT+ et
VGluT3+/,SERT+ détectés dans certaines structures associées au système limbique chez la souris.
L’immunoréactivité du VGluT3 et du SERT est montrée en vert et en rouge respectivement. La tête de flèche
montre un bouton VGluT3 positif présent dans toutes les structures de ce tableau. Dans l'ordre, l'image A est
située dans le cortex moteur secondaire (M2), l’image B est située dans la région CA1 de l'hippocampe,
l’image C est située dans le noyau central médian postérieur de l’amygdale (CeMPV) et celle en D, dans
l'hypothalamus latéral (LH). La ligne pointillée en B délimite la couche oriens (Or), la couche de cellules
pyramidales (Pyr) et la couche du radium (Rad) de l’hippocampe.
35
3.4 Validation du modèle parkinsonien et dyskinétique
Les mesures de rotations spontanées prises sur des souris ayant reçu l'injection de 6-OHDA ont montré une
nette préférence pour les rotations ipsilatérales à la lésion (Fig. 9 A). En effet, sur une période de 10 minutes,
les souris du groupe sham ont tourné 5,3 ± 2,0 fois à gauche et 9,5 ± 5,6 fois à droite. Les souris du groupe 6OHDA ont, en moyenne, tourné 1,6 ± 3,1 fois à gauche et 18,3 ± 6,51 fois à droite. Finalement, les souris du
groupe L-Dopa ont tourné en moyenne 299,3 ± 53,8 fois à gauche et 0,0 fois à droite. La comparaison
statistique entre les groupes montre une différence significative (F = 31,63 ; P = 0,0001). L’immunohistochimie
de la TH a également montré une perte massive des afférences dopaminergiques striatales ainsi qu’une perte
cellulaire importante au niveau de la SNc (Fig. 9 B et C). En effet, la densité optique de l’immunomarquage
pour la TH indique une diminution significative suite à la lésion dopaminergique (F = 24,51; P = 0,0002). La
densité optique obtenue pour le groupe sham est de 2,2 ± 1,1, celle du groupe 6-OHDA est de 0,3 ± 0,1 et
celle du groupe de L-Dopa est de 0,4 ± 0,2. Suite à l’administration de L-Dopa, les souris lésées à la 6-OHDA
ont montré un comportement rotatoire important (rotations maintenant controlatérales à la lésion). L’évaluation
de la sévérité des AIMs a révélé un score de 47,7 ± 7,4 pour le groupe L-Dopa (Fig. 9 D).
3.5 Densité des varicosités axonales SERT+ et SERT+/VGluT3+ dans le striatum dorsal
chez la souris parkinsonienne et dyskinétique
La densité des varicosités axonales SERT+ contenues dans le striatum dorsal a été estimée grâce à une
approche stéréologique non biaisée. Les densités obtenues sont de 0,20 ± 0,06 X 106 varicosités axonales
SERT+ par mm3 de tissu pour le groupe sham, 0,28 ± 0,04 X 106 pour le groupe 6-OHDA et 0,20 ± 0,26 X 106
pour le groupe L-Dopa (Fig. 10). La comparaison statistique entre les groupes ne montre pas de différence
significative (P = 0,236). Les densités des varicosités axonales SERT+/VGluT3+ estimées par l'approche
stéréologique dans nos trois groupes expérimentaux est de 0,03 ± 0,01 X 106 varicosités axonales
SERT+/VGluT3+ par mm3 de tissu pour les sham, 0,03 ± 0,01 X 106 pour le groupe 6-OHDA et 0,02 ± 0,02 X
106 pour le groupe L-Dopa. Suite à la comparaison statistique des groupes expérimentaux, il n’est pas
possible d’observer de différence significative (P = 0,379). Le rapport entre les varicosités SERT+/VGluT3+
sur le nombre total de varicosités SERT+ (qu’elles soient VGluT3+ ou VGluT3-) révèle un ratio de 0,13 ± 0,02
pour le groupe sham, 0,09 ± 0,02 pour le groupe 6-OHDA et 0,12 ± 0,02 pour le groupe L-Dopa. Encore une
fois, la comparaison entre les groupes expérimentaux révèle aucune différence significative (P = 0,396).
36
Figure 9: Caractérisation du modèle animal utilisé dans la présente étude
A : Histogramme comparant le nombre de tours à gauche et à droite suite à l’injection de saline (groupe
sham), de 6-OHDA (groupe 6-OHDA) ou de L-Dopa (groupe L-Dopa). Une différence significative a été
observée entre le groupe sham et le groupe 6-OHDA ainsi qu’entre le groupe sham et le groupe L-Dopa (F =
31.63 ; P = 0,0001). B : Histogramme comparant l’immunoréactivité pour la tyrosine hydroxylase (TH) dans le
striatum des souris appartenant aux différents groupes expérimentaux. Une différence significative a été
observée entre le groupe sham et le groupe 6-OHDA ainsi qu’entre le groupe sham et le groupe L-Dopa (F =
11.94 ; P = 0,0026). Une analyse de type ANOVA pour données non paramétriques de Kruskal-Wallis a été
utilisée. C : Sections coronales prises au niveau du striatum antérieur (STR, haut) et de la substance noire
compacte (SNc, bas) d’une souris lésée à la 6-OHDA (droite) et de son contrôle (sham, gauche)
immunomarquées pour la TH. Le marquage TH est significativement réduit du côté droit de la souris lésée
(STR et SNc), ce qui confirme une dénervation DA unilatérale. À la 5e semaine, les animaux subissent un 2e
test comportemental afin d’évaluer les (AIMs). Les animaux n’ayant pas reçu de L-Dopa ne présentent aucun
AIMs, alors que ceux qui ont reçu de la L-Dopa présentent en moyenne un score combiné de 8/12, tel
qu’illustré en D.
37
Le nombre de varicosités axonales SERT+ par mm d’axone SERT+ estimé par l'approche stéréologique est
de 33,7 ± 7,0 pour le groupe sham, 41,3 ± 6,2 pour le groupe 6-OHDA et 30,2 ± 3,7 pour le groupe L-Dopa.
La comparaison entre les groupes démontre aucune différence significative (P = 0,543, Fig. 10 C). Le nombre
de varicosités axonales SERT+/VGluT3+ par mm d’axone estimé par l'approche stéréologique est de 4,0 ±
0,4 pour le groupe sham, 4,5 ± 1,1 pour le groupe 6-OHDA et 4,3 ± 0,5 pour le groupe L-Dopa. La
comparaison entre les groupes ne révèle aucune différence significative (P = 0,915).
38
Figure 10: Photomicrographies et histogrammes comparant la densité des varicositées axonales SERT
et SERT/VGluT3 ainsi que le nombre de varicosités axonales par mm d'axone pour le groupe sham, 6OHDA et L-DOPA.
