C. Existence d’une triade catalytique
C’est la résolution cristallographique de la structure tertiaire de la chymotrypsine par diffraction
aux rayons X qui a permis de situer le noyau imidazole de l’His57 à environ 3.8 Ǻ de la Ser195.
À proximité de l’His57 on trouve également le groupe carboxylate de l’Asp 102 situé à 2.8 Ǻ du
groupe imidazole. La conformation de ces trois résidus est stabilisée par une série de liaisons
hydrogène.
Ce réseau de liaisons hydrogène augmente le caractère nucléophile de la Ser195 dont dépend
l’activité de l’enzyme.
Le rôle de l’Asp102 a été vérifié par mutagénèse dirigée. On a remplacé l’Asp102 par un résidu
isostérique non chargé : l’Asn. Le mutant Asp102Asn a des propriétés cinétiques qui diffèrent
largement de celles de l’enzyme sauvage. Son KM n’est pas très différent mais le paramètre kcat
se trouve diminué d’un facteur de 5000. Il est donc clair que le résidu Asp102 est important pour
la catalyse enzymatique, mais pas absolument nécessaire.
Dans le cas du mutant Asp102Asn, le pKa de l’His57 est abaissé de 1.5 unités de pH. Ceci
souligne l’importance du microenvironnement d’un résidu ionisant quant à la valeur de son pKa.
Le mutant Asp102Asn réagit 10000 fois moins vite avec le DFP que l’enzyme sauvage, et 10
fois moins vite avec le RLCK. La nucléophilicité de la Ser195 est donc nettement diminuée, par
contre, la réactivité de l’His57 semble moins affectée pour la réaction avec le TLCK. L’effet
principal de la mutation de l’Asp102 se situe au niveau de la réactivité de la Ser195 qui confère à
la Ser195 son caractère nucléophile élevé.
BCM 2504 Cinétique et mécanisme des protéases Page 1.12