Lettre d`intention « Examens par Hybridation in situ en Fluorescence

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Lettre d'intention « Examens par Hybridation in situ en Fluorescence (FISH) ou
chromogénique (SISH, CISH) sur noyaux interphasiques »
Titre du projet
Examens par Hybridation in situ en Fluorescence (FISH) ou chromogénique (SISH, CISH) sur
noyaux interphasiques
Acronyme
FSCHYBRID
Première soumission de ce projet de recueil de données ?
OUI
Nom et prénom de l’investigateur-coordinateur (représentants le GFCO et la SFP)
Pr Marc-Antoine BELAUD-ROTUREAU – CHU Rennes
Pr Frederique PENAULT LLORCA – CLCC Clermont-Ferrand
Financement(s) antérieur(s) dans le cadre des appels à projet de la DGOS
OUI programme biomarqueurs émergent (INCa et IFCT pour le poumon) essai clinique ACSé
(INCa-Unicancer)
Sociétés savantes coordinatrices
GFCO (MA BELAUD-ROTUREAU) - SFP (F PENAULT LLORCA)
Médecin, Chirurgien-Dentiste / Biologiste / Infirmière / autres Paramédicaux
Biologiste, Anatomopathologiste,Techniciens et ingénieurs en biologie
Etablissement-coordonateur responsable du budget pour le Ministère de la santé
Domaine de Recherche
Oncologie – liste des tumeurs concernées présentées dans le tableau ci-joint.
Nom du méthodologiste (+ tel + email) – à préciser
Nom de l’économiste de la santé (si nécessaire) (+ tel + email) – à préciser
Structure responsable de la gestion de projet– à préciser
Structure responsable de l’assurance qualité– à préciser
Structure responsable de la gestion de données et des statistiques– à préciser
Nombre prévisionnel de centres d’inclusion (NC)
28 plateformes financées par l’INCa
Co-investigateurs (1 à N)
Nom
Pr Florence PEDEUTOUR
Dr Anne MC LEER
Dr Daniel PISSALOUX
Dr Nathalie AUGER
Etablissement
Domaine d’expertise
Ville Pays Hôpital E-mail Tel
Spécialité}]
CHU Nice
Génétique des tumeurs solides
CHU Grenoble
Génétique des tumeurs solides
CLCC Lyon
Génétique des tumeurs solides
CLCC IGR
Génétique des tumeurs
1
PROJET DE RECHERCHE
Rationnel (contexte et hypothèses)
L’hybridation in situ en fluorescence (FISH) est une technique d’étude du génome qui consiste
à hybrider une sonde fluorescente, c’est-à-dire une séquence d’ADN dans laquelle a été
introduit un nucléotide couplé à une molécule fluorescente, sur une préparation
chromosomique ou sur des noyaux en interphase. Après hybridation, on peut visualiser
directement la cible que l’on veut étudier en détectant avec un microscope à épifluorescence
le signal fluorescent produit par la sonde. Différentes sondes, de tailles variables et marquées
avec des fluorochromes différents, peuvent être utilisées de façon concomitante. Il devient
possible de ce fait d'étudier simultanément plusieurs régions du génome. Des systèmes de
révélation chromogéniques ont également été développés (SISH, CISH) pour s’affranchir de
l’utilisation de microscope à épifluorescence.
En oncologie, la FISH/SISH/CISH sur noyaux interphasiques permet de détecter la très grande
majorité des anomalies chromosomiques des cancers comme des remaniements structurels
(translocations, inversions, inertions…), délétions ou amplifications associés à divers types ou
sous-types de tumeurs : carcinomes, sarcomes, gliomes, lymphomes, etc… Ces techniques,
développées à l’origine par des cytogénéticiens sont maintenant utilisées quotidiennement par
les biologistes et les anatomo-pathologistes. Les analyses peuvent être réalisées sur
pratiquement tout type de prélèvement cellulaire ou tissulaire, à l’état frais, congelé ou fixé par
le formol. Ces activités sont ciblées par l’INCa et la DGOS dans le cadre des plateformes de
génétique moléculaire des cancers (programmes biomarqueurs émergents, ACSé, …). Le
résultat des analyses a un impact essentiel pour le diagnostic, et/ou le pronostic et/ou le choix
du traitement (théranostique). Les techniques de FISH/SISH/CISH sur noyaux interphasiques
permettent ainsi de déterminer le statut de biomarqueurs (cf liste figurant dans ce document)
indispensables à la prise en charge des patients atteints d’un cancer.
