Correspondances en Onco-Théranostic - Vol. I - n° 3 - juillet-août-septembre 2012
110
ALK
dossier thématique
Accédez à la pathologie moléculaire
avec Roche, votre partenaire pour l’avenir.
Porté par les valeurs d’innovation et de progrès, Roche Diagnostics s’investit chaque jour dans la recherche
et le développement pour proposer aux pathologistes le meilleur du diagnostic : une offre d’instruments
complète et une large gamme de marqueurs VENTANA®, des technologies telles que l’IHC et l’HIS.
Aujourd’hui Roche va plus loin et vous ouvre les portes du diagnostic moléculaire avec la PCR et le séquençage :
grâce à ce savoir-faire de pointe et à un accompagnement au quotidien, Roche acquiert une longueur d’avance
dans l’histopathologie et se place comme le partenaire d’aujourd’hui et de demain.
L’anticorps VENTANA® ALK (D5F3), bientôt disponible.
Dernière concrétisation de l’expertise Roche Diagnostics, l’anticorps VENTANA® ALK (D5F3),
utilisé dans le diagnostic broncho-pulmonaire, arrive prochainement sur le marché.
Pour être informé de sa mise à disposition, flashez le code ci-contre ou rendez-vous sur www.roche-alk.com.
Septembre 2012
AP RTD ALK EVDEF2.indd 1 04/09/12 12:18
évidence par cette technique, mais une confirmation
par une autre technique (IHC ou FISH) est nécessaire,
en particulier dans le cas de l’absence de variant, afin
d’éliminer tout risque de faux négatif.
FISH
La FISH est la technique de référence pour la mise en
évidence des réarrangements d’ALK dans les CBNPC,
la présence en FISH d’un réarrangement d’ALK dans
plus de 15 % des cellules tumorales étant le test dia-
gnostique utilisé pour l’inclusion des patients dans un
protocole de traitement par crizotinib à ce jour (22).
L’utilisation de sondes break-apart (ou split) permet la
mise en évidence d’un réarrangement d’ALK quel que
soit son partenaire (figure 3, B, p. 109), mais l’interpré-
tation du résultat est parfois difficile, surtout pour les
réarrangements intrachromosomiques conduisant à
une séparation des signaux FISH (indiquant un réar-
rangement) parfois ténue. Les sondes dites de fusion,
spécifiques de 2 partenaires connus, permettent d’iden-
tifier le partenaire de fusion d’ALK.
Conclusion : algorithme diagnostique
Les mutations d’EGFR et de KRAS et les réarrangements
du gène ALK étant considérées comme mutuellement
exclusives, l’INCa a privilégié dans ses programmes
de 2011 et de 2012 le testing ALK des adénocarci-
nomes métastatiques sans mutation d’EGFR ni de
KRAS ; cependant, cet algorithme diagnostique est
actuellement discuté, car plusieurs cas d’adénocarci-
nomes à la fois mutés pour EGFR et réarrangés pour
ALK ont été rapportés. La technique de référence
choisie dans ces programmes de l’INCa était la FISH,
mais, pour des raisons financières et de facilité d’uti-
lisation, la possibilité d’un screening à grande échelle
par immunohistochimie, dès le diagnostic histolo-
gique, est envisagée, avec la nécessité de confirmer les
cas positifs ou douteux par la FISH ou la RT-PCR. Une
étude nationale et plusieurs études internationales
de validation d’un tel algorithme diagnostique sont
en cours et devraient assez rapidement permettre de
statuer sur sa faisabilité. ■
1. Travis WD, Brambilla E, Noguchi M et al. International
Association for the Study of Lung Cancer/American Thoracic
Society/European Respiratory Society international multi-
disciplinary classification of lung adenocarcinoma. J Thorac
Oncol 2011;6(2):244-85.
2. Pirker R, Pereira JR, von Pawel J et al. EGFR expression as a
predictor of survival for first-line chemotherapy plus cetuxi-
mab in patients with advanced non-small-cell lung cancer:
analysis of data from the phase 3 FLEX study. Lancet Oncol
2011;13(1):33-42.
3. Shigematsu H, Gazdar AF. Somatic mutations of epidermal
growth factor receptor signaling pathway in lung cancers. Int
J Cancer 2006;118(2):257-62.
4. Mok TS, Wu YL, Thongprasert S et al. Gefitinib or carbopla-
tin-paclitaxel in pulmonary adenocarcinoma. N Engl J Med
2009;361(10):947-57.