A: Image du striatum montrant l’immunomarquage de VGluT3+ (en vert) et de SERT+ (en rouge). La tête de
flèche pointe vers une varicosité axonale doublement marquée pour SERT+ et VGluT3+ et la flèche entière
pointe vers une varicosité axonale simplement marquée pour SERT+. B : Histogramme comparant la densité
des terminaisons axonales SERT+ et SERT+/VGluT3+. Les résultats sont exprimés en millions (106) de
varicosités axonales par mm3 de tissu. C : Histogramme comparant le nombre de varicosités axonales SERT+
(en rouge) et SERT+/VGluT3+ (en jaune) par mm d'axone. Aucune différence significative n’est observée suite
aux différentes mesures expérimentales réalisées à la fois pour le nombre de varicosités axonales SERT+ (P
= 0,543) et SERT+/VGluT3+ (P = 0,915) par mm d’axone. Dans les deux cas (B et C), un test d’ANOVA pour
données non paramétriques de Kruskal-Wallis a été utilisé.
39
4. Discussion
4.1 Description de la distribution de SERT et de VGluT3
Dans la première partie de cette étude, nous avons comparé les patrons d’innervation 5-HT (SERT+) de
différentes régions du cerveau de souris, tout en portant une attention particulière aux éléments neuronaux
SERT+ (corps cellulaires et varicosités axonales) qui expriment le transporteur vésiculaire de type 3 du
glutamate (VGluT3). Les résultats de notre étude suggèrent que, de façon générale, très peu de terminaisons
axonales 5-HT expriment le VGluT3. Toutefois, deux groupes de structures font exception à cette règle : a)
l’aire tegmentaire ventrale, la SN et la zone supra-épendymaire du système ventriculaire qui se caractérisent
toutes les trois par un nombre significatif de varicosités axonales SERT+/VGluT3+, et b) le NRD et le NRM
dont les corps cellulaires contiennent à la fois SERT et VGluT3.
La plupart de nos observations vont dans le même sens que plusieurs études publiées précédemment. En
effet, nous avons confirmé la présence d’un réseau très dense de fibres 5-HT dans la partie dorsale du
septum, comme observé chez le cochon d’inde (Shutoh et al., 2008). De plus, en ce qui concerne
l’hippocampe, nous avons également remarqué une forte co-localisation sous le stratum radial, tel que
rapporté précédemment chez le rat (Somogyi et al., 2004). Premièrement, Herzog et al., (2004) ont rapporté
une plus forte densité de VGluT3 dans le striatum que dans le GP et le noyau entopédonculaire chez le rat. La
différence entre les résultats rapportés peut s’expliquer par une différence inter-espèce chez le rongeur.
Comparativement au rat, la souris peut montrer une innervation du pallidum plus importante en axones 5-HT- /
VGluT3+ provenant de neurones situés dans plusieurs régions comme les ailes latérales du NRD.
Deuxièmement Gagnon et Parent (Gagnon & Parent, 2014) ont récemment rapporté un nombre de
terminaisons axonales 5HT+/VGluT3+ beaucoup plus grand dans le striatum par rapport à ce qui a été
observé dans la présente étude. La différence entre les résultats obtenus peut s’expliquer d’au moins deux
façons. Premièrement, une variation inter-espèce peut être la cause de la différence de résultats puisque nous
avons étudié la souris alors que Gagnon et Parent (2014) ont effectués leurs travaux chez le rat. La deuxième
possibilité est que les anticorps utilisés peuvent réagir différemment selon les espèces.
Tel que mentionné précédemment dans l’étude de Gagnon et Parent (2014), il est évident que chaque
structure présente une densité d’innervation qui lui est propre. Cette différence numérique est valable autant
pour ce qui est de la longueur axonale que du nombre de varicosités axonales par unité de longueur de
40
l’axone. Ces varicosités axonales représentent des sites de relâchement potentiels de neurotransmetteurs et
la mesure de leur densité constitue, par le fait même, une estimation valable des différents niveaux de
neurotransmetteurs pouvant être retrouvés dans les structures cibles. Les travaux de reconstruction neuronale
unitaire indiquent qu’un même neurone du noyau raphé dorsal peut présenter des patrons d’arborisation
axonale différents en fonction des structures cibles. Ceci indique que les signaux chimiques libérés par les
neurones cibles lors de la croissance axonale peuvent dicter au neurone le type d’arborisation terminale à
adopter.
4.2 L’innervation SERT+/VGlut3+ du système ventriculaire
Plusieurs études antérieures ont montré l’existence d’un plexus très dense formé d’axones 5-HT qui recouvre
la surface interne de la paroi ventriculaire (Richards, Lorenz, & Tranzer, 1973, Aghajanian & Gallager, 1975,
Lorez & Richards, 1982). Le marquage rétrograde du plexus supra-épendymaire a permis de conclure à une
innervation bilatérale de cette région par les neurones 5-HT du noyau du raphé dorsal (Simpson & al., 1998).
Plus précisément, les corps cellulaires rétrogradement marqués étaient situés dans les sous-noyaux DRNlv,
DRNd et DRNc du noyau du raphé dorsal. De plus, aucun corps cellulaire n’était marqué dans la région rostrale
de ce noyau. Dans le cadre de la présente étude, nous avons démontré, pour la première fois, une présence
importante de la protéine VGlut3 dans les axones 5-HT qui innervent la zone supra-épendymaire. Nous avons
également comparé cette donnée aux résultats obtenus après examen des différentes composantes des GB
ainsi que d’autres régions qui y sont associées. Les axones 5-HT présents dans la couche supra-épendymaire
du système ventriculaire montrent la plus haute concentration de VGluT3 de tout le système nerveux central.
De toutes les structures analysées dans cette étude, la zone supra-épendymaire représente l’unique structure
dont l’immunomarquage de VGluT3 recouvre pratiquement toutes les fibres 5-HT présentes. Amilhon et al.,(
2010) ont observé cette forte concentration de SERT et de VGluT3 autour de l’aqueduc et du troisième
ventricule. Nos données nous permettent d’étendre cette notion et d’affirmer que cette innervation par des
axones SERT/VGluT3 est une caractéristique morphologique et neurochimique de l’ensemble du système
ventriculaire.
En fonction de leur patron d’arborisation axonale, les reconstructions unitaires des neurones 5-HT du noyau
raphé dorsal ont permis de distinguer deux grands types neuronaux (Gagnon et Parent, 2014). Le premier
type se compose de neurones dont l’axone cible principalement les structures associées au système limbique.
