HPT UAA3 FA8 150425
AUTEURS : Brigitte Janssens, Pascale Papleux
5 février 2015
Fiche d’expérience 5
A la recherche des organites responsables de la
photosynthèse
Enoncé de l’activité
Au cours de cette activité, l’élève mettra en évidence l’organite responsable
de la photosynthèse dans les cellules d’une plante verte aquatique : l’élodée
du Canada.
Développements attendus principalement visés
Légender un dessin ou un schéma d’une cellule animale et d’une cellule végétale observée en
microscopie optique (C1).
Réaliser le dessin d’une cellule observée au microscope optique et estimer son ordre de grandeur
(A1).
L’élève réalise et légende le schéma ou le dessin d’une cellule animale et d’une cellule végétale
observées au microscope optique. Connaissant le grossissement du microscope, il estime l’ordre de
grandeur de la cellule observée.
Mettre en relation les organites cellulaires étudiés avec les quatre fonctions que sont la nutrition et
l’excrétion, la respiration et la photosynthèse (C2).
L’élève complète un tableau reprenant les organites cellulaires étudiés et les quatre fonctions associées
(nutrition, excrétion, respiration et photosynthèse).
1. Matériel et produits
- 4 berlins 100 mL
- Plaque chauffante
- Récipient pouvant aller sur une plaque chauffante
- 2 boites de Pétri
- Eau du robinet
- Eau distillée
- Alcool (alcool à brûler composé d’éthanol)
- Lugol
- 2 lames porte-objet + 2 lamelles
HPT
Formation scientifique
UAA3 Partie I
HPT UAA3 FA8 150425
- Microscope optique
2. Notes techniques
Pour mettre en évidence la matière organique (et plus particulièrement les glucides comme l’amidon)
présente dans les feuilles, on utilise un colorant : le lugol. Le lugol colore les sucres présents avec
une couleur bleue intense.
3. Procédure
1) Placer dans deux récipients différents remplis d’eau, deux tiges d’élodées bien fraîches.
2) Laisser pendant 3 jours le premier récipient à l’obscuri.
3) Laisser pendant 3 jours le second récipient à la lumière du jour.
4) Après 3 jours, prélever une tige du récipient placé à l’obscurité.
5) Décolorer pendant quelques secondes la tige dans l’alcool bouillant, chauffé avec un bain-marie
sur une plaque chauffante.
6) Rincer dans un berlin contenant de l’eau distillée (ou à l’eau du robinet).
7) Placer pendant quelques minutes les feuilles dans une boite de Pétri contenant du lugol.
8) Rincer rapidement avec de l’eau distillée.
9) Observer une feuille montée entre lame et lamelle au microscope optique.
10) Faire la même chose (opérations 4 à 9) avec une jeune feuille restée à la lumière du jour.
11) Réaliser un dessin d’observation dans chaque cas et tirer une conclusion.
4. Liens
- http://www.pedagogie.ac-
nantes.fr/1223381265873/0/fiche___ressourcepedagogique/&RH=1263937551235, page
consultée le 2 février 2015
- http://www.maxicours.com/se/fiche/7/0/354270.html, page consultée le 2 février 2015
Cellule restée à l’obscurité et colorée au lugol
Cellule restée à la lumière du jour et
colorée au lugol
(X 400)
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