Objectifs :  
L’objectif du stage de M2R s’inscrira dans l’une de ces 2 thématiques :  
- clarifier les mécanismes moléculaires impliqués dans l’expression des gènes codant le SST1 
(en  particulier  via  l’expression  de  ARNnc)  et  du  gène  rtxA  lors  du  cycle  cellulaire  en 
conditions  de  laboratoire  et  lors  du  cycle  d’infection  d’un  hôte.  A  cette  fin,  le  stage 
comprendra une première partie de constructions génétiques : des fusions d’opérons avec des 
gènes  rapporteurs  (GFP…),  des  mutants  d’expression  de  l’ARNnc  (déficience  ou 
surexpression).  Ce matériel biologique permettra ensuite de suivre l’expression du SST1 « in 
vivo »  (vis-à-vis  de  l’amibe  ou  des  macrophages)  lors  du  cycle  infectieux  afin  d’identifier 
précisément l’impact sur la virulence de Legionella pneumophila.  
-  comprendre  comment  les  voies  de  signalisation  à  di-GMP  cyclique  interviennent  dans  la 
coordination de la sécrétion des effecteurs bactériens au cours de l’infection. Des données de 
RNA-seq différentiel attendues avant le démarrage du stage de M2R (séquençage en cours des 
ARN totaux  des souches mutantes  et  parentale) devraient  permettre  d’identifier des  pistes  à 
explorer  en  priorité,  via  la  construction  de  matériel  génétique  (délétions  de  gènes,  fusions 
avec  des  gènes  rapporteurs,…).  Par  ailleurs,  les  3  enzymes  du  métabolisme  du  di-GMP 
cyclique impliquées ont été purifiées, ce qui permettra également la recherche des partenaires 
de cette signalisation, et/ou des acteurs participant à l’organisation de la sortie des centaines 
d’effecteurs via le système Dot/Icm (recherche d’interactants par approches biochimiques de 
de type pulldown, cross-linking,…).   
 
Techniques : 
Les techniques sont communes au 2 axes présentés (manipulation en laboratoire de niveau 2, 
tests  d’infection  sur  différentes  cellules  cibles  (amibes  environnementales,  macrophages 
humains),  tests  d’efficacité  d’entrée,  suivi  de  la  multiplication  intracellulaire  de  bactéries 
exprimant  des  protéines  fluorescentes  (GFP,  m-cherry)  par  mesure  d’augmentation  de  la 
fuorescence dans un lecteur de plaque (Tecan), test de translocation des effecteurs bactériens 
dans  les  cellules  par  système  rapporteur,  suivi  de  marqueurs  cellulaires  par  microscopie 
confocale,  techniques  de  biologie  moléculaire  (mutagénèse,  clonage),  biochimiques 
(purification de protéines, pull-down), …. 
 
 
Références récentes: 
1.  Allombert,  J.,  Fuche,  F.,  Michard,  C.  and  Doublet,  P.  (2013)  Molecular  mimicry  and 
original  biochemical  strategies  for  the  biogenesis  of  a  Legionella  pneumophila  replicative 
niche in phagocytic cells.. Microbes Infect. Oct 24. 
2. Fuche, F., Vianney, A., Andrea, C., Doublet, P. and Gilbert, C. Functional type I secretion 
system involved in Legionella pneumophila virulence . Soumis à Infect. Immun. 
3.  Allombert,  J.,  Lazzaroni,  J.C.,  Baïlo,  N.,  Gilbert,  C.,  Charpentier,  X.,  Doublet,  P.  and 
Vianney, A. (2014) Three  antagonistic c-di-GMP-catabolizing  enzymes promote  differential 
Dot/Icm  effectors  delivery  and  intracellular  survival  at  the  early  steps  of  Legionella 
pneumophila infection. Infect Immun. 82(3) : 1222-1233.