Publications des investigateurs en rapport avec la lettre d’intention :
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Pham-Ledard A, Cowppli-Bony A, Doussau A, Prochazkova-Carlotti M, Laharanne E, Jouary T, Belaud-Rotureau MA,
Vergier B, Merlio JP, Beylot-Barry M. Diagnostic and prognostic value of BCL2 rearrangement in 53 patients with
follicular lymphoma presenting as primary skin lesions. Am J Clin Pathol. 2015 Mar;143(3):362-73
Zwaenepoel K, Merkle D, Cabillic F, Berg E, Belaud-Rotureau MA, Grazioli V, Herelle O, Hummel M, Le Calve M, Lenze
D, Mende S, Pauwels P, Quilichini B, Repetti E. Automation of ALK gene rearrangement testing with fluorescence in
situ hybridization (FISH): a feasibility study. Exp Mol Pathol. 2015 Feb;98(1):113-8.
Parker D, Belaud-Rotureau MA. Micro-cost Analysis of ALK Rearrangement Testing by FISH to Determine Eligibility for
Crizotinib Therapy in NSCLC: Implications for Cost Effectiveness of Testing and Treatment. Clin Med Insights Oncol.
2014 Dec 8;8:145-52.
Cabillic F, Gros A, Dugay F, Begueret H, Mesturoux L, Chiforeanu DC, Dufrenot L, Jauffret V, Dachary D, Corre R,
Lespagnol A, Soler G, Dagher J, Catros V, Le Calve M, Merlio JP, Belaud-Rotureau MA. Parallel FISH and
immunohistochemical studies of ALK status in 3244 non-small-cell lung cancers reveal major discordances. J Thorac
Oncol. 2014 Mar;9(3):295-306.
Belaud-Rotureau MA, Parrens M, Carrere N, Turmo M, Ferrer J, de Mascarel A, Dubus P, Merlio JP. Interphase
fluorescence in situ hybridization is more sensitive than BIOMED-2 polymerase chain reaction protocol in detecting
IGH-BCL2 rearrangement in both fixed and frozen lymph node with follicular lymphoma. Hum Pathol. 2007
Feb;38(2):365-72.
Parrens M, Belaud-Rotureau MA, Fitoussi O, Carerre N, Bouabdallah K, Marit G, Dubus P, de Mascarel A, Merlio JP.
Blastoid and common variants of mantle cell lymphoma exhibit distinct immunophenotypic and interphase FISH features.
Histopathology. 2006 Mar;48(4):353-62.
Belaud-Rotureau MA, Meunier N, Eimer S, Vital A, Loiseau H, Merlio JP. Automatized assessment of 1p36-19q13
status in gliomas by interphase FISH assay on touch imprints of frozen tumours. Acta Neuropathol. 2006
Mar;111(3):255-63.
Dubus P, Young P, Beylot-Barry M, Belaud-Rotureau MA, Courville P, Vergier B, Parrens M, Lenormand B, Joly P,
Merlio JP. Value of interphase FISH for the diagnosis of t(11:14)(q13;q32) on skin lesions of mantle cell lymphoma. Am
J Clin Pathol. 2002 Dec;118(6):832-41.
Belaud-Rotureau MA, Parrens M, Dubus P, Garroste JC, de Mascarel A, Merlio JP.A comparative analysis of FISH,
RT-PCR, PCR, and immunohistochemistry for the diagnosis of mantle cell lymphomas. Mod Pathol. 2002
May;15(5):517-25.
Lantuejoul S, Rouquette I, Blons H, Le Stang N, Ilie M, Begueret H, Grégoire V, Hofman P, Gros A, Garcia S, Monhoven
N, Devouassoux-Shisheboran M, Mansuet-Lupo A, Thivolet F, Antoine M, Vignaud JM, Penault-Llorca F, GalateauSallé F, McLeer-Florin A. French multicentric validation of ALK rearrangement diagnostic in 547 lung adenocarcinomas.