Le second type de neurone du DRN présente un axone qui s’arborise dans des structures davantage
associées au système moteur. Les deux types neuronaux présentent des axones fortement collatéralisés. Des
41
32 neurones entièrement reconstruits, aucun n’a présenté d’arborisation axonale dans la zone-épendymaire. Il
est donc impossible de savoir si cette innervation provient d’un neurone dont l’axone est fortement
collatéralisé et se projette sur plus d’un site ou encore d’une population neuronale distincte dont l’innervation
serait dédiée à l’épendyme.
D’un point de vue fonctionnel, les axones 5-HT innervant la zone supra-épendymaire semblent jouer un rôle
primordial face à la réponse au stress. En effet, les corps cellulaires d’où proviennent ces projections peuvent
être activés grâce au neuropeptide urocortin 2 (Hale & al., 2010). Ce peptide est notamment reconnu pour se
lier aux récepteurs du facteur de relâche de la corticotropine de type 2 (Reul and Holsboer, 2002). Hale et al.,
(2010) croient donc que ces afférences 5-HT auraient un rôle important à jouer dans l’expression de l’anxiété.
De plus, l’étude d’Amilhon et al., (2010) a montré que les souris dont le VGLUT3 était supprimé présentaient
un phénotype d’anxiété important. Toutefois, dans ces souris, puisque le VGLUT3 est supprimé de façon
constitutive pour l’ensemble des cellules, il n’a pas été possible d’évaluer le rôle spécifique du VGluT3 au sein
des axones 5-HT. De futurs projets de recherche seront nécessaires afin de mieux comprendre l’importance
de l’innervation 5-HT et VGluT3 de la zone supra-épendymaire dans le développement de maladies reliées à
l’anxiété.
4.3 Quantification stéréologique des varicosités axonales en contexte parkinsonien et
dyskinétique
Dans la seconde partie de cette étude, nous avons, pour la première fois, tenté de corréler la densité des
varicosités axonales 5-HT riches en VGluT3 du striatum avec l’expression de mouvements anormaux induits
par la L-Dopa. Notre étude n’a pas permis d’établir avec certitude ce genre de corrélation. Un plus grand
échantillon pourrait être nécessaire pour démontrer une telle corrélation. Il est également possible que la
densité des varicosités SERT+ /VGlut3+ ne soit pas corrélée avec l’expression de AIMs. En effet, une étude
publiée chez le singe a permis d’observer une augmentation significative de la densité des fibres 5-HT dans le
striatum suite à une dénervation dopaminergique résultant d’une intoxication au 1-méthyl-4-phényl-1,2,3,6tétrahydropyridine (MPTP) (Gagnon et al., sous presse). La très grande similarité méthodologique entre
l’étude menée par Gagnon et al. (sous presse) et celle présentée dans le cadre de ce mémoire renforce l’idée
que les résultats non-concluants obtenus chez la souris s’expliquent par une puissance statistique insuffisante
ou encore par le mode de lésion dopaminergique qui diffère.
42
4.4 Considérations techniques
Les conditions méthodologiques utilisées pour l’immunomarquage ont permis la détection optimale des
varicosités axonales SERT+ et VGluT3+. L’histogramme généré par StereoInvestigator a montré une
distribution uniforme des varicosités SERT+, VGluT3+ et SERT+/VGluT3+ à travers toute l’épaisseur du
dissecteur optique utilisé par le logiciel. Cette distribution uniforme confirme une pénétration adéquate des
anticorps primaires et secondaires. Le décompte stéréologique des varicosités 5-HT riches en VGluT3 dans
tout le striatum dorsal représente donc une estimation fiable du nombre total et réel de ces varicosités
axonales. Enfin, une comparaison statistique non biaisée des résultats obtenus pour les trois groupes
expérimentaux a été possible grâce à une quantification faite à l’aveugle.
4.5 L’impact du nombre de varicosités sérotoninergiques riches en VGluT3 sur la
sévérité des mouvements involontaires anormaux induits par la L-Dopa
Au cours des 20 dernières années, plusieurs études se sont intéressées à la relation entre le système 5-HT, la
MP et les mouvements involontaires anormaux induits par la L-Dopa. D’ailleurs, plusieurs revues de la
littérature traitant de ce sujet ont été publiées (Jenner, 2008 ; Huot et al., 2011 ; Huot, 2015). Un mécanisme
compensatoire semble lier les systèmes 5-HT et dopaminergique puisqu’une dénervation dopaminergique
néonatale induit un bourgeonnement du système 5-HT afin de remplir l’espace vacant (Zhou & al., 1991;
Stachowiak & al., 1984 ; Descarries & al., 1992). Toutefois, les études de l’effet d’une dénervation
dopaminergique sur les neurones 5-HT chez les rongeurs adultes ont produit des résultats contradictoires.
D’une part, Zhou et al., (1991) ainsi que Rozaz et al. (1998) ont rapporté une augmentation de la quantité
d’axones 5-HT après l’administration de 6-OHDA ou de MPTP. Ces résultats soutiennent donc l’hypothèse
voulant que l’absence d’afférence dopaminergique permette aux afférences striatales 5-HT de bourgeonner
chez le rat adulte tout comme chez le souriceau. D’autre part, Takeuchi & al., (1991) décrivent une diminution
de l’innervation 5-HT du striatum chez des rats où la voie nigrostriée a été préalablement lésée, supportant
ainsi l’hypothèse voulant qu’une déafférentation dopaminergique induit une perte, à tout le moins partielle, des
afférences 5-HT. Enfin, Rylander et al. (2010) n’ont pas observé d’impact d’une déafférentation
dopaminergique sur le système 5-HT dans le striatum, bien qu’ils aient observé une augmentation de la
densité de fibres 5-HT striatales dans les cas de AIMs chez le rat. Cette augmentation était également
dépendante de la dose de L-Dopa administrée. En ce qui a trait à nos résultats, nous avons observé une
légère augmentation de l’innervation 5-HT suite à une dénervation dopaminergique. Toutefois, cette
43
augmentation n’était pas statistiquement significative. Ces résultats peuvent s’expliquer par la petite taille de
notre échantillon, d’une part, ainsi que par la grande variabilité du nombre de varicosités d’un animal à
l’autre d’autre part. Ces deux facteurs mis ensemble ont fait qu’il a été difficile d’obtenir des résultats
concluants.
Chez l’humain, jusqu’à 80% des patients traités à la L-Dopa développent des DILs. Le fait que les DILs
apparaissent entre 5 à 10 années suivant le début de la thérapie à la dopamine suggère la présence d’un ou
plusieurs mécanismes reliés à l’administration exogène de L-Dopa en absence de fibre dopaminergique. La
détection par immunohistochimie de dopamine exogène dans les fibres sérotoninergiques de striatum privé de
son innervation dopaminergique indique du système 5-HT en contexte parkinsonien (Yamada et al., 2007).
