Psylles - Agriculture.gouv
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Fiche de description Psylles Les psylles, que l’on assimile parfois à des petites cigales, sont des ravageurs des parties aériennes des arbres et arbustes. Spécifiques, on les rencontre sur les organes verts où leur présence est caractérisée par des sécrétions importantes de filaments cireux et de miellat qui ont pour principale conséquence des nuisances d’ordre esthétique et commoditaire. Leurs dégâts restent en général sans conséquences pour la santé des végétaux. Fiche de description - Psylles 273 David Hall, USDA Agricultural Research Service, Bugwood.org Fig. 1 : Adultes de Diaphorina citri sur feuille de Citrus Petr Kapitola, State Phytosanitary Administration, Bugwood.org Fig. 3 : Sécrétions de Psylla alni sur aulne Whitney Cranshaw, Colorado State University, Bugwood.org Florida Division of Plant Industry Archive, Florida Department of Agriculture and Consumer Services, Bugwood.org Fig. 2 : Dégâts de Diaphorina citri sur Citrus Fig. 4 : Dégâts de psylle sur poirier Jerry A. Payne, USDA Agricultural Research Service, Bugwood.org Noémie Jacquemin, Fredon Pays de la Loire Fig. 5 : Dégâts de psylle sur Diospyros virginiana Fig. 6 : Colonie d’Acizzia jamatonica sur feuilles d’acacia Fiche de description - Psylles 274 Eléments de Classification Les psylles représentent l’ensemble des Insectes Hémiptères Sternorrhynques de la super-famille des Psylloidea. Une centaine d’espèces sont présentes en ZNA, appartenant pour l’essentiel aux familles des Psyllidés et Triozidés. Plantes-Hôtes Essentiellement sur arbres et arbustes hors conifères. Arbres Très sensibles Acacia (acacia, mimosa), Eucalyptus (eucalyptus), Fraxinus (frêne) Sensibles Albizzia (albizzia), Cercis (arbre de Judée), Olea (olivier) Moyennement Alnus (aulne), Celtis (micocoulier), Diospyros (plaqueminier), Salix (saule) sensibles Peu sensibles Acer (érable), Betula (bouleau), Brachychiton (brachychiton), Cassia (cassia), Colutea (baguedaunier), Fagus (hêtre), Firmania (parasol chinois), Laburnum (cytise), Magnolia (magnolia), Morus (mûrier), Nothofagus (nothofagus), Populus (peuplier), Quercus (chêne), Ulmus (orme) Fruitiers d’ornement Très sensibles Sensibles Moyennement sensibles Peu sensibles Pyrus (poirier d’ornement) Crataegus (aubépine) Amelanchier (amélanchier), Malus (pommier d’ornement), Prunus (cerisier d’ornement, laurier-cerise, prunier d’ornement) Cydonia (cognassier), Sorbus (alisier, sorbier) Arbustes Très sensibles Sensibles Moyennement sensibles Peu sensibles Buxus (buis), Rhamnus (bourdaine, nerprun) Elaeagnus (éléagnus), Laurus (laurier-sauce) Cytisus (genêt à balais), Genista (genêt), Ilex (houx), Pittosporum (pittospore), Rhus (sumac), Rubus (ronce d’ornement), Solanum (morelle) Abutilon (abutilon), Arbutus (arbousier), Berberis (épine-vinette), Buddleja (arbre aux papillons), Ceanothus (céanothe), Clematis (clématite), Cotinus (arbre à perruques), Hedera (lierre), Hibiscus (hibiscus), Hippophaë (argousier), Indigofera (indigotier), Osmanthus (osmanthe), Phillyrea (filaria), Rhododendron (rhododendron), Ribes (cassissier, groseillier), Spartium (genêt d’Espagne), Tamarix (tamaris), Viburnum (laurier-tin, viorne), Vitex (gattilier) Palmiers et autres plantes de climats doux et d’orangerie Sensibles Citrus (citronnier, mandarinier, oranger), Ficus (figuier) Plantes à jardinière et à massif Arbrisseaux et sous-arbrisseaux Moyennement Artemisia (armoise), Potentilla (potentille) sensibles Peu sensibles Atriplex (arroche), Calluna (callune), Erica (bruyère), Fuchsia (fuchsia), Helichrysum (immortelle), Lavatera (lavatère) Fiche de description - Psylles 275 Plante & Cité, Guérin M. Noémie Jacquemin, Fredon Pays de la Loire Fig. 7 : Dégâts d’Acizzia jamatonica sur feuilles d’acacia Fig. 9 : Dégâts de Psylla buxi sur pousses de buis Noémie Jacquemin, Fredon Pays de la Loire Fig. 8 : Dégâts d’Acizzia jamatonica sur feuilles d’acacia Antenne TETE Œil composé THORAX Patte Ebauche alaire ABDOMEN Andrea Battisti, Università di Padova, Bugwood.org Soie Source : Plante & Cité, Guérin M. Fig. 10 : Schéma du dernier stade larvaire de psylle (1,5 mm) Fig. 11 : Larves et adultes de psylles dans leurs sécrétions au revers d’une feuille David Hall, USDA Agricultural Research Service, Bugwood.org Fig. 12 : 5 stades larvaires de Diaphorina citri Fiche de description - Psylles 276 Antenne TETE Pièce buccale 0 Œil composé THORAX Johnny N. Dell, Bugwood.org Patte Fig. 14 : Adulte de psylle David Hall, USDA Agricultural Research Service, Bugwood.org ABDOMEN Aile Source : Plante & Cité, Guérin M. Fig. 13 : Schéma de psylle adulte (2-6 mm) Fig. 15 : Œufs de Diaphorina citri (0,2 mm) Romain Fouquet, Fredon Pays de la Loire Fig. 17 : Adulte de Cacopsylla fulguralis Plante & Cité, Guérin M. Fig. 16 : Adulte de Cacopsylla fulguralis (2 mm) sur une feuille d’éléagnus dégradée Plante & Cité, Guérin M. Amandine Gourlay, Fredon Pays de la Loire Fig. 18 : Larve d’Acizzia jamatonica (1 mm) Fig. 19 : Larve de Cacopsylla fulgaris (1 mm) excrétant une goutte de miellat Amandine Gourlay, Fredon Pays de la Loire Fig. 20 : Adulte d’Acizzia jamatonica (2 mm) Fiche de