• Standard :
Observe les cellules fixées et colorées
Grossissement ; X1500 à X2000
Pouvoir séparateur : 0,1 µm
• En contraste de phase :
Voir les cellules vivantes et non colorées
• A fluorescence
• Polarisant
Etapes de préparations de l’échantillon :
1) Fixation
2) Déshydratation
3) Inclusion : par paraffine
4) Microtomie
5) Etalement
6) Coloration
7) Observation
Mauvaise fixation =tissu déchiré
Les coupes ne seront pas
différenciées car la chaleur fait fondre
la cire
Certains tissus peuvent être prépares
directement par frottis :
Frottis sanguin
Frottis de sperme
Frottis vaginale
Pouvoir séparateur : 1 à 2 nm
• MET :
Voir un échantillon dont l’épaisseur < 0,1 µm
• MET à haut voltage :
Voir des échantillons plus épais
Qlq ME possèdent des lentilles
électromagnétiques pour agrandir
• MEB :
Voir la surface cellulaire
Etapes de préparations de l’échantillon :
1) Fixation
2) Déshydratation
3) Inclusion : par résine
4) Ultramicrotome
5) Recueil : par grilles métalliques
6) Coloration : par métaux lourds
7) Observation
Centrifugation zonale = séparation selon la taille et la forme ≠ Cenrifugation iso-pycnique = selon la densité de
flottaison
L’éléctrophorèse = séparation des protéines selon la charge
L’autoradibiographie = La détection de certaines molécules dont certains atomes ont été remplacés par des
isotopes radioactifs. La détection morphologique nécessite l’emploi d’une surface photographique.
Chromatographie (de partage et sur colonne=
Marquage par anticorps fluorescent ou par pigment métallique = suivre le mouvement ou l’éxistence d’un
corps
Coloration négative = révèle la forme d’un éléments par coloration de l’éxtérieur
Hétérocaryon = obtenir une cellule qui possède 2 noyaux et une MP de protéines combinées par hybridation
somatique
Instruments d’étude de la cellule
( Microscope Electrique à Transmission )
( Microscope Electrique à Balayage )