Une différence fondamentale entre la L-Dopa exogène et endogène est que ce précurseur de la dopamine se
retrouve en concentration près de 100 fois supérieure lorsque administrée de façon exogène (Reed & al.,
2012). Contrairement au système dopaminergique, le système 5-HT est dépourvu de deux protéines
importantes, soit l’autorécepteur à dopamine 2 (D2) et le transporteur transmembranaire de la dopamine
(DAT) (Carta et al., 2007). L’autorécepteur procure la rétroaction négative nécessaire au contrôle du
relâchement de la dopamine. Pour sa part, le DAT joue un rôle de recapture de la dopamine afin d’empêcher
l’accumulation de ce neurotransmetteur dans l’espace extracellulaire. En l’absence de dopamine, l’hypothèse
de l’implication du système 5-HT dans l’expression des DILs est supportée par plusieurs études, dont celles
qui montrent qu’il est possible d’amplifier les DILs en effectuant une greffe striatale de neurones 5-HT
(Carlsson et al., 2007) ou encore celles qui indiquent qu’il est pratiquement impossible d’induire des DILs chez
des animaux dont les neurones 5-HT ont été préalablement lésés (Carta et al., 2007). En ce qui a trait à
l’influence de l’administration de L-Dopa sur les afférences 5-HT, Rylander et al. (2010) ont observé un
bourgeonnement des afférences striatales 5-HT en fonction de la dose de L-Dopa administrée chez le rat.
Malgré l’administration de quantités substantielles de L-Dopa, nous n’avons pas observé d’augmentation
significative du nombre de varicosités axonales 5-HT dans le striatum des animaux du groupe L-Dopa. Il est
donc possible que, même si l’administration de L-Dopa induit des mouvements anormaux chez la souris, cet
apport n’entraîne pas de changement morphologique majeur des fibres 5-HT.
Ces différences concernant les résultats obtenus par les autres groupes de recherche et les nôtres peuvent
s’expliquer de plusieurs façons. D’une part, l’âge de l’animal au moment de la lésion semble influencer
grandement les changements observés au sein du système 5-HT. D’autre part, le choix du modèle animal et
de la toxine injectée (6-OHDA ou MPTP) peut également faire varier les résultats. Enfin, trois sites d’injections
de la neurotoxine sont utilisés, soit la SN, le MFB ou le striatum. Le choix du site d’injection peut certainement
influencer l’intégrité du système 5-HT. L’importance du site d’injection est supportée par le fait que l’injection
44
de 6-OHDA dans le MFB induit des réajustements posturaux beaucoup plus importants que lorsque cette
même neurotoxine est injectée dans le striatum (Chang & al., 1999).
L’étude de l’expression de VGluT3 par les fibres 5-HT pourrait permettre de mieux comprendre le rôle de ce
transporteur du glutamate dans les DILs. En effet, les transporteurs monoaminergiques situés sur une vésicule
contenant le VGluT3 encapsulent une plus grande quantité de neurotransmetteurs (El Mestikawy et al., 2011).
Ainsi, une plus grande quantité de VGluT3 dans les axones 5-HT pourrait faciliter l’empaquetage de la
dopamine suite à l’administration de L-Dopa et ultimement, favoriser l’expression des DILs. Contrairement à
notre hypothèse de départ, nous n’avons pas observé de changement significatif dans le nombre de
varicosités axonales riches en VGluT3 au sein de ces afférences 5-HT du striatum, entre les différents
groupes expérimentaux. De futures recherches seront nécessaires afin d’évaluer si de tels changements
peuvent se produire dans d’autres composantes des GB. De plus, l’absence de changement morphologique
ne signifie pas que le VGluT3 ne joue pas un rôle important dans les DILs. Une étude similaire à la nôtre
réalisée chez des souris dont le gène VGluT3 aura été supprimé permettrait de mieux comprendre le rôle de
cette protéine dans les DILs. De plus, étant donné la petite taille de l’échantillon et la rareté des varicosités
axonales 5-HT riches en VGluT3 chez la souris, il est possible que l’effet que produit le système 5-HT et le
VGluT3 sur les DILs n’ait pas pu être détecté.
4.6 Limites du modèle murin parkinsonien
Il est évident que l’utilisation de rongeurs est essentielle afin de comprendre la physiopathologie de la MP,
d’en soulager les symptômes et, éventuellement, d’y trouver un remède. En effet, la souris a l’avantage d’être
peu dispendieuse et disponible en grand nombre. De plus, son cycle de reproduction rapide permet
l’élaboration de modèles génétiques de la MP. Toutefois, l’utilisation de modèles animaux comporte plusieurs
limites. Du point de vue de l’anatomie des GB, le striatum des rongeurs, par rapport aux primatex, ne possède
pas de ségrégation claire entre putamen et noyau caudé. La composition cellulaire du striatum diffère aussi de
façon importante entre primates et rongeurs (Petryszyn & al., 2014). Malgré ces différences inter-spécifiques
importantes, les rongeurs restent un modèle indispensable dans l’étude de la pathogenèse de la MP. Une
autre limite vient du fait qu’il n’existe pas encore de modèles animaux développant spontanément la MP. Par
conséquent, il n’est pas possible d’observer la présence de corps de Lewy chez les animaux étudiés dans le
cadre de nos recherches. Une autre limitation provient de l’âge des souris. En effet, chez l’humain, l’âge est le
principal facteur de risque de la MP. Or, la dénervation dopaminergique expérimentale se fait habituellement
chez des souris âgées de deux mois, alors que ces animaux ont une espérance de vie de deux à trois ans.
45
Des mécanismes compensatoires différents ou qui réagissent différemment aux lésions peuvent donc survenir
suite à la dénervation dopaminergique chez ces animaux. Une autre différence importante entre la MP et le
modèle murin vient de la rapidité à laquelle la mort cellulaire survient dans la SNc. En effet, une
caractéristique importante de la MP semble être que les symptômes apparaissent après plusieurs années
d’une dégénérescence lente et progressive des neurones dopaminergiques de la SNc. L’utilisation de 6-OHDA
ne permet pas de reproduire ces changements lents et progressifs puisque la mort cellulaire s’effectue dans
les 24 heures suivant l’injection de la neurotoxine (Cleeter et al., 1992). Bien que, permettant d’obtenir de
meilleurs taux de survie, l’injection unilatérale utilisée chez l’animal diffère drastiquement de la perte bilatérale
et progressive des afférences dopaminergiques que l’on observe dans les cas de la MP. La comparaison des
DILs observées chez l’humain et celles pouvant être induite chez la souris révèle également d’importantes
différences. Chez les rongeurs, les mouvements involontaires anormaux se rapprochent plus de mouvements
de type stéréotypique, alors que chez les patients parkinsoniens ces mouvements sont davantage de type
choréique. Cette différence entre le rongeur et l’humain reflète également une organisation différente des
propriétés musculo-squelettiques.