description - Psylles 278 ·· Description : 1-1,5 mm. Dans les tons jaunes, bruns, verts. En forme d’écaille, fortement aplatie. Entourée d’une frange de soies plus ou moins visibles. Paire d’yeux composés rouges à bruns. Ebauches alaires aux derniers stades. Pour la plupart, sécrétions de filaments de cire blanche à l’extrémité de l’abdomen. A partir de L3, contenue dans une goutte de miellat. ·· Organe(s) attaqué(s) : Jeunes pousses, feuilles, fleurs, parfois branches et rameaux ·· Période d’observation : Mars-Octobre ·· Dégâts : Lors de la prise de nourriture Œuf Non observable à l’œil nu. 0,1-0,3 mm. Ellipsoïdal. Blanc puis jaune-orangé à maturité. Fixé sur le végétal par un court pédicelle partiellement ou entièrement inséré dans les tissus de la plante. Entre les écailles des jeunes pousses, dans les anfractuosités de l’écorce. Adulte ·· Description : 2-6 mm. Semblable à une cigale miniature, robuste. Dans les tons jaunes, bruns, verts. Longues pattes postérieures fortes adaptées au saut. 2 paires d’ailes membraneuses et transparentes, portant parfois des tâches, en toit au repos, ailes antérieures à nervation simple et visible, ailes postérieures plus petites à nervation réduite. Antennes fines de longueur moyenne. Paire d’yeux composés rouges à brun portés par 2 lobes saillants, 3 paires d’ocelles. Pour certains, sécrétions de filaments de cire blanche, en moindre quantité que les larves. ·· Organe(s) attaqué(s) : Jeunes pousses, feuilles, fleurs, parfois branches et rameaux ·· Période d’observation : Mars-octobre ·· Dégâts : Lors de la prise de nourriture : Risque de confusion avec les psocoptères (antennes plus longues, tête bien distincte du reste du corps, ailes disposées à plat au repos), insectes non dommageables aux plantes. Détermination Critères à prendre en compte : ·· Adultes : nervation des ailes, nombre et disposition des spinules? ·· Larves : position de l’anus, nombre de glandes cireuses Principales espèces présentes en ZNA →Psylle → de l’albizzia (Acizzia jamatonica) ·· 1,5-2 mm. Jaune-vert puis rose-brun. Yeux rouges. Larves jaune à vert, derniers stades portant des marques noires. Sur feuilles, fleurs, gousses, jeunes pousses. ·· Miellat produit en grande quantité. Dépigmentation, dessèchement, chute prématurée des folioles. Défoliation précoce si fortes infestations. Dépérissement des branches. ·· Plantes-hôtes : Inféodée à Albizzia (A. julibrissin …) →Psylle → de l’éléagnus (Cacopsylla fulguralis) ·· 2-2,5 mm. Brun clair. Ailes antérieures marquées de brun foncé, au repos on distingue 2 tâches claires : un triangle suivi d’un losange. Appendices jaune-brun marqués de brun foncé. Larve jaune-vert tâchée de brun foncé, tube cireux blanchâtre à l’extrémité de l’abdomen. Sur feuilles (face inférieure) ·· Miellat produit en grande quantité. Réduction de croissance, jaunissement, chute prématurée, dépérissement ·· Plantes-hôtes : inféodé à Elaeagnus →Psylle → de l’arbre de Judée ((Caco)psylla pulchella) ·· Corps et appendices brun jaunâtre tâchés de noir. Ailes translucides tâchées de noir vers l’arrière du corps. Larve vert-jaunâtre, ébauches alaires blanc translucide, appendices blanc translucide à extrémité noire, sécrétions cireuses blanchâtres d’aspect cotonneux. Sur feuilles ·· Feuilles non/mal déployées. Réduction de croissance ·· Plantes-hôtes : inféodé à Cercis →→ Psylle commun du poirier (Cacopsylla pyri) ··2-3 mm. Brun, abdomen portant d’étroites bandes sombres transversales. Ailes translucides à nervures Fiche de description - Psylles 279 Nancy Gregory, University of Delaware, Bugwood.org Fig. 21 : Larve Psylla buxi (2 mm) et ses sécrétions Fredon Pays de Loire Fig. 22 : Adulte de Psylla buxi (2,5 mm) Amandine Gourlay, Fredon Pays de la Loire Fredon Pays de Loire Fig. 24 : Larve de Trioza alacris (1 mm) Fig. 23 : Sécrétions de Psylla buxi Amandine Gourlay, Fredon Pays de la Loire Fig. 25 : Adulte de Trioza alacris (2,5 mm) Plante & Cité, Guérin M. Plante & Cité, Guérin M. Fig. 26 : Dégâts de Psyllopsis fraxini Fig. 27 : Sécrétions de Psyllopsis fraxini Fiche de description - Psylles 280 beiges. Emet du bruit. Larve 1,5-2 mm, jaune clair puis jaune-brun, globuleuse puis aplatie, ébauches alaires brunes. Sur boutons floraux pour la 1e génération, jeunes feuilles (face inférieure) pour les suivantes. ·· Vecteur du phytoplasme du déclin de la poire (Pear Decline Phytoplasma) ·· Miellat produit en grande quantité. Chute prématurée des feuilles. Perte de vigueur. Floraison perturbée ·· Plantes-hôtes : Cydonia, Malus, Pyrus →→ Psylle du buis (Psylla buxi) ·· 2-3 mm. Vert clair à vert-jaunâtre. Ailes brillantes à nervures jaune-brunâtres. Appendices jaunâtres. Larve 2 mm, couverte de sécrétions cireuses blanchâtres d’aspect cotonneux. Sur jeunes pousses. ·· Miellat recouvert de sécrétions cireuses. Feuilles des jeunes pousses déformées en forme de cupule agglutinées les unes aux autres, inhibant la croissance des nouvelles pousses. Avortement. Feuilles à la base des rameaux boursouflées, décolorées. ·· Plantes-hôtes : inféodé à Buxus (B. sempervivens) →→ Psylle du frêne (Psyllopsis fraxinicola) ·· 3-3,5 mm. Vert tendre à jaune. Ailes translucides sans tâches. Yeux