5. Soda M, Choi YL, Enomoto M et al. Identification of the
transforming EML4-ALK fusion gene in non-small-cell lung
cancer. Nature 2007;448(7153):561-6.
6. Horn L, Pao W. EML4-ALK: honing in on a new target
in non-small-cell lung cancer. J Clin Oncol 2009;27(26):
4232-5.
7.
Koivunen JP, Mermel C, Zejnullahu K et al. EML4-ALK fusion
gene and efficacy of an ALK kinase inhibitor in lung cancer.
Clin Cancer Res 2008;14(13):4275-83.
8.
Sanders HR, Li HR, Bruey JM et al. Exon scanning by reverse
transcriptase-polymerase chain reaction for detection of
known and novel EML4-ALK fusion variants in non-small cell
lung cancer. Cancer Genet;204(1):45-52.
9. Sasaki T, Rodig SJ, Chirieac LR et al. The biology and treat-
ment of EML4-ALK non-small cell lung cancer. Eur J Cancer
2010;46(10):1773-80.
10.
Takeuchi K, Choi YL, Togashi Y et al. KIF5B-ALK, a novel
fusion oncokinase identified by an immunohistochemistry-
based diagnostic system for ALK-positive lung cancer. Clin
Cancer Res 2009;15(9):3143-9.
11. Rikova K, Guo A, Zeng Q et al. Global survey of phospho-
tyrosine signaling identifies oncogenic kinases in lung cancer.
Cell 2007;131(6):1190-203.
12. Togashi Y, Soda M, Sakata S et al. KLC1-ALK: a novel fusion
in lung cancer identified using a formalin-fixed paraffin-
embedded tissue only. PLoS One 2012;7(2):e31323.
13. Rodig SJ, Mino-Kenudson M, Dacic S et al. Unique cli-
nicopathologic features characterize ALK-rearranged lung
adenocarcinoma in the western population. Clin Cancer Res
2009;15(16):5216-23.
14. Inamura K, Takeuchi K, Togashi Y et al. EML4-ALK lung
cancers are characterized by rare other mutations, a TTF-1
cell lineage, an acinar histology, and young onset. Mod Pathol
2009;22(4):508-15.
15.
Kwak EL, Bang YJ, Camidge DR et al. Anaplastic lymphoma
kinase inhibition in non-small-cell lung cancer. N Engl J Med
2010;363(18):1693-703.
16. Ou SH, Bazhenova L, Camidge DR et al. Rapid and dramatic
radiographic and clinical response to an ALK inhibitor (crizoti-
nib, PF02341066) in an ALK translocation-positive patient with
non-small cell lung cancer. J Thorac Oncol 2010;5(12):2044-6.
17.
Yi ES, Boland JM, Maleszewski JJ et al. Correlation of IHC
and FISH for ALK gene rearrangement in non-small cell lung
carcinoma: IHC score algorithm for FISH. J Thorac Oncol
2011;6(3):459-65.
18.
Mino-Kenudson M, Chirieac LR, Law K et al. A novel, highly
sensitive antibody allows for the routine detection of ALK-
rearranged lung adenocarcinomas by standard immunohis-
tochemistry. Clin Cancer Res 2010;16(5):1561-71.
19. Paik JH, Choe G, Kim H et al. Screening of anaplastic lym-
phoma kinase rearrangement by immunohistochemistry in
non-small cell lung cancer: correlation with fluorescence in situ
hybridization. J Thorac Oncol 2011;6(3):466-72.
20. Jokoji R, Yamasaki T, Minami S et al. Combination of
morphological feature analysis and immunohistochemistry
is useful for screening of EML4-ALK-positive lung adenocar-
cinoma. J Clin Pathol 2010;63(12):1066-70.
21.
McLeer-Florin A, Moro-Sibilot D, Melis A et al. Dual IHC
and FISH testing for ALK gene rearrangement in lung ade-
nocarcinomas in a routine practice: a French study. J Thorac
Oncol 2012;7(2):348-54.
22. Camidge DR, Theodoro M, Maxson DA et al. Correlations
between the percentage of tumor cells showing an ALK (ana-
plastic lymphoma kinase) gene rearrangement, ALK signal copy
number, and response to crizotinib therapy in ALK fluorescence
in situ hybridization-positive nonsmall cell lung cancer. Cancer
2012;118(18):4486-94.
Références