Etat des lieux de la résistance à la Clarithromycine à Alger

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Apport de la biologie
moléculaire dans le
diagnostic bactériologique
d’Helicobacter pylori
DJENNANE F*, BACHTARZI M.A, LAYAIDA K, ALI AROUSS N, BERKANE S, NAKMOUCHE M, RAMDANI-BOUGUESSA.N, TAZIR.M
*Laboratoire de microbiologie du CHU Mustapha d’Alger
Infection à Hp : Epidémiolgie
 L’infection à Hp est acquise dans l’enfance et perdure pendant des 10aines années
 C’est l’infection bactérienne la plus répandue, près de la moitié de la population mondiale en
est infectée.
 Prévalence à H.pylori : 2 profils épidémiologiques distincts :
- Pays industrialisés : 25 à 50 %
- Pays en voie de développement : 60 à 90%
Infection à Hp : Epidémiolgie
En Algérie: Etudes de séroprévalence

Ouest à Oran (Mégraud et al)* 1989 : 78%

Centre à Alger (Guechi et al)** 2008 : 87,7%

Sud à Ghardaia (Guechi et al)*** 2009: 79%
Pays à haute
prévalence de
l’infection à Hp
*Megraud F et al. Seroepidemiology of Campylobacter pylori infection in various populations. J Clin Microbiol. 1989; 27: 1870-1873.
**Guechi Z et al. Seroprevalence of Helicobacter pylori infection in Algiers region. (Absract 0430). Helicobacter. 2004; 9: 487-604.
***Guechi Z et al. Seroprévalence de l’infection à Helicobacter pylori dans l’Algérois. Journal Algérien de médecine. 2008; XVI (1): 12-14.
Diagnostic d’H.pylori
Nombreuses méthodes
Anapath
Examen
Direct
(ED)
Méthodes
invasives
(Biopsie
gastrique)
Test
rapide
urée
(TRU)
PCR
Sérologie
Culture
Méthodes
non
invasives
Ag
Selles
Test
respiratoire
Objectif de l’étude :
• Mettre en place le diagnostic moléculaire par PCR d’H.pylori et
d’en
évaluer
l’apport
par
rapport
aux
techniques
conventionnelles : détection d’H.pylori et sa résistance à la
Clarithromycine
(Au laboratoire de microbiologie du CHU Mustapha-Alger)
Méthodologie:
Critères de l’étude
Etude rétro-prospective 6ans de 2008 à 2014
Multicentrique : 3 services, pratiquant l’endoscopie digestive haute, d’Alger
(CHU Mustapha , CHU BEO, EPH Bologhine)
Patients: Adulte, symptomatique consultant pour une EDH (Douleurs épigastriques), jamais traités
Biopsies gastriques : 320
263 sélectionnées (PCR vs Culture)
Méthodologie:
Diagnostic au laboratoire
Diagnostic conventionnel : Sur fragement biopsique
1ère paire
TRU
Gram
Culture
Test de sensibilité Cl
Biopsies
gastriques
(2 paires)
2ème paire
Diagnostic moléculaire : Sur éxtrait d’ADN
PCR H.pylori +
Résistance à Cl
PCR multiplex : Détection du gène ureA et des
mutations
àgènes
l’origine
PCR
de de la résistance à la
virulence H.pylori
Clarithromycine
(A2143G,A2142G)
(CagA + vacA)
Culture
Broyat de
biopsie
 Etalement sur gélose Columbia + (Dent, sang frais humain, PVX)
 Incubation : 12jrs en jarre avec générateur de microaérophilie à 37°C
 Lecture : J4, J8 et J12
 Colonie suspecte : Gram , uréase, Oxydase, Catalase
 Antibiogramme : Subculture sur MH-CMI par E-test
(CLSI)
Méthodologie:
Diagnostic au laboratoire
Diagnostic conventionnel : Sur fragement biopsique
1ère paire
TRU
Gram
Culture
Test de sensibilité Cl
Biopsies
gastriques
(2 paires)
2ème paire
Diagnostic moléculaire : Sur éxtrait d’ADN
PCR H.pylori +
Résistance à Cl
PCR multiplex : Détection du gène ureA et des
mutations
àgènes
l’origine
PCR
de de la résistance à la
virulence H.pylori
Clarithromycine
(A2143G,A2142G)
(CagA + vacA)
PCR multiplex
( Hp et résistance Cl)
Broyat de
biopsie
Extrait d’ADN
Amplification
d’ADN
Kit
commerciaux
Révélation
24H
Résultats
Résultats :
Détection de l’Hp
Résultats de la culture d’Hp N=263
Résultats de la PCR N=263
61%
62,40%
24%
37,60%
62,4%
Vs
24%
15%
Positive N=164 Négative N=99
Positive N=63
Négative N=160 Contaminée N=40
Optimisation du taux de détection de 101 cas supplémentaires : 38,4%
Résultats :
Détection d’Hp: cas appariés culture/PCR
Culture
Positive
Négative
Positive
Négative
Contaminée Contaminée
PCR
Positive
Négative
Négative
Positive
Positive
Négative
Nombre
63
93
00
67
34
06
Commentaire
Vrai
positif
24%
Vrai
négatif
36%
/
Formes
coccoïdes
Pb de transport et de
prélèvement
101 cas
Résultat:
Sensibilité à la CL
263
Bx gastriques
63
164
Culture +
PCR +
31 CMI réalisées
(49,2%)
64 Résistant Cl
100 Sensible Cl
61%
25 Sensible Cl
06 Résistant Cl
81%
19%
39%
20%
Résultat:
PCR Hp
La PCR a permis en plus de déterminer la taux de
résistance à la Clarithromycine mais aussi de savoir la
principale mutation à l’origine de cette résistance qui est la
A2143G (87,5%) qui confère une résistance de haut niveau
à la Clarithromycine
Discussion
 Le taux faible de détection d’Hp par les techniques conventionnelles (culture) de 24% est
étroitement lié aux exigences atmosphériques et culturales de la bactéries (1ere expérience dans le
domaine)
-En Fr ce taux est de 39,2%* (984 bx) dans une étude réalisée en 2014 au Centre de référence des
Helicobacters à Bordeaux
-En Turquie: 29,6%** (149 patients) de 2012
-Au Maroc: 26%*** (64 patients) de 2002
 La PCR a optimisé les taux de détection de l’Hp de 30% (101 cas supp) palliant ainsi aux contraintes
culturales liées à la bactérie.
-En Fr la PCR a permis d’optimiser le taux de détection de 3% avec 42,3%* (30 cas supp)
*Lehous P, Ducournau A, Bénédjat L, Sifré E, Bessède E, Mégraud F.Résistance de Helicobacter pylori aux antibiotiques. Bilan d’une étude nationale menée en 2014. (Communication orale N°74).Ricai; 2015 Dec 14-15; Paris, France.
**Cağdaş U et al. Detection of Helicobacter pylori and antimicrobial resistance in gastric biopsy specimens. Mikrobiyol Bul. 2012 Jul; 46(3): 398-409.
***Seffar M et al. Helicobacter pylori : diagnostic biologique. Med Mal Infect. 2002; 32: 735–737.
Discussion
 La résistance primaire d’Hp à la Clarithromycine est de 19% par antibiogramme standard, ce
taux est passé à Alger de 6%* en 2004 à 12% **en 2008 (LNRH)
 Cependant par technique moléculaire (PCR) on obtient un taux de 39%*** largement
optimisé et étudié pour la première à l’aide de cette technique en Algérie.
*Touchene , Résumé SNFGE 2004
**Mouffok F et al. Résistances primaires et secondaires de Helicobacter pylori aux antibiotiques : épidémiologie et impact sur l’efficacité du traitement éradicateur de l’infection. Saidal Santé. Fev 2013; 14: 32-37.
*** High-level primary clarithromycin resistance of Helicobacter pylori in Algiers, Algeria: a prospective multicenter molecular study. Microbial Drug Resistance .2015
Situation mondiale de la résistance primaire à la Clarithromycine
Europe
Asie
Maghreb
Pays
Taux de
résistance
primaire
Année de publication /
Période d’étude
Nombre
éch
Auteur /Journal
Allemagne
3,3%
2002 /1995-2000
-
Wolle K (JMM)
Finlande
4%
2011/2000-2008
505
Pirkko Kostamo (IJAA)
Bulgarie
20%
2014 /NP
50
Boyanova.L (DMID)
France
19,1%
29,3%
530
-
Raymond.J (Helicobacter 2010)
Burucoa.C (Ricai 2014)
22,2%
2010 /2004-2007
2012 /2010-2012
Pylorikine
2015/ 2014 CNR Hp
416
Lehous (Ricai 2015)
Italie
23%
2003 /1998-2002
406
Turquie
30%
2010/NP
40
Demet Kaya (CTR)
Iran
14,3%
2012/ 2010-2011
112
Milani (JIC)
Vietnam
34,2%
2014/2012-2014
92
Trung Nam Phan (IJAA)
Chine
37,5%
2014/2008-2012
600
Zhiqiaang Song (DLD)
Pakistan
37%
2012/2009-2010
162
Rajper (JPMA)
Tunisie
15,4%
2010/2005-2007
273
Ben Mansour (ACMA)
Maroc
25%
2012/-NP
144
Alaoui (Ricai 2012)
Au final ….

La PCR contribue sans doute à l’optimisation de la détection au laboratoire d’Hp et de sa résistance à la Cl.

Progression du Taux de résistance primaire à la Cl : Actualisation des données locales
charge thérapeutique

Notre espoir : Pour une meilleure prise ne charge de ces patients
impact sur la prise en
-La disponibilité du diagnostic bactériologique d’Hp dans les laboratoires : Réseau de biologiste
( diagnostic , surveillance et études comparatives)
-Adapter le traitement d’éradication de l’Hp en fonction des données locales de sa résistance à la Cl en accord
avec les recommandations internationales*
-Privilégier une thérapeutique guidée par PCR ou Antibiogramme.
*Malfertheiner P, Mégraud F, O’Morain C and al. Management of Helicobacter pylori infection - The Maastricht IV/Florence Consensus Report. Gut 2012; 61: 646-664.
Merci de votre attention
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