46
5. Conclusion
La présente étude a permis de mettre en évidence la présence de VGluT3 au sein des corps cellulaires et des
axones 5-HT. Pratiquement tous les corps cellulaires 5-HT du NRD ainsi que la majorité de ceux retrouvés
dans le NRM contiennent du VGluT3. Quelques corps cellulaires de ces mêmes noyaux renferment du
VGluT3, sans contenir de 5-HT. En ce qui a trait aux projections axonales, on ne retrouve qu’un faible degré
de co-expression du SERT et VGluT3 au sein des varicosités individuelles, et ce, dans presque toutes les
composantes des GB. Toutefois, deux groupes de structures se distinguent. Le premier groupe est composé
de l’aire tegmentaire ventrale et de la SNc, les deux entités se distinguant par la présence plus forte de
terminaison axonale 5-HT contenant du VGluT3. Le deuxième groupe se compose des noyaux NRD et NRM
ainsi que du système ventriculaire où une présence massive de VGluT3 dans toutes les fibres 5-HT a été
notée. L‘élaboration d’un nouvel anticorps reconnaissant de façon spécifique le VGluT3 chez les singes et
l’homme permettra d’éventuelles recherches visant à vérifier si les données que nous avons obtenues chez la
souris sont transposables aux primates. En effet, il existe des différences interspécifiques importantes entre
rongeurs, singes et humains en ce qui a trait à l’organisation anatomique et neurochimique des GB ainsi que
des afférences qu’ils reçoivent en provenance des noyaux du raphé.
La présente étude a permis d’apporter de nouvelles données dans l’espoir de mieux comprendre l’effet du
VGluT3 dans les terminaisons axonales 5-HT du striatum sur l’expression des mouvements involontaires
anormaux induits par la L-Dopa. Pour la première fois, nous avons observé, de façon non biaisée, que le
nombre de terminaisons axonales 5-HT ainsi que la quantité de VGluT3 au sein de ces terminaisons ne
semble pas être corrélé avec l’expression des DILs chez la souris. Ces résultats sont surprenants puisque
qu’un large pant de la littérature supporte l’hypothèse que le système 5-HT est affecté dans la MP. En effet,
plusieurs études indiquent que la conséquence d’une lésion de la voie nigrostriée dopaminergique chez le
rongeur se traduit par un bourgeonnement des afférences 5-HT, que ce soit en contexte parkinsonien murin
(Zhou et al., 1995 ; Rozas & al., 1998) ou en contexte DILs (Rolander et al., 2010 ; Yamada et al., 2007 ;
Carta et al.,2007). Il se pourrait donc fort bien que la taille de notre échantillon ait été trop petite pour détecter
un tel effet. Afin de bien déterminer le rôle de VGluT3 dans l’apparition des DILs, de futures recherches chez
des souris dont le gène VGluT3 aura été supprimé seront nécessaires pour trancher la question.
Les résultats obtenus dans la présente étude, tant dans des conditions normales que pathologiques,
pourraient inspirer de futures recherches ayant pour sujet d’étude principal la SNr. En effet, de par la présence
de nombreuses terminaisons axonales contenant du VGluT3, cette composante des GB pourrait être une
47
structure de prédilection pour des travaux à venir sur les changements morphologiques induits par la
déafférentation dopaminergique menant à l’apparition des DILs. Chung et al., (2006) ont déjà observé une
augmentation du VGluT3 dans la SNr. Toutefois, la méthodologie utilisée dans cette dernière étude ne
permettait pas de savoir si cette augmentation s’opérait dans les terminaisons axonales 5-HT ou dans d’autres
types d’éléments neuronaux. De plus, aucune recherche de ce genre n’a été effectuée chez des souris ayant
reçu de la L-Dopa. La découverte d’un changement morphologique dans l’une des principales structures de
sortie des GB pourrait se révéler primordiale dans la compréhension des symptômes moteurs de la MP et
pourrait ouvrir la porte à de nouveaux traitements pharmacologiques face à une maladie neurologique
dégénérative pour laquelle il n’existe toujours aucun traitement curatif.
48
Bibliographie
Aarsland, D., Andersen, K., Larsen, J.P., and Lolk, A. (2003). Prevalence and characteristics of dementia in
Parkinson disease: an 8-year prospective study. Arch. Neurol. 60, 387–392.
Abrams, J.K., Johnson, P.L., Hollis, J.H., and Lowry, C.A. (2004). Anatomic and Functional Topography of the
Dorsal Raphe Nucleus. Ann. N. Y. Acad. Sci. 1018, 46–57.
Aghajanian, G.K., and Gallager, D.W. (1975). Raphe origin of serotonergic nerves terminating in the cerebral
ventricles. Brain Res. 88, 221–231.
Akiyama, H., Kaneko, T., Mizuno, N., and McGeer, P.L. (1990). Distribution of phosphate‐activated
glutaminase in the human cerebral cortex. J. Comp. Neurol. 297, 239–252.
Amilhon, B., Lepicard, E., Renoir, T., Mongeau, R., Popa, D., Poirel, O., Miot, S., Gras, C., Gardier, A.M.,
Gallego, J., et al. (2010). VGLUT3 (Vesicular Glutamate Transporter Type 3) Contribution to the Regulation of
Serotonergic Transmission and Anxiety. J. Neurosci. 30, 2198–2210.
Arriza, J.L., Eliasof, S., Kavanaugh, M.P., and Amara, S.G. (1997). Excitatory amino acid transporter 5, a
retinal glutamate transporter coupled to a chloride conductance. Proc. Natl. Acad. Sci. 94, 4155–4160.
Baba, M., Nakajo, S., Tu, P.-H., Tomita, T., Nakaya, K., Lee, V.M., Trojanowski, J.Q., and Iwatsubo, T. (1998).
Aggregation of alpha-synuclein in Lewy bodies of sporadic Parkinson’s disease and dementia with Lewy
bodies. Am. J. Pathol. 152, 879.
Baker, K.G., Halliday, G.M., and Törk, I. (1990). Cytoarchitecture of the human dorsal raphe nucleus. J. Comp.
Neurol. 301, 147–161.
Baker, K.G., Halliday, G.M., Hornung, J.-P., Geffen, L.B., and Cotton, R.G.H. (1991). Distribution, morphology
and number of monoamine-synthesizing and substance P-containing neurons in the human dorsal raphe
nucleus. Neuroscience 42, 757–775.
Bellocchio, E.E., Reimer, R.J., Fremeau, R.T., and Edwards, R.H. (2000). Uptake of glutamate into synaptic
vesicles by an inorganic phosphate transporter. Science 289, 957–960.
Bennett, D.A., Beckett, L.A., Murray, A.M., Shannon, K.M., Goetz, C.G., Pilgrim, D.M., and Evans, D.A. (1996).