Eur Respir J. 2015 Jul;46(1):207-18.
Mescam-Mancini L, Lantuéjoul S, Moro-Sibilot D, Rouquette I, Souquet PJ, Audigier-Valette C, Sabourin JC,
Decroisette C, Sakhri L, Brambilla E, McLeer-Florin A. On the relevance of a testing algorithm for the detection of ROS1rearranged lung adenocarcinomas. Lung Cancer. 2014 Feb;83(2):168-73.
2
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Bavieri M, Tiseo M, Lantuejoul S, McLeer-Florin A, Lasagni A, Fantini R, Rossi G. Fishing for ALK with
immunohistochemistry may predict response to crizotinib. Tumori. 2013 Sep-Oct;99(5):e229-32. doi:
10.1700/1377.15321.
Ferretti GR, Busser B, de Fraipont F, Reymond E, McLeer-Florin A, Mescam-Mancini L, Moro-Sibilot D, Brambilla E,
Lantuejoul S. Adequacy of CT-guided biopsies with histomolecular subtyping of pulmonary adenocarcinomas: influence
of ATS/ERS/IASLC guidelines. Lung Cancer. 2013 Oct;82(1):69-75. doi: 10.1016/j.lungcan.2013.07.010.
Pros E, Lantuejoul S, Sanchez-Verde L, Castillo SD, Bonastre E, Suarez-Gauthier A, Conde E, Cigudosa JC, LopezRios F, Torres-Lanzas J, Castellví J, Ramon y Cajal S, Brambilla E, Sanchez-Cespedes M. Determining the profiles
and parameters for gene amplification testing of growth factor receptors in lung cancer. Int J Cancer. 2013 Aug
15;133(4):898-907. doi: 10.1002/ijc.28090.
McLeer-Florin A, Moro-Sibilot D, Melis A, Salameire D, Lefebvre C, Ceccaldi F, de Fraipont F, Brambilla E, Lantuejoul
S. Dual IHC and FISH testing for ALK gene rearrangement in lung adenocarcinomas in a routine practice: a French
study. J Thorac Oncol. 2012
Dadone B, Refae S, Lemarié-Delaunay C, Bianchini L, Pedeutour F. Molecular cytogenetics of pediatric adipocytic
tumors. Cancer Genet. 2015 Oct;208(10):469-81. doi: 10.1016/j.cancergen.2015.06.005. Epub 2015 Jun 26. Review.
Karanian M, Pérot G, Coindre JM, Chibon F, Pedeutour F, Neuville A. Fluorescence in situ hybridization analysis is a
helpful test for the diagnosis of dermatofibrosarcoma protuberans. Mod Pathol. 2015 Feb;28(2):230-7.
Grépin R, Ambrosetti D, Marsaud A, Gastaud L, Amiel J, Pedeutour F, Pagès G. The relevance of testing the efficacy
of anti-angiogenesis treatments on cells derived from primary tumors: a new method for the personalized treatment of
renal cell carcinoma. PLoS One. 2014 Mar 27;9(3):e89449.
Baffert S, Italiano A, Pierron G, Traoré MA, Rapp J, Escande F, Ghnassia JP, Terrier P, Voegeli AC, Ranchere-Vince
D, Coindre JM, Pedeutour F. [Comparative cost analysis of molecular biology methods in the diagnosis of sarcomas].
Bull Cancer. 2013 Oct;100(10):963-71. doi: 10.1684/bdc.2013.1822. French.
Plexiform fibrohistiocytic tumor with molecular and cytogenetic analysis. Leclerc-Mercier S, Pedeutour F, Fabas T,
Glorion C, Brousse N, Fraitag S. Pediatr Dermatol. 2011 Jan-Feb;28(1):26-9.
Haudebourg J, Hoch B, Fabas T, Cardot-Leccia N, Burel-Vandenbos F, Vieillefond A, Amiel J, Michiels JF, Pedeutour
F. Strength of molecular cytogenetic analyses for adjusting the diagnosis of renal cell carcinomas with both clear cells
and papillary features: a study of three cases. Virchows Arch. 2010 Sep;457(3):397-404.