jaune clair à centre brun. Antennes à extrémité brune. Larve verte. Sur feuilles ·· Feuilles déformées. Réduction de croissance si attaques graves. ·· Plantes-hôtes : inféodé à Fraxinus (F. excelsior) →→ Psylle du nerprun (Trichochermes walkeri) ·· 2,5-3 mm. Brun foncé. Ailes antérieures tachetées de brun foncé. Antennes relativement longues. Larves jaune-verdâtre clair, entourées d’une frange de poils très serrés. Sur feuilles. ·· Enroulement du bord du limbe qui jaunit, contenant les larves. Dégâts souvent très étendus. En cas d’attaques graves, toutes les feuilles peuvent être touchées. ·· Plantes-hôtes : inféodé à Rhamnus (R. cathartica) →→ Psylle du laurier-sauce (Trioza alacris) ·· 2-3 mm. Orangé à brun, à marques brunâtres plus ou moins foncées. Ailes translucides à nervures jaunes. Antennes à extrémité noire. Larve blanc-jaunâtre clair à blanc-grisâtre à marques grisâtres plus ou moins foncées, antennes claires à extrémité noire, recouverte de petites masses de cire blanche. Sur feuilles ·· En particulier en zone méditerranéenne ·· Enroulement des bords du limbe en cornet bruni (contenant les œufs et larves), boursouflures jaunies, tissus devenant cassant. Si fortes populations, jeunes pousses déformées, desséchées, développement plus ou moins arrêtés. ·· Plantes-hôtes : inféodé à Laurus (L. nobilis …) →→ Psylle du prunier (Cacopsylla pruni) ·· Brun clair à foncé. Ailes bruns translucides à nervation foncée. Larves jaune-orangée. ·· Vecteur du phytoplasme responsable de l’enroulement de l’abricotier (ESFY) ·· Débourrement précoce, croissance perturbée. ·· Plantes-hôtes : Prunus →→ Psylle de l’olivier (Euphyllura olivina) ·· 2-2,5 mm. Vert clair. Pattes antérieures brun clair. Ailes portant des petites tâches noires. Larve 1-1,5 mm, vert clair à brun clair, couverte de sécrétions cireuses filamenteuses. Sur fleurs, feuilles. ·· Couvert de masses cotonneuses remplies de larves. Déformation des inflorescences puis des jeunes pousses. Retard de croissance. Réduction de croissance. ·· Plantes-hôtes : Fraxinus, Olea →→ Psylle galligène du frêne (Psyllopsis fraxini) ·· 2-3 mm. Vert-bleuâtre à jaune, clair, tâché de noir. Ailes transparentes à tâches noirâtres enfumées et nervures brunes. Yeux bruns. Larves vert-bleuâtre clair, yeux rouges. Sécrétions de cire blanche formant un feutrage. Sur pousses, feuilles ·· Boursouflures du bord du limbe (contenant les larves) épaissies et densément réticulées de marron-rouge, noircies en fin de saison, peu abondantes, n’entraînant pas de chute prématurée. Réduction de croissance si forte infestation ·· Plantes-hôtes : inféodé à Fraxinus (F. excelsior, F. ornus …) →→ Psylle printanier du pommier (Cacopsylla mali) ·· 3,5-4 mm. Vert tendre. Appendices orange-blanchâtre à extrémité brunâtre. Ailes à nervures orangées. Yeux blanc à centre noir. Sur feuilles ·· Dégâts sur feuilles Fiche de description - Psylles 281 Mort DE G OVIPOSITION AT S OEUF 5-6 jours 1-3 semaines plusieurs mois REPRODUCTION ADULTE LARVE I Printemps à automne : ≤ 1 semaine ≤ 1 semaine ≥ 1 génération(s) /an LARVE V LARVE II ≤ 1 semaine ≤ 1 semaine LARVE IV DEGATS LARVE III ≤ 1 semaine Source : Plante & Cité, Guérin M. Fig. 28 : Cycle biologique du psylle Durée variable selon la température Jeffrey W. Lotz, Florida Department of Agriculture and Consumer Services, Bugwood.org Fig. 29 ; Larve âgée de Diaphorina citri (1,5 mm) INRA-Bordeaux Archive, Institut National de la Recherche Agronomique, Bugwood.org Fig. 30 : Colonies de Diaphorina citri sur pousses de Citrus Jeffrey W. Lotz, Florida Department of Agriculture and Consumer Services, Bugwood.org Fig. 32 : Adulte de Diaphorina citri (3,5 mm) Natalie Hummel, Louisiana State University AgCenter, Bugwood.org Fig. 31 : Larves de Diaphorina citri sur pétiole de feuille de Citrus Fiche de description - Psylles 282 ·· Plantes-hôtes : Malus →→ Psylle du figuier (Homotoma ficus) ·· 3-4 mm. Appendices brun foncé, densément recouverts de soies, articulations claires. Ailes translucides à bordure intérieure couverte de bandes noirâtres. Larve 2-3 mm verte, couverte de nombreuses soies relativement longues, ébauches alaires et bout de l’abdomen blanchâtres, yeux rosés. Sur feuilles ·· Dégâts sur feuilles ·· Plantes-hôtes : Ficus (F. carica) →→ Psylle de l’aulne (Psylla alni) ·· 4-5 mm. Vert vif, apparition de marques rouges à brunes en vieillissant. Ailes translucides, brillantes, à nervures foncées. Yeux brun-jaunâtre à centre noirâtre. Antennes brun-jaunâtre, noirâtre à l’extrémité. Pattes à articles verts à bords brun-jaunâtre, articulation et extrémité noirâtres. Larve verte portant des tâches arrondies noires, sécrétions cireuses blanches d’aspect laineux. Sur jeunes pousses ·· Masses dé sécrétions cireuses et de miellat (contenant les larves).Rarement important. Parfois réduction de vigueur des jeunes pousses. ·· Plantes-hôtes : inféodé à Alnus →→ Psylle de l’aubépine ((Caco)psylla crataegi) ·· Rougeâtre à brun, portant des lignes blanchâtres le long du thorax. Larve verdâtre marquée d’orange plus ou moins foncé. Sur jeunes pousses. ·· Cire et miellat sécrétés en grande quantité. Feuilles mal déployées. Dégâts directs faibles ou