Prevalence of parkinsonian signs and associated mortality in a community population of older people. N. Engl.
J. Med. 334, 71–76.
Berger, M., Gray, J.A., and Roth, B.L. (2009). The Expanded Biology of Serotonin. Annu. Rev. Med. 60, 355–
366.
Bérubé-Carrière, N., Riad, M., Dal Bo, G., Lévesque, D., Trudeau, L.-É., and Descarries, L. (2009). The dual
dopamine-glutamate phenotype of growing mesencephalic neurons regresses in mature rat brain. J. Comp.
Neurol. 517, 873–891.
Birkmayer, W., and Hornykiewicz, O. (1961). The effect of 3, 4-dihydroxyphenylaline (= DOPA) on
Parkinsonian akinesia. Wien Klin Wochenschr 73, 787–788.
Braak, H., Del Tredici, K., Bratzke, H., Hamm-Clement, J., Sandmann-Keil, D., and Rüd, U. (2002). Staging of
the intracerebral inclusion body pathology associated with idiopathic Parkinson’s disease (preclinical and
clinical stages). J. Neurol. 249, 1–1.
Breese, G.R., and Traylor, T.D. (1971). Depletion of brain noradrenaline and dopamine by
6‐hydroxydopamine. Br. J. Pharmacol. 42, 88–99.
Burn, D.J. (2002). Beyond the iron mask: Towards better recognition and treatment of depression associated
with Parkinson’s disease. Mov. Disord. 17, 445–454.
Calne, D.B., Teychenne, P.F., Claveria, L.E., Eastman, R., Greenacre, J.K., and Petrie, A. al (1974).
Bromocriptine in parkinsonism. BMJ 4, 442–444.
Carlsson, T., Carta, M., Winkler, C., Bjorklund, A., and Kirik, D. (2007). Serotonin Neuron Transplants
Exacerbate L-DOPA- Induced Dyskinesias in a Rat Model of Parkinson’s Disease. J. Neurosci. 27, 8011–
8022.
Carta, M., Carlsson, T., Kirik, D., and Bjorklund, A. (2007). Dopamine released from 5-HT terminals is the
cause of L-DOPA-induced dyskinesia in parkinsonian rats. Brain 130, 1819–1833.
49
Carta, M., Carlsson, T., Munoz, A., Kirik, D., and Bjorklund, A. (2008). Serotonin–dopamine interaction in the
induction and maintenance of L-DOPA-induced dyskinesias. In Progress in Brain Research, (Elsevier), pp.
465–478.
Chang, J.-W., Wachtel, S.R., Young, D., and Kang, U.-J. (1999). Biochemical and anatomical characterization
of forepaw adjusting steps in rat models of Parkinson’s disease: studies on medial forebrain bundle and striatal
lesions. Neuroscience 88, 617–628.
Chaudhuri, K.R., and Naidu, Y. (2008). Early Parkinson’s disease and non-motor issues. J. Neurol. 255, 33–
38.
Cheshire, P., Ayton, S., Bertram, K.L., Ling, H., Li, A., McLean, C., Halliday, G.M., O’Sullivan, S.S., Revesz,
T., and Finkelstein, D.I. (2015). Serotonergic markers in Parkinson’s disease and levodopa‐induced
dyskinesias. Mov. Disord. 30, 796–804.
Choi, D.W. (1985). Glutamate neurotoxicity in cortical cell culture is calcium dependent. Neurosci. Lett. 58,
293–297.
Chung, E.K.Y., Chen, L.W., Chan, Y.S., and Yung, K.K.L. (2006). Up-Regulation in Expression of Vesicular
Glutamate Transporter 3 in Substantia Nigra but Not in Striatum of 6-Hydroxydopamine-Lesioned Rats.
Neurosignals 15, 238–248.
Cleeter, M.W.J., Cooper, J.M., and Schapira, A.H.V. (1992). Irreversible inhibition of mitochondrial complex I
by 1‐methyl‐4‐phenylpyridinium: evidence for free radical involvement. J. Neurochem. 58, 786–789.
Crissman, R.S., Arce, E.A., Bennett-Clarke, C.A., Mooney, R.D., and Rhoades, R.W. (1993). Reduction in the
percentage of serotoninergic axons making synapses during the development of the superficial layers of the
hamster’s superior colliculus. Dev. Brain Res. 75, 131–135.
Dahlström, A., and Fuxe, K. (1964). Evidence for the existence of monoamine-containing neurons in the
central nervous system. I. Demonstration of monoamines in the cell bodies of brain stem neurons. Acta
Physiol. Scand. Suppl.
Damier, P., Hirsch, E.C., Agid, Y., and Graybiel, A.M. (1999). The substantia nigra of the human brain II
Patterns of loss of dopamine-containing neurons in Parkinson’s disease. Brain 122, 1437–1448.
Descarries, L., Soghomonian, J.-J., Garcia, S., Doucet, G., and Bruno, J.P. (1992). Ultrastructural analysis of
the serotonin hyperinnervation in adult rat neostriatum following neonatal dopamine denervation with 6hydroxydopamine. Brain Res. 569, 1–13.
Dinan, T.G. (1996). Serotonin and the regulation of hypothalamic-pituitary-adrenal axis function. Life Sci. 58,
1683–1694.
Ehringer, H., and Hornykiewicz, O. (1960). Distribution of noradrenaline and dopamine (3-hydroxytyramine) in
the human brain and their behavior in diseases of the extrapyramidal system. Klin. Wochenschr. 38, 1236.
El Mestikawy, S., Wallén-Mackenzie, Å., Fortin, G.M., Descarries, L., and Trudeau, L.-E. (2011). From
glutamate co-release to vesicular synergy: vesicular glutamate transporters. Nat. Rev. Neurosci. 12, 204–216.
ERSPAMER, V. (1952). Observations on alleged serotonin-(enteramine)-like nature of cerebral pressor
substance of Taylor, Page, and Corcoran. AMA Arch. Intern. Med. 90, 505–512.
Fairman, W.A., Vandenberg, R.J., Arriza, J.L., Kavanaught, M.P., and Amara, S.G. (1995). An excitatory
amino-acid transporter with properties of a ligand-gated chloride channel. Nature.
Falck, B., Hillarp, N.A., and Torp, A. (1962). Fluorescence of catcchol amines and related compounds with
formaldehyde. J. Histochem. Cytochem. 10, 348–354.
Fearnley, J.M., and Lees, A.J. (1991). Ageing and Parkinson’s disease: substantia nigra regional selectivity.
Brain 114, 2283–2301.
Felten, D.L., and Sladek, J.R. (1983). Monoamine distribution in primate brain V. Monoaminergic nuclei:
anatomy, pathways and local organization. Brain Res. Bull. 10, 171–284.