Sirvent N, Coindre JM, Maire G, Hostein I, Keslair F, Guillou L, Ranchere-Vince D, Terrier P, Pedeutour F. Detection of
MDM2-CDK4 amplification by fluorescence in situ hybridization in 200 paraffin-embedded tumor samples: utility in
diagnosing adipocytic lesions and comparison with immunohistochemistry and real-time PCR. Am J Surg Pathol. 2007
Oct;31(10):1476-89.
Harik LR, Merino C, Coindre JM, Amin MB, Pedeutour F, Weiss SW. Pseudosarcomatous myofibroblastic proliferations
of the bladder: a clinicopathologic study of 42 cases. Am J Surg Pathol. 2006 Jul;30(7):787-94.
Italiano A, Attias R, Aurias A, Pérot G, Burel-Vandenbos F, Otto J, Venissac N, Pedeutour F. Molecular cytogenetic
characterization of a metastatic lung sarcomatoid carcinoma: 9p23 neocentromere and 9p23-p24 amplification including
JAK2 and JMJD2C. Cancer Genet Cytogenet. 2006 Jun;167(2):122-30.
Coindre JM, Hostein I, Maire G, Derré J, Guillou L, Leroux A, Ghnassia JP, Collin F, Pedeutour F, Aurias A. Inflammatory
malignant fibrous histiocytomas and dedifferentiated liposarcomas: histological review, genomic profile, and MDM2 and
CDK4 status favour a single entity. J Pathol. 2004 Jul;203(3):822-30.
Yeh I, de la Fouchardiere A, Pissaloux D, Mully TW, Garrido MC, Vemula SS, Busam KJ, LeBoit PE, McCalmont TH,
Bastian BC. Clinical, histopathologic, and genomic features of Spitz tumors with ALK fusions. Am J Surg Pathol. 2015
May;39(5):581-91.
Dufresne A, Cassier P, Heudel P, Pissaloux D, Wang Q, Blay JY, Ray-Coquard I. Molecular biology of sarcoma and
therapeutic choices. Bull Cancer. 2015 Jan;102(1):6-16.
Dubruc E, Balme B, Dijoud F, Disant F, Thomas L, Wang Q, Pissaloux D, de la Fouchardiere A. Mutated and amplified
NRAS in a subset of cutaneous melanocytic lesions with dermal spitzoid morphology: report of two pediatric cases
located on the ear. J Cutan Pathol. 2014 Nov;41(11):866-72.
Renard C, Pissaloux D, Decouvelaere AV, Bourdeaut F, Ranchère D. Non-rhabdoid pediatric SMARCB1-deficient
tumors: overlap between chordomas and malignant rhabdoid tumors? Cancer Genet. 2014 Sep;207(9):384-9.
Planchard D, Loriot Y, André F, Gobert A, Auger N, Lacroix L, Soria JC. EGFR-independent mechanisms of acquired
resistance to AZD9291 in EGFR T790M-positive NSCLC patients. Ann Oncol. 2015 Oct;26(10):2073-8.
Pailler E, Auger N, Lindsay CR, Vielh P, Islas-Morris-Hernandez A, Borget I, Ngo-Camus M, Planchard D, Soria JC,
Besse B, Farace F. High level of chromosomal instability in circulating tumor cells of ROS1-rearranged non-small-cell
lung cancer. Ann Oncol. 2015 Jul;26(7):1408-15.
Cosson A, Chapiro E, Belhouachi N, Cung HA, Keren B, Damm F, Algrin C, Lefebvre C, Fert-Ferrer S, Luquet I, Gachard
N, Mugneret F, Terre C, Collonge-Rame MA, Michaux L, Rafdord-Weiss I, Talmant P, Veronese L, Nadal N, Struski S,
Barin C, Helias C, Lafage M, Lippert E, Auger N, Eclache V, Roos-Weil D, Leblond V, Settegrana C, Maloum K, Davi
F, Merle-Beral H, Lesty C, Nguyen-Khac F; Groupe Francophone de Cytogénétique Hématologique. 14q deletions are
associated with trisomy 12, NOTCH1 mutations and unmutated IGHV genes in chronic lymphocytic leukemia and small
lymphocytic lymphoma. Genes Chromosomes Cancer. 2014 Aug;53(8):657-66.