nuls. ·· Plantes-hôtes : Acer, Crataegus, Fagus, Quercus, Salix →→ Psylle du chêne (Trioza remota (=T. haematodes)) ·· 2,5-3 mm. Rouge-brunâtre marqué de crème. Ailes à nervures jaunes à brunâtres. Larve 2 mm, orange clair avec une paire de bandes longitudinales orange soutenu. Sur feuilles (face inférieure) ·· Face inférieure des feuilles parsemée de creux (contenant les individus), face supérieure bosselée. Dégâts insignifiants, limbe non déformée ·· Plantes-hôtes : inféodé à Quercus (Q. petrea, Q. robur) →Psylle → de l’eucalyptus (Ctenarytaina eucalypti) ·· Organisme de lutte obligatoire dans les DOM ·· 1,5-2 mm. Brun-foncé à thorax partiellement orange. Ailes antérieures blanchâtres à nervures jaunes. Larve jaune-grisâtre à orange-brun, portant des filaments cireux blanchâtres. Sur pousses. ·· Au S-E et Bretagne ·· Pas de déformation des pousses mais dessèchement des pousses terminales. Ralentissement de croissance si fortes attaques ·· Plantes-hôtes : Eucalyptus (E. cinerea, E. gunnii …) →Psylle → des agrumes (Diaphorina citri) ·· Organisme de quarantaine non introduit en Europe, organisme de lutte obligatoire sous certaines conditions en France métropolitaine aVEILLE sur Citrus dans la région méditerranéenne en particulier ·· 3-4 mm. Brun foncé tacheté de brun clair, tête brun clair. Ailes antérieures portant deux bandes brunes longitudinales. Yeux rouge vif. Antennes à extrémité noire. Couvert de sécrétions cireuses donnant un aspect poussiéreux. Larve 1-1,5 mm, jaune-orangé, sécrétions de filaments cireux au bout de l’abdomen. Sur jeunes pousses, feuilles (face inférieure) ·· Vecteur de bactériose (greening des agrumes dû à Candidatus) ·· Miellat produit en abondance. Déformation des pousses et feuilles, décoloration, chute prématurée. ·· Plantes-hôtes : Citrus Eléments de Biologie Cycle biologique ·· Hivernation : à l’état adulte dans des endroits abrités (crevasse écorce …) en général sur une espèce différente de leur plante-hôte, parfois sous forme d’œufs/jeunes larves déposés dans les écailles des bourgeons de la plante-hôte ·· Vie libre, excepté les œufs et L1 de certaines espèces qui vivent au sein de galles ·· Tous les stades sont mobiles : les larves se déplacent lentement, les adultes se déplacent par vols brefs et désordonnés, par saut lorsqu’ils sont dérangés ·· Fécondité élevée : de plusieurs centaines à un millier d’œufs/femelle Fiche de description - Psylles 283 Amandine Gourlay, Fredon Pays de la Loire Fig. 33 : Larve de coccinelle et punaise prédatrice au sein d’une colonie d’Acizzia jamatonica Jeffrey W. Lotz, Florida Department of Agriculture and Consumer Services, Bugwood.org Whitney Cranshaw, Colorado State University, Bugwood.org Fig. 34 : Larves de psylle parasitées par un hyménoptère parasitoïde (trou d'émergence ) Fig. 35 : Adulte d’hyménoptère parasitoïde de la famille des encyrtidés (1 mm) Amandine Gourlay, Fredon Pays de la Loire Fig. 36 : Larve de syrphe au sein d’une colonie d’Acizzia jamatonica Fiche de description - Psylles 284 ·· La plupart émettent du bruit en agitant leurs ailes ·· Les températures trop élevées leurs sont défavorables Régime alimentaire ·· Dégâts dus à la prise de nourriture : ponction de sève élaborée dans les vaisseaux du phloème par les larves et adultes : sécrétion de miellat, en particulier par les larves qui en sécrètent en abondance, induit une association mutualiste avec les fourmis ·· La plupart sont spécifiques : inféodé à une espèce ou un petit groupe d’espèces liées ·· Transmission d’agents pathogènes (phytoplasmes, bactéries, virus) par certaines espèces Auxiliaires associés Bon contrôle par la faune auxiliaire spontanée. Les populations de psylles constituent d’ailleurs des réservoirs d’auxiliaires non spécifiques, permettant ainsi la régulation d’autres ravageurs. CLASSE/SOUS-CLASSES TAXONS TYPE Insectes Névroptères : Prédateurs ·· Chrysopes ·· Hémérobes Hétéroptères (Punaises) Prédateurs ·· Anthocoridés : Anthocoris (A. nemoralis), Orius (O. insidiosus, O. laevigatus, O. majusculus, O. vicinus) ·· Miridés ·· Nabidés Araignées Champignons Coléoptères : ·· Coccinelles : Harmonia (H. axyridis), Stethorus Diptères : ·· Syrphes ·· Cécidomyies Prédateurs Hyménoptères ·· Encyrtidés : Psyllaephagus ·· Eulophidés : Tamarixia / Entomophthorales : Entomophthora Parasitoïdes Prédateurs Prédateurs Parasites Textes réglementaires associés ·· Psylle de l’eucalyptus (Ctenarytaina eucalypti) : au niveau français, organisme de lutte obligatoire sous certaines conditions en France Métropolitaine de part l’«Arrêté du 31 juillet 2000 établissant la liste des organismes nuisibles aux végétaux, produits végétaux et autres objets soumis à des mesures de lutte obligatoire» (J.O. 31/08/00). ·· Psylle des agrumes (Diaphorina citri) : ·· Au niveau européen : organisme de quarantaine listé sur l’annexe A1 (organisme absent du territoire) de l’ «EPPO lists of pest recommended for regulation as quarantine pests». ·· Au niveau français : organisme de lutte obligatoire sous certaines conditions en France Métropolitaine de part l’«Arrêté du 31 juillet 2000 établissant la liste des organismes nuisibles aux végétaux, produits végétaux et autres objets soumis à des mesures de lutte obligatoire» (J.O. 31/08/00). Eléments de bibliographie ·· F. Ossiannilsson. (1992). Fauna Entomologica Scandinavia, Vol. 26 : The Psylloidea (Homoptera) of Fennoscandia and Denmark. Brill. 