Fu, W., Le Maître, E., Fabre, V., Bernard, J.-F., David Xu, Z.-Q., and Hökfelt, T. (2010). Chemical
neuroanatomy of the dorsal raphe nucleus and adjacent structures of the mouse brain. J. Comp. Neurol. 518,
3464–3494.
Gagnon, D., and Parent, M. (2014). Distribution of VGLUT3 in Highly Collateralized Axons from the Rat Dorsal
Raphe Nucleus as Revealed by Single-Neuron Reconstructions. PLoS ONE 9, e87709.
50
Gagnon, D., Gregoire, L., Di Paolo, T., and Parent, M. (2015). Serotonin hyperinnervation of the striatum with
high synaptic incidence in parkinsonian monkeys. Brain Struct. Funct. 1–17.
Gras, C., Herzog, E., Bellenchi, G.C., Bernard, V., Ravassard, P., Pohl, M., Gasnier, B., and El Mestikawy, S.
(2002). A third vesicular glutamate transporter expressed by cholinergic and serotoninergic neurons. J.
Neurosci. 22, 5442–5451.
Gras, C., Amilhon, B., Lepicard, È.M., Poirel, O., Vinatier, J., Herbin, M., Dumas, S., Tzavara, E.T., Wade,
M.R., and Nomikos, G.G. (2008). The vesicular glutamate transporter VGLUT3 synergizes striatal
acetylcholine tone. Nat. Neurosci. 11, 292–300.
Hale, M.W., Stamper, C.E., Staub, D.R., and Lowry, C.A. (2010). Urocortin 2 increases c-Fos expression in
serotonergic neurons projecting to the ventricular/periventricular system. Exp. Neurol. 224, 271–281.
Halliday, G.M., Li, Y.W., Blumbergs, P.C., Joh, T.H., Cotton, R.G.H., Howe, P.R.C., Blessing, W.W., and
Geffen, L.B. (1990). Neuropathology of immunohistochemically identified brainstem neurons in Parkinson’s
disease. Ann. Neurol. 27, 373–385.
Herzog, E., Gilchrist, J., Gras, C., Muzerelle, A., Ravassard, P., Giros, B., Gaspar, P., and El Mestikawy, S.
(2004). Localization of VGLUT3, the vesicular glutamate transporter type 3, in the rat brain. Neuroscience 123,
983–1002.
Hornung, J.-P. (2003). The human raphe nuclei and the serotonergic system. J. Chem. Neuroanat. 26, 331–
343.
Huot, P., Fox, S.H., and Brotchie, J.M. (2011). The serotonergic system in Parkinson’s disease. Prog.
Neurobiol. 95, 163–212.
Jacobs, B.L., and Fornal, C.A. (1997). Serotonin and motor activity. Curr. Opin. Neurobiol. 7, 820–825.
Juge, N., Gray, J.A., Omote, H., Miyaji, T., Inoue, T., Hara, C., Uneyama, H., Edwards, R.H., Nicoll, R.A., and
Moriyama, Y. (2010). Metabolic Control of Vesicular Glutamate Transport and Release. Neuron 68, 99–112.
Kanai, Y., and Hediger, M.A. (1992). Primary structure and functional characterization of a high-affinity
glutamate transporter. Nature 360, 467–470.
Kosofsky, B.E., and Molliver, M.E. (1987). The serotoninergic innervation of cerebral cortex: different classes
of axon terminals arise from dorsal and median raphe nuclei. Synapse 1, 153–168.
Lang, A.E., and Lozano, A.M. (1998). Parkinson’s disease. N. Engl. J. Med. 339, 1030–1043.
Li, Y.-Q., Li, H., Kaneko, T., and Mizuno, N. (2001). Morphological features and electrophysiological properties
of serotonergic and non-serotonergic projection neurons in the dorsal raphe nucleus: An intracellular recording
and labeling study in rat brain slices. Brain Res. 900, 110–118.
Lidov, H.G.W., Grzanna, R., and Molliver, M.E. (1980). The serotonin innervation of the cerebral cortex in the
rat—an immunohistochemical analysis. Neuroscience 5, 207–227.
Lorez, H.P., and Richards, J.G. (1982). Supra-Ependymal Serotoninergic Nerves in Mammalian Brain:
Morphological, Pharmacological and Functional Studies. Brain Res. Bull. 9, 727–741.
Marsden, C.D. (1987). Parkinson’s disease in twins. J. Neurol. Neurosurg. Psychiatry 50, 105.
Martinez-Martin, P., Schapira, A.H.V., Stocchi, F., Sethi, K., Odin, P., MacPhee, G., Brown, R.G., Naidu, Y.,
Clayton, L., Abe, K., et al. (2007). Prevalence of nonmotor symptoms in Parkinson’s disease in an international
setting; Study using nonmotor symptoms questionnaire in 545 patients. Mov. Disord. 22, 1623–1629.
Mason, G.F., Rothman, D.L., Behar, K.L., and Shulman, R.G. (1992). NMR determination of the TCA cycle
rate and α-ketoglutarate/glutamate exchange rate in rat brain. J. Cereb. Blood Flow Metab. 12, 434–447.
Michel, P.P., and Hefti, F. (1990). Toxicity of 6‐hydroxydopamine and dopamine for dopaminergic neurons in
culture. J. Neurosci. Res. 26, 428–435.
Moore, D.J., West, A.B., Dawson, V.L., and Dawson, T.M. (2005). Molecular pathophysiology of Parkinson’s
disease. Annu Rev Neurosci 28, 57–87.
Naito, S., and Ueda, T. (1985). Characterization of glutamate uptake into synaptic vesicles. 44, 99–109.
Ni, B., Rosteck, P.R., Nadi, N.S., and Paul, S.M. (1994). Cloning and expression of a cDNA encoding a brainspecific Na (+)-dependent inorganic phosphate cotransporter. Proc. Natl. Acad. Sci. 91, 5607–5611.
Nieuwenhuys, R., Voogd, J., and van Huijzen, C. (2008). The human Central Nervous System (Germany:
Springer).
51
Parent, A., Descarries, L., and Beaudet, A. (1981). Organization of ascending serotonin systems in the adult
rat brain. A radioautographic study after intraventricular administration of [3 H] 5-hydroxytryptamine.
Neuroscience 6, 115–138.
Paulus, W., and Jellinger, K. (1991). The neuropathologic basis of different clinical subgroups of Parkinson’s
disease. J. Neuropathol. Exp. Neurol. 50, 743–755.
Paxinos, G., and Franklin, K.B. (2004). The mouse brain in stereotaxic coordinates (Gulf Professional
Publishing).
Petryszyn, S., Beaulieu, J.-M., Parent, A., and Parent, M. (2014). Distribution and morphological
characteristics of striatal interneurons expressing calretinin in mice: A comparison with human and nonhuman
primates. J. Chem. Neuroanat. 59-60, 51–61.