Pailler E, Adam J, Barthélémy A, Oulhen M, Auger N, Valent A, Borget I, Planchard D, Taylor M, André F, Soria JC,
Vielh P, Besse B, Farace F. Detection of circulating tumor cells harboring a unique ALK rearrangement in ALK-positive
non-small-cell lung cancer. J Clin Oncol. 2013 Jun 20;31(18):2273-81.
von Laffert M, Warth A, Penzel R, Schirmacher P, Kerr KM, Elmberger G, Schildhaus HU, Büttner R, Lopez-Rios F,
Reu S, Kirchner T, Pauwels P, Specht K, Drecoll E, Höfler H, Aust D, Baretton G, Bubendorf L, Stallmann S, FisselerEckhoff A, Soltermann A, Tischler V, Moch H, Penault-Llorca F, Hager H, Schäper F, Lenze D, Hummel M, Dietel M.
Multicenter immunohistochemical ALK-testing of non-small-cell lung cancer shows high concordance after
harmonization of techniques and interpretation criteria. J Thorac Oncol. 2014 Nov;9(11):1685-92.
Franchet C, Filleron T, Cayre A, Mounié E, Penault-Llorca F, Jacquemier J, Macgrogan G, Arnould L, Lacroix-Triki M.
Instant-quality fluorescence in-situ hybridization as a new tool for HER2 testing in breast cancer: a comparative study.
Histopathology. 2014 Jan;64(2):274-83.
Jacquemier J, Spyratos F, Esterni B, Mozziconacci MJ, Antoine M, Arnould L, Lizard S, Bertheau P, Lehmann-Che J,
Fournier CB, Krieger S, Bibeau F, Lamy PJ, Chenard MP, Legrain M, Guinebretière JM, Loussouarn D, Macgrogan G,
Hostein I, Mathieu MC, Lacroix L, Valent A, Robin YM, Revillion F, Triki ML, Seaume A, Salomon AV, de Cremoux P,
Portefaix G, Xerri L, Vacher S, Bièche I, Penault-Llorca F. SISH/CISH or qPCR as alternative techniques to FISH for
3
determination of HER2 amplification status on breast tumors core needle biopsies: a multicenter experience based on
840 cases. BMC Cancer. 2013 Jul 22;13:351.
Valent A, Penault-Llorca F, Cayre A, Kroemer G. Change in HER2 (ERBB2) gene status after taxane-based
chemotherapy for breast cancer: polyploidization can lead to diagnostic pitfalls with potential impact for clinical
management. Cancer Genet. 2013 Jan-Feb;206(1-2):37-41.
Arnould L, Roger P, Macgrogan G, Chenard MP, Balaton A, Beauclair S, Penault-Llorca F. Accuracy of HER2 status
determination on breast core-needle biopsies (immunohistochemistry, FISH, CISH and SISH vs FISH). Mod Pathol.
2012 May;25(5):675-82. doi: 10.1038/modpathol.2011.201.
Rüschoff J, Dietel M, Baretton G, Arbogast S, Walch A, Monges G, Chenard MP, Penault-Llorca F, Nagelmeier I,
Schlake W, Höfler H, Kreipe HH. HER2 diagnostics in gastric cancer-guideline validation and development of
standardized immunohistochemical testing. Virchows Arch. 2010 Sep;457(3):299-307.
Penault-Llorca F, Bilous M, Dowsett M, Hanna W, Osamura RY, Rüschoff J, van de Vijver M. Emerging technologies
for assessing HER2 amplification. Am J Clin Pathol. 2009 Oct;132(4):539-48.
Nitta H, Hauss-Wegrzyniak B, Lehrkamp M, Murillo AE, Gaire F, Farrell M, Walk E, Penault-Llorca F, Kurosumi M, Dietel
M, Wang L, Loftus M, Pettay J, Tubbs RR, Grogan TM. Development of automated brightfield double in situ hybridization
(BDISH) application for HER2 gene and chromosome 17 centromere (CEN 17) for breast carcinomas and an assay
performance comparison to manual dual color HER2 fluorescence in situ hybridization (FISH). Diagn Pathol. 2008 Oct
22;3:41.