342 p. ·· Diana M. Percy. (2002). Psyllids or ‘jumping plant lice’ (Psylloidea, Hemiptera). University of British Columbia Department of Botany, Beaty Biodiversity Museum. http://www.psyllids.org/index.htm ·· D. Ouvrard. Psyl’list - The World Psylloidea Database. Muséum nationale d’histoire naturelle. http://rameau.snv.jussieu. fr/cgi-bin/psyllesexplorer.pl?lang=fr Fiche de description - Psylles 285 Fiche de description Pucerons Les pucerons sont les ravageurs des parties aériennes les plus représentés en ZNA, on les trouve également occasionnellement sur les parties racinaires. Présents sur tous types de végétaux, ils sont pour la plupart spécifiques. Leurs dégâts directs sont rarement dommageables aux végétaux, leurs nuisances étant essentiellement d’ordre esthétique (déformation des organes attaqués) et commoditaire (miellat). En revanche, les virus qu’ils transmettent peuvent avoir de graves conséquences pour la santé de la plante infectée. Il existe un grand nombre d’auxiliaires naturels qui permettent en général une bonne régulation des populations Fiche de description - Pucerons 287 Plante & Cité, Guérin M. Fig. 1 : Colonie de pucerons au revers d’une feuille d’érable Plante & Cité, Guérin M. Fig. 3 : Colonies de pucerons sur bouton floral d’hibiscus Plante & Cité, Guérin M. Fig. ?? : Galle à Pemphigus spirothecae sur pétiole de peuplier Fiche de description - Pucerons 288 Eléments de Classification Les pucerons représentent l’ensemble des Insectes Hémiptères Sternorrhynques de la super-famille des Aphidoidea. Sur plus de 4000 espèces identifiées, environ 250 sont considérées comme ravageurs des plantes. Plantes-Hôtes Se rencontre sur une très large gamme de végétaux. En particuluer sur Conifères, Rosacées et Astéracées. Arbres Très sensibles Acer (érable), Fagus (hêtre), Tilia (tilleul) Sensibles Catalpa (catalpa), Laburnum (cytise), Lagestroemia (lilas des Indes), Liriodendron (tulipier), Populus (peuplier), Quercus (chêne), Robinia (robinier), Salix (saule), Ulmus (orme) Moyennement Betula (bouleau), Carpinus (charme), Castanea (châtaignier), Cercis (arbre de Judée), Corysensibles lus (noisetier), Eucalyptus (eucalyptus), Fraxinus (frêne), Jacaranda (jacaranda), Juglans (noyer), Magnolia (magnolia), Parrotia (parrotie), Platanus (platane), Pterocarya (ptérocarya) Peu sensibles Acacia (acacia, mimosa), Aesculus (marronnier), Ailanthus (ailante), Albizzia (albizzia), Alnus (aulne), Carya (caryer), Celtis (micocoulier), Ceratonia (caroubier), Cercidiphyllum (katsura), Clethra (muguet en arbre), Diospyros (plaqueminier), Eucommia (arbre à gomme), Firmiana (parasol chinois), Gleditsia (févier), Liquidambar (copalme), Maclura (oranger des osages), Morus (mûrier), Olea (olivier), Ostrya (ostryer), Paulownia (paulownia), Phellodendron (phellodendron), Ptelea (ptéléa), Schinus (faux-poivrier), Sophora (sophora), Tipuana (tipa), Toona (cédrèle), Zelkova (zelkova), Ziziphus (jujubier) Fruitiers d’ornement Très sensibles Malus (pommier d’ornement), Prunus d’ornement (cerisier, laurier-cerise, prunier) Sensibles Chaenomeles (cognassier du Japon), Crataegus (aubépine), Sorbus (alisier, sorbier) Moyennement Cydonia (cognassier), Mespilus (néflier), Pyrus (poirier d’ornement) sensibles Peu sensibles Amelanchier (amélanchier) Conifères et assimilés Très sensibles Cupressus (cyprès), Picea (épicéa), Pinus (pin) Sensibles Cedrus (cèdre), Chamaecyparis (cyprès de Lawson), Cupressocyparis (cyprès de Leyland), Larix (mélèze), Thuja (thuya) Moyennement Abies (sapin), Juniperus (genévrier), Pseudotsuga (douglas) sensibles Peu sensibles Cryptomeria (cryptomère), Sequoia (séquoia), Taxodium (cyprès chauve), Taxus (if), Tsuga (tsuga) Arbustes Très sensibles Arbutus (arbousier), Hibiscus (hibiscus), Ilex (houx), Ligustrum (troène), Philadelphus (seringat), Sambucus (sureau) Sensibles Berberis (berbéris), Bignonia (bignogne), Brugmansia (brugmansia), Buddleja (arbre aux papillons), Clematis (clématite), Elaeagnus (éléagnus), Euonymus (fusain), Genista (genêt), Nerium (laurier-rose), Mahonia (mahonia), Rhamnus (bourdaine, nerprun), Rhododendron (rhododendron), Ribes (cassissier, groseillier), Solanum (morelle), Spartium (genêt d’Espagne), Viburnum (laurier-tin, viorne) Fiche de description - Pucerons 289 Plante & Cité, Guérin M. Fig. 4 : Colonies de pucerons sur dahlia Fiche de description - Pucerons 290 Moyennement Abutilon (abutilon), Buxus (buis), Camellia (camélia), Cytisus (genêt à balais), Hedera sensibles (lierre), Hydrangea (hortensia), Indigofera (indigotier), Lonicera (chèvrefeuille), Rhus (sumac), Wisteria (glycine) Peu sensibles Aucuba (aucuba), Abelia (abélia), Broussonetia (broussonetia), Calliandra (calliandre), Callicarpa (arbuste à perles), Callistemon (plante goupillon), Caryopteris (caryoptéris), Cistus (ciste), Colutea (baguedaunier), Cornus (cornouiller), Corylopsis (corylopsis), Cotinus (arbre à perruques), Daphne (daphné), Deutzia (deutzia), Forsythia (forsythia), Grevillea (grévillée), Hippophae (argousier), Lantana (lantana), Laurus (laurier-sauce), Leycesteria (arbre aux faisans), Nandina (nandina), Osmanthus (osmanthe), Phillyrea (filaria), Pittosporum (pittosporum), Punica (grenadier), Syringa (lilas), Tamarix (tamaris), Vitex (gattilier), Weigela (weigéla) ·· Rosacées Très sensibles Pyracantha (pyracantha), Rosa (rosier) Sensibles Photinia (photinia), Rubus (ronce d’ornement), Spiraea (spirée) Moyennement Cotoneaster (cotonéaster) sensibles Peu sensibles Aronia (aronie), Physocarpus (physocarpe), Stephanandra (stephanandra) Palmiers et autres plantes de climats doux et d’orangerie Très sensibles Citrus (citronnier, mandarinier, oranger) Sensibles Cyperus (papyrus), Musa (bananier) Moyennement Bambusa (bambou), Sasa (bambou nain), Yucca (yucca) sensibles Peu sensibles Agave (agave), Aloe (aloès), Aralia (aralia), Canna (canna), Cordyline (cordyline), Cycas (cycas), Ficus (figuier), Phoenix (dattier), Trachycarpus (palmier de chine) Plantes à jardinière et à massif Arbrisseaux et sous-arbrisseaux Très sensibles Fuschia (fuschia) Sensibles Azalea (azalée) Moyennement Atriplex (arroche), Cuphea (plante-cigarette), Euphorbia (euphorbe), Filipendula (filipensensibles dule), Lavandula (lavande), Lavatera (lavatère), Potentilla (potentille) Peu sensibles Artemisia (armoise), Aruncus (barbe de bouc), Astericus (astérisque), Astilbe (astilbe), Calluna (callune), Erica (bruyère), Eupatorium (eupatoire), Helianthemum (hélianthème), Helichrysum (immortelle), Hypericum (millepertuis), Leonotis (léonotis), Lithodora (lithodore), Lotus (lotier), Muehlenbeckia (muehlenbeckie), Paeonia (pivoine), Penstemon (penstémon), Perovskia (pérovskia), Rosmarinus (romarin), Satureja (sarriette), Teucrium (germandrée) Bulbes et assimilés Très sensibles Dahlia (dahlia), Tulipa (tulipe), Zantedeschia (calla) Sensibles Freesia (freesia), Gladiolus (glaïeul), Helleborus (hellébore), Iris (iris), Lillium (lis) Moyennement Anemone (anémone), Arum (arum), Crocus (crocus), Cyclamen (cyclamen), Galanthus sensibles (perce-neige), Hemerocallis (hémérocalle), Hyacinthus (jacinthe) Peu sensibles Agapanthus (agapanthe), Allium (ail ornemental), Chionodoxa (chionodoxa), Commelina Fiche de description - Pucerons 291 Plante & Cité, Guérin M. Fig. 5 : Colonie de pucerons cendrés sur chou d’ornement Plante & Cité, Guérin M. Fig. 6 : Colonies de pucerons sur dahlia Fiche de description - Pucerons 292 Peu sensibles (comméline), Convallaria (muguet), Crinum (crinum), Crosomia (montbrétia), Curcuma (curcuma), Dicentra (cœur de Marie), Eremurus (érémurus), Erythronium (érythrone), Fritilaria (fritillaire), Hippeastrum (hippeastrum), Kniphofia (tritome), Liatris (liatride), Liriope (liriope), Muscari (muscari), Narcissus (narcisse), Nerine (nérine), Oxalis (oxalis), Paeonia (pivoine), Scilla (scille), Sparaxis (sparaxis) Plantes molles Très sensibles Begonia (bégonia), Dianthus (œillet), Lupinus (lupin), Petunia (pétunia) Sensibles Impatiens (impatience), Mesembryanthemum (ficoïde), Mirabilis (belle de nuit), Papaver (pavot), Pelargonium (pélargonium), Primula (primevère), Tropaelum (capucine), Viola (pensée) Moyennement Alcea (rose-trémière), Amaranthus (amaranthe), Asclepias (asclépiade), Asparagus (aspasensibles ragus), Aubrieta (aubriète), Beta (bette), Cactées, Celosia (celosie), Cleome (cléome), Delosperma (ficoïde), Fougères, Geranium (géranium), Graminées, Ipomoea (ipomée), Malva (mauve), Matthiola (giroflée), Phlox (phlox), Portulaca (pourpier), Saxifraga (saxifrage), Scabiosa (scabieuse), Verbena (verveine), Vinca (pervenche) Peu sensibles Acaena (acéna), Acanthus (acanthe), Alchemilla (alchémille), Alyssum (corbeille d’or), Anchusa (buglosse), Angelica (angélique), Aptenia (apténie), Arabis (arabette), Armeria (gazon d’Espagne), Astrantia (astrance), Bergenia (bergénie), Brassica (chou ornemental), Caladium (caladium), Campanula (campanule), Corydalis (corydale), Eryngium (panicaut), Foeniculum (fenouil d’ornement), Gaura (gaura), Geum (benoîte), Gypsophila (gypsophile), Heuchera (heuchère), Hosta (hosta), Iberis (corbeille d’argent), Lobelia (lobélie), Lychnis (coquelourde), Lysimachia (lysimaque), Nicotinia (tabac d’ornement), Oenothera (onagre), Ophiopogon (ophiopogon), Persicaria (persicaria), Platycodon (platycodon), Plumbago (dentelaire), Polemonium (polémoine), Polygonatum (sceau de Salomon), Pulmonaria (pulmonaire), Rheum (rubarbe), Sanguisorba (pimprenelle), Saponaria (saponaire), Sedum (orpin), Sempervivum (joubarbe), Symphytum (consoude), Thunbergia (thunbergie), Tradescantia (misère) ·· Astéracées Très sensibles Chrysanthemum (chrysanthème) Sensibles Calendula (souci), Cineraria (cinéraire), Cosmos (cosmos) Moyennement Achillea (achillée), Ageratum (agératum), Aster (aster), Callistephus (reine-marguerite), sensibles Centaurea (centaurée), Cynara (cardon), Gerbera (gerbera), Senecio (séneçon), Tagetes (œillet d’Inde), Tanacetum (pyrèthre) Peu sensibles Anthemis (camomille), Bidens (bidens), Coreopsis (coréopsis), Echinacea (échinacée), Echinops (boule azurée), Erigeron (vergerette), Euryops (euryops), Gaillardia (gaillarde), Gazania (gazanie), Helenium (hélénie), Helianthus (hélianthe), Heliopsis (héliopsis), Leucanthemum (marguerite), Ligularia (ligulaire), Osteospermum (dimorphotéca), Petasites (pétasite), Rudbeckia (rudbéckie), Sanvitalia (sanvitalie), Solidago (verge d’or), Tithonia (soleil du Mexique), Zinnia (zinnia) ·· Lamiacées Moyennement Coleus (coléus), Salvia (sauge) sensibles Peu sensibles Agastache (agastache), Ajuga (bugle), Glechoma (lierre terrestre), Lamium (lamier), Monarda (monarde), Nepeta (népéta), Origanum (origan), Perilla (périlla), Phlomis (sauge de jérusalem), Plectranthus (plectranthus),Stachys (épiaire), Thymus (thym) Fiche de description - Pucerons 293 Whitney Cranshaw, Colorado State University, Bugwood.org Fig. 7 : Miellat et fumagine sur tilleul Plante & Cité, Guérin M. Fig. 9 : Symptôme sur feuille de cerisier Plante & Cité, Guérin M. Fig. 8 : Symptôme sur feuilles d’arbousier Plante & Cité, Guérin M. Fig. 10 : Symptôme sur feuilles de Viburnum opulus Plante & Cité, Guérin M. Fig. 12 : Femelle ailée Fiche de description - Pucerons Plante & Cité, Guérin M. Fig. 11 : Feuillage de Viburnum opulus déformé par un attaque de pucerons Plante & Cité, Guérin M. Fig. 13 : Colonies de pucerons (femelles aptères) 294 Filet Antenne Adulte ailé TETE Œil composé THORAX Patte Larve v Griffe Cornicule Cauda v ABDOMEN Source : Plante & Cité, Guérin M. Fig. 15 : Puceron adulte aptère (1-4 mm) Filet Cornicule Exuvie Antenne Cauda Œil composé Griffe Adulte aptère Patte Source : Plante & Cité, Guérin M. Fig. 16 : Puceron adulte aptère Plante & Cité, Guérin M. Fig. 14 : Colonies de pucerons sur jeunes pousses Plante & Cité, Guérin M. Fig. 18 : Femelles aptères de Macrosiphum rosae (2,5 mm) Petr Kapitola, State Phytosanitary Administration, Bugwood.org Fig. 17 : Dégâts d’Elatobium abietinum sur Picea pungens Donald Owen, California Department of Forestry and Fire Protection, Bugwood.org Plante & Cité, Guérin M. Plante & Cité, Guérin M. Fig. 19 : Femelle aptère d’Elatobium abietinum (2 mm) Fiche de description - Pucerons Fig. 20 : Femelle aptère d’Aphis fabae (2 mm) Fig. 21 : Colonies de Macrosiphum rosae sur rameau de rosier (individus roses et verts) 296 blanches pruineuses ou cireuses. ·· Gros yeux composés? rouge à brun foncé, disposés sur les bords latéraux de la tête. ·· Pièces buccales de type piqueur-suceur (rostre portant des stylets) ·· Antennes terminées par un fouet, parfois insérées sur des tubercules frontaux. ·· Aptères ou ailés de 2 grandes paires d’ailes membraneuses transparentes à nervation réduite. ·· Pattes portant des griffes doubles, non adaptées au saut. ·· Abdomen prolongée postérieurement par une cauda? et portant généralement une paire de cornicules?. ·· En général regroupés sous forme de colonies denses. ·· Position dans le végétal : feuilles et autres tissus tendres, parfois au sein de galles ·· Période d’observation : Printemps-automne ·· Dégâts : Lors de la prise de nourriture Œuf < 1 mm, allongé, noir brillant, isolé ou en groupe. Sur l’écorce. Observable en hiver. Larve/Nymphe ·· Description : 1-2 mm. Semblables aux adultes aptères. Ebauches alaires sur les futurs ailés. Différentes mues laissant sur le végétal des exuvies blanches. ·· Position dans le végétal : feuilles et autres tissus tendres, parfois au sein de galles ·· Période d’observation : Printemps-automne ·· Dégâts : Lors de la prise de nourriture Détermination Critères de détermination : ·· forme du corps, ·· couleur, ·· caractéristiques des cornicules, ·· nervation des ailes. Principales espèces →Puceron → noir de la fève (Aphis fabae) ·· 1-3 mm. Globuleux, trapu. Verdâtre foncé à noir, mât. Parfois tâches de cire blanchâtre sur l’abdomen. Pattes et antennes brun-marron, antennes plus courtes que le corps. Courtes cornicules? noires. Cauda? peu développée. En colonie dense ·· Fort enroulement des jeunes feuilles, retard de croissance, avortement de bourgeons floraux ·· Important vecteur de virus (Mosaïque du Dahlia …) ·· Plantes-hôtes : Dioécique?, polyphage, > 200 plantes-hôtes ·· Hôte primaire : Acer, Bignonia, Brugmansia, Buddleja, Cytisus, Euonymus (E. europaeus), Fuchsia, Jacaranda, Laburnum, Philadelphus, Pyracantha, Robinia, Sambucus, Solanum, Spartium, Viburnum (V. opulus), Wisteria ·· Hôte secondaire : Calendula, Clematis, Dahlia, Papaver, Petunia, Tropaeolum, Yucca →Puceron → vert de l’épicéa (Elatobium abietinum) ·· 1,5-2 mm. Vert. Yeux rouges. Cornicules et cauda allongées. Très actif. A la face inférieure des aiguilles. ·· Jaunissement des aiguilles âgées, brunissement, chute prématurée ·· Plantes-hôtes : Picea →Puceron → vert du rosier = Puceron des pousses de rosier (Macrosiphum rosae) ·· 1,5-3,5 mm. Fusiforme. Vert ou rose à brun-rougeâtre. Longs appendices noirs. Longues cornicules noires effilées. Cauda claire allongée. Colonies sur boutons floraux et face inférieure des feuilles. ·· Ralentissements de croissance, diminution de floraison, diminution de la longueur des tiges. Pas de recroquevillement du feuillage. ·· Plantes-hôtes : Dioécique ·· Hôte primaire : Rosa ·· Hôte secondaire : Ilex, Scabiosa Fiche de description - Pucerons 297 Joseph Berger, Bugwood.org Fig. 24 : Femelle ailée d’Aphis pomi (1,5 mm) Jim Baker, North