Porter, C.C., Totaro, J.A., and Stone, C.A. (1963). Effect of 6-hydroxydopamine and some other compounds
on the concentration of norepinephrine in the hearts of mice. J. Pharmacol. Exp. Ther. 140, 308–316.
Purves, D., Augustine, G.J., Fitzpatrick, D., Katz, L.C., LaMantia, A.-S., McNamara, J.O., and Williams, S.M.
(2001). The Biogenic Amines.
Rajput, A.H., Fenton, M.E., Birdi, S., Macaulay, R., George, D., Rozdilsky, B., Ang, L.C., Senthilselvan, A., and
Hornykiewicz, O. (2002). Clinical-Pathological study of levodopa complications. Mov. Disord. 17, 289–296.
Rapport, M.M., Green, A., and Page, J. (1949). Serum vasoconstrictor (serotonin). J Biol Chem 176, 1243–
1251.
Reed, M.C., Nijhout, H.F., and Best, J.A. (2012). Mathematical insights into the effects of levodopa. Front.
Integr. Neurosci. 6.
Remy, P. (2005). Depression in Parkinson’s disease: loss of dopamine and noradrenaline innervation in the
limbic system. Brain 128, 1314–1322.
Reul, J.M., and Holsboer, F. (2002). Corticotropin-releasing factor receptors 1 and 2 in anxiety and depression.
Curr. Opin. Pharmacol. 2, 23–33.
Richards, J.G., Lorenz, H.P., and Tranzer, J.P. (1973). Indolealkylamine nerve terminals in cerebral ventricles:
identification by electron microscopy and fluorescence histochemistry. Brain Res. 57, 277–288.
Rozas, G., Liste, I., Guerra, M.J., and Labandeira-Garcia, J.L. (1998). Sprouting of the serotonergic afferents
into striatum after selective lesion of the dopaminergic system by MPTP in adult mice. Neurosci. Lett. 245,
151–154.
Schiffer, R.B., Kurlan, R., Rubin, A., and Boer, S. (1988). Evidence for atypical depression in Parkinson’s
disease. Am J Psychiatry 145, 1020–1022.
Senoh, S., Creveling, C.R., Udenfriend, S., and Witkop, B. (1959). Chemical, Enzymatic and Metabolic Studies
on the Mechanism of Oxidation of Dopamine1. J. Am. Chem. Soc. 81, 6236–6240.
Shulman, L.M., Taback, R.L., Bean, J., and Weiner, W.J. (2001). Comorbidity of the nonmotor symptoms of
Parkinson’s disease. Mov. Disord. 16, 507–510.
Shutoh, F., Ina, A., Yoshida, S., Konno, J., and Hisano, S. (2008). Two distinct subtypes of serotonergic fibers
classified by co-expression with vesicular glutamate transporter 3 in rat forebrain. Neurosci. Lett. 432, 132–
136.
Simpson, K.L., Fisher, T.M., Waterhouse, B.D., and Lin, R. (1998). Projection patterns from the raphe nuclear
complex to the ependymal wall of the ventricular system in the rat. J. Comp. Neurol. 399, 61–72.
Soghomonian, J.-J., Doucet, G., and Descarries, L. (1987). Serotonin innervation in adult rat neostriatum. I.
Quantified regional distribution. Brain Res. 425, 85–100.
Somogyi, J., Baude, A., Omori, Y., Shimizu, H., Mestikawy, S.E., Fukaya, M., Shigemoto, R., Watanabe, M.,
and Somogyi, P. (2004). GABAergic basket cells expressing cholecystokinin contain vesicular glutamate
transporter type 3 (VGLUT3) in their synaptic terminals in hippocampus and isocortex of the rat. Eur. J.
Neurosci. 19, 552–569.
Stachowiak, M.K., Bruno, J.P., Snyder, A.M., Stricker, E.M., and Zigmond, M.J. (1984). Apparent sprouting of
striatal serotonergic terminals after dopamine-depleting brain lesions in neonatal rats. Brain Res. 291, 164–
167.
Steinbusch, H.W.M. (1981a). Distribution of serotonin-immunoreactivity in the central nervous system of the
rat—cell bodies and terminals. Neuroscience 6, 557–618.
52
Stowe, R.L., Ives, N.J., Clarke, C., Van Hilten, J., Ferreira, J., Hawker, R.J., Shah, L., Wheatley, K., and Gray,
R. (2008). Dopamine agonist therapy in early Parkinson’s disease. Cochrane Database Syst Rev 2, 1–92.
Takeuchi, Y., Sawada, T., Blunt, S., Jenner, P., and Marsden, C.D. (1991). Effects of 6-hydroxydopamine
lesions of the nigrostriatal pathway on striatal serotonin innervation in adult rats. Brain Res. 562, 301–305.
Ungerstedt, U. (1971). Postsynaptic supersensitivity after 6‐hydroxy‐dopamine induced degeneration of the
nigro‐striatal dopamine system. Acta Physiol. Scand. 82, 69–93.
Varoqui, H., Zhu, H., Yao, D., Ming, H., and Erickson, J.D. (2000). Cloning and functional identification of a
neuronal glutamine transporter. J. Biol. Chem. 275, 4049–4054.
Vialli, M., and Erspamer, D.V. (1937). Ricerche sul secreto delle cellule enterocromaffini. Z. Für Zellforsch.
Mikrosk. Anat. 27, 81–99.
Wallman, M.-J., Gagnon, D., and Parent, M. (2011). Serotonin innervation of human basal ganglia: Serotonin
inputs to basal ganglia. Eur. J. Neurosci. 33, 1519–1532.
Woolley, D.W., and Shaw, E. (1954). A biochemical and pharmacological suggestion about certain mental
disorders. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 40, 228.
Xie, X.-S., Stone, D.K., and Racker, E. (1983). Determinants of clathrin-coated vesicle acidification. J. Biol.
Chem. 258, 14834–14838.
Yamada, H., Aimi, Y., Nagatsu, I., Taki, K., Kudo, M., and Arai, R. (2007a). Immunohistochemical detection of
l-DOPA-derived dopamine within serotonergic fibers in the striatum and the substantia nigra pars reticulata in
Parkinsonian model rats. Neurosci. Res. 59, 1–7.
Zhou, F.C., Bledsoe, S., and Murphy, J. (1991). Serotonergic sprouting is induced by dopamine-lesion in
substantia nigra of adult rat brain. Brain Res. 556, 108–116.
Zhou, F.C., Azmitia, E.C., and Bledsoe, S. (1995). Rapid serotonergic fiber sprouting in response to ibotenic
acid lesion in the striatum and hippocampus. Dev. Brain Res. 84, 89–98.
53
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