Tuefferd M, Couturier J, Penault-Llorca F, Vincent-Salomon A, Broët P, Guastalla JP, Allouache D, Combe M, Weber
B, Pujade-Lauraine E, Camilleri-Broët S. HER2 status in ovarian carcinomas: a multicenter GINECO study of 320
patients. PLoS One. 2007 Nov 7;2(11):e1138.
Arnould L, Arveux P, Couturier J, Gelly-Marty M, Loustalot C, Ettore F, Sagan C, Antoine M, Penault-Llorca F, Vasseur
B, Fumoleau P, Coudert BP. Pathologic complete response to trastuzumab-based neoadjuvant therapy is related to the
level of HER-2 amplification. Clin Cancer Res. 2007 Nov 1;13(21):6404-9.
van de Vijver M, Bilous M, Hanna W, Hofmann M, Kristel P, Penault-Llorca F, Rüschoff J.Chromogenic in situ
hybridisation for the assessment of HER2 status in breast cancer: an international validation ring study. Breast Cancer
Res. 2007;9(5):R68.
Cayre A, Mishellany F, Lagarde N, Penault-Llorca F. Comparison of different commercial kits for HER2 testing in breast
cancer: looking for the accurate cutoff for amplification. Breast Cancer Res. 2007;9(5):R64.
Dowsett M, Hanna WM, Kockx M, Penault-Llorca F, Rüschoff J, Gutjahr T, Habben K, van de Vijver MJ. Standardization
of HER2 testing: results of an international proficiency-testing ring study. Mod Pathol. 2007 May;20(5):584-91.
Penault-Llorca F, Cayre A, Arnould L, Bibeau F, Bralet MP, Rochaix P, Savary J, Sabourin JC. Is there an
immunohistochemical technique definitively valid in epidermal growth factor receptor assessment? Oncol Rep. 2006
Dec;16(6):1173-9.
Morelle M, Haslé E, Treilleux I, Michot JP, Bachelot T, Penault-Llorca F, Carrère MO.Cost-effectiveness analysis of
strategies for HER2 testing of breast cancer patients in France. Int J Technol Assess Health Care. 2006
Summer;22(3):396-401.
Lamy PJ, Nanni I, Fina F, Bibeau F, Romain S, Dussert C, Penault Llorca F, Grenier J, Ouafik LH, Martin PM. Reliability
and discriminant validity of HER2 gene quantification and chromosome 17 aneusomy analysis by real-time PCR in
primary breast cancer. Int J Biol Markers. 2006 Jan-Mar;21(1):20-9.
Originalité et Caractère Innovant
Les techniques de FISH/SISH/CISH sur noyaux interphasiques permettent une approche
morphologique ciblée sur les cellules tumorales. L’hétérogénéité tumorale peut être étudiée
de même que la présence de différents clones ce qui n’est pas possible avec les techniques
non morphologiques de biologie moléculaire. Des développements récents permettent des
analyses semi-automatiques des zones tumorales d’intérêt. Avec les stratégies multicouleurs
en émergence, la détermination simultanée du statut de plusieurs biomarqueurs (ALK et ROS1 par exemple) dans une cellule tumorale est possible.
Objet de la Recherche
Les techniques de FISH/SISH/CISH sur noyaux interphasiques
Mots Clés [5]
FISH, SISH, CISH , noyaux interphasiques,
4
Objectif Principal
Cette lettre d’intention adresse des biomarqueurs utilisés en diagnostic de routine avec des
niveaux de preuve suffisant pour être considéré dans une évaluation par l’HAS.
Elle correspond à une évolution du code A070 sur les éléments suivants :
- Libellé : Examen par Hybridation in situ en Fluorescence ou chromogénique (FISH,
SISH, CISH) sur noyaux interphasiques. Une cotation par sonde.
- Revalorisation : ces actes sont cotés NABM904 B500 – 135€ pour les analyses
de cytogénétique (Hybridation sur noyaux interphasiques). Le coût des analyses
indiquées dans cette lettre d’intention est similaire. Une cotation permettant la
réalisation des lames blanches et la sélection des zones tumorales d’intérêt est
également à identifier.