Carolina State University, Bugwood.org Plante & Cité, Guérin M. H.J. Larsen, Bugwood.org Fig. 23 : Colonie d’Eriosoma lanigerum sur écorce de magnolia Fig. 25 : Œufs d’Aphis pomi sur écorce de pommier Fig. 22 : Dégâts d’Eriosoma lanigerum sur écorce de pommier Plante & Cité, Guérin M. Fig. 26 : Femelle ailée de Drepanosiphum platanoides (3,5 mm) Joseph Berger, Bugwood.org Fig. 27 : Eriosoma lanigerum sans leurs sécrétions (2 mm) Plante & Cité, Guérin M. Fig. 30 : Femelle ailée d’Eucallipterus tiliae (2 mm) Plante & Cité, Guérin M. Fig. 28 : Femelles aptères et larves de Drepanosiphum platanoides protégés par une colonie de fourmis Whitney Cranshaw, Colorado State University, Bugwood.org Fig. 29 : Dégâts de Brachycaudus helichrysi sur Prunus americana Plante & Cité, Guérin M. Fig. 31 : Phyllaphis fagi (2,5 mm) sur feuille de hêtre Fiche de description - Pucerons Louis-Michel Nageleisen, Département de la Santé des Forêts, Bugwood.org Andrea Battisti, Università di Padova, Bugwood.org Fig. 32 : Dégâts de Phyllaphis fagi sur Fagus sylvatica Fig. 33 : Pineus pini (1,5 mm) 298 →Puceron → laineux du hêtre (Phyllaphis fagi) ·· 2-3 mm. Vert-jaunâtre. Couvert de filaments cireux blancs denses, aspect cotonneux. Cornicules et cauda peu visibles. En colonie dense le long de la nervure principale de la face inférieure des feuilles. ·· Principalement dans le quart nord-ouest ·· Feuilles enroulées en forme de cigarette, dessèchement partant des bords du limbe, chute prématurée ·· Plantes-hôtes : Monoecique : Fagus (F. sylvatica), Parrotia →Chermès → du pin (Pineus pini) ·· 1-1,5 mm. Aptère presque sphérique, rouge à brun foncé, tête et thorax très sclérotinisés. Ailée gris-rougeâtre, ailes à nervures teintées de rouge. Sans cornicules. Dans amas de cire blanche d’aspect cotonneux. Sur écorce des pousses, tronc des jeunes arbres. ·· Salive toxique entraînant un jaunissement des aiguilles et dépérissement des branches ·· Plantes-hôtes : Pinus (P. sylvestris …) →→ Puceron vert du pommier (Aphis pomi) ·· 1-2 mm. Globuleux. Vert. Longues antennes claires. Pattes claires à articulations noires. Cornicules et cauda noires. En colonie dense. A la face inférieure des feuilles, jeunes pousses. Œufs ovales, vert à noir brillant, groupés, facilement observables sur les rameaux. ·· Miellat produit en grande quantité. Enroulement des feuilles, arrêt de croissance des jeunes pousses. ·· Plantes-hôtes : Monoecique sur rosacées ligneuses : Chaenomeles, Cotoneaster, Crataegus, Cydonia, Malus, Mespilus, Photinia, Pyracantha, Pyrus, Rosa, Sorbus, Spiraea →→ Puceron noir du sureau (Aphis sambuci) ·· 2-4 mm. Vert-grisâtre à brun-jaunâtre. Tête et thorax plus foncé. Parfois présence de stries blanches transversales de part et d’autres de l’abodmen. Cornicules allongées. Cauda arrondi. Recouvert de cire blanchâtre donnant un aspect légèrement poudreux. Colonies denses. Sur jeunes pousses. ·· Plantes-hôtes : Dioecique ·· Hôte primaire : Sambucus ·· Hôte secondaire : Dianthus, Saxifraga →→ Puceron vert du prunier (Brachycaudus helichrysi) ·· 1-2 mm. Arrondi. Vert-jaunâtre à brunâtre, brillant. Yeux brun-rouge. Antennes courtes. Courtes cornicules claire portant une collerette. Cauda arrondie. Sur organes tendres. ·· Fort enroulement, crispation des feuilles, déformation des pousses, espèces herbacées rabougries ·· Vecteur de virus (Sharka) ·· Plantes-hôtes : Dioécique ·· Hôte primaire : Prunus ·· Hôte secondaire : Aster, Boraginacées, Scrofulariacées, Vinca →→ Puceron du sycomore (Drepanosiphum platanoides) ·· 3-4 mm. Allongée. Vert clair à vert-grisâtre, parfois teintée de rougeâtre. Petites tâches plus foncées sur le dos. Cornicules longues. Cauda petite. Larve à yeux rouges, marques noirâtres sur les antennes. ·· Miellat produit en grande quantité ·· Plantes-hôtes : Acer (A. pseudoplatanus) →→ Puceron lanigère du pommier (Eriosoma lanigerum) ·· 1-2,5 mm. Ovale. Brun-pourpré. Antennes courtes. Cornicules en forme de pores. Couvert de longs filaments cireux blancs donnant un aspect cotonneux. Larve non recouverte de filaments. Sur parties ligneuses, en particulier sur blessures et plaies, parfois sur pousses tendres. ·· Galles et chancres provoqués par les piqûres qui entravent la circulation de sève et favorisent l’établissement de parasites secondaires. Croissance réduite. Déformation des pousses ·· Plantes-hôtes : Monoecique en France sur rosacées ligneuses : Chaenomeles, Cotoneaster, Crataegus, Cydonia, Malus, Pyracantha, Pyrus, Sorbus →→ Puceron du tilleul (Eucallipterus tiliae) ·· 1-3 mm. Jaune pâle à orangé. Stries latérales noires sur l’abdomen formant des lignes longitudinales. Yeux rouges. Antennes striées de noir. Ailes bordées de tâches enfumées. Cornicules trapues foncées. Cauda arrondie. ·· Miellat produit en grande quantité Fiche de description - Pucerons 299 Robert L. Anderson, USDA Forest Service, Bugwood.org. Fig. 34 : Femelle (3 mm) et larves (1-2 mm) d’Illinoia liriodendri Andrea Battisti, Università di Padova, Bugwood.org Fig. 35 : Femelles ailées et aptères de Cinara pilicornis (3 mm) Whitney Cranshaw, Colorado State University, Bugwood.org Fig. 36 : Larve (1 mm) et femelle (4 mm) de Macrosiphum