- Cotation : AHC/BHN et inscription sur la liste RiHN dans la catégorie « Tumeurs
solides » pour permettre la réalisation de ces actes par des biologistes et des
pathologistes ce qui correspond à la réalité du terrain.
- Panel de cibles validées par les experts et revue régulièrement (démarche
similaire au panel NGS INCa).
Pathologie
Tumeurs pulmonaires
Tumeurs cérébrales
Tumeurs rénales
Sarcomes
Lymphomes
Cancers de l’estomac et de l’œsophage
Cancers de l’ovaire
Cancers du sein
Cancers de la prostate
Carcinomes de la thyroïde
Cancers ORL :
Cancers du côlon
Tumeurs mélaniques
Mésothéliomes
Sarcomes granulocytaires
Tumeurs endométriales
Biomarqueurs
ALK, ROS-1, RET, c-MET, FGFR, NTRK, NRG1
PTEN, EGFR, PDGFRA, CDKN2A/2B, c-MYC, ALK, N-MYC,
MET, délétions 1p/19q, del 1p36, ampli 11q, +7q/-10q
TFE3, TFEB, VHL, CCND1, c-MYC, ETV6, ALK, NONO,
nombre de copies des chromosomes 7 et 17
MDM2, EWSR1, DDIT3, FOXO1, SS18, TFE3, ETV6, PDGFB,
CIC, FUS, NCOA2, JAZF1, YWHAE, PHF1, USP6, PAX3,
PAX7, CAMTA1, HMGA2, PLAG1, WT1, RB1, ERG, CDKN2A,
CDK4, ALK, c-MYC, COL1A1, NR4A3, WWTR1, SMARCA4,
SMARCB1, HMGA1, COL1A1-PDGFB, WWTR1-CAMTA1,
FOXO1-PAX7, FOX01-PAX3, BCOR-CCNB3, EWSR1-FLI1,
EWSR1-ERG, HEY1-NCOA2
BCL2, BCL6, c-MYC, MALT1, BCL10, CCND1, CDKN2A,
ALK, PDL1, IGH, IG, IG BCR/ABL, KMT2A, TLX1, TLX3,
CALM/AF10
HER2, MET
MET, FOX2, HER2
FGFR, CCND1, ETV6, MAML2, MYB, NFIB
ERG
RET
CCND1, CDKN2A, PLAG1, NFIB
HER2
CDKN2A, NRAS, NRTK, ALK, ROS-1 MET, BRAF, CCND1
CDKN2A
KMT2A, RUNX1/RUNX1T1, CBFB
JAZF, YWHAE1
Objectifs Secondaires
A préciser
Critère d'évaluation principal (en lien avec l’objectif principal)
A préciser
5
Critères d'évaluation secondaires (en lien avec les objectifs secondaires)
A préciser
Population d’étude
Tous patients atteints d’une tumeur solide figurant dans la liste précédente.
Plan expérimental
Revue systématique
Les marqueurs de cette lettre sont déjà validés et utilisés en routine. Ils peuvent faire l’objet
d’une étude par la HAS.
Si Analyse Médico-économique
Non précisé
Si groupe comparateur :
Non précisé
Durée de la participation de chaque patient
Données de la littérature et recrutement actuel des plateformes.
Durée prévisionnelle de Recrutement (DUR)
En cours d’évaluation
Nombre de patients / observations prévu(e)s à recruter (NP)
En cours d’évaluation
Nombre de patients / observations à recruter / mois / centre ((NP/DUR)/NC)
En cours d’évaluation
Nombre attendu de patients éligibles dans les centres
En cours d’évaluation
Participation d’un réseau de recherche
En cours d’évaluation
Participation de partenaires industriels
En cours d’évaluation
Autres éléments garantissant la faisabilité du projet
Analyses déjà réalisées en routine
Bénéfices attendus pour le patient et/ou pour la santé publique
Amélioration du diagnostic des tumeurs solides
MOTS CLES
COMMENTAIRES DES EXPERTS [citer] ET REPONSES CORRESPONDANTES1
1
Item à compléter si le projet a déjà été soumis à un appel à projets de la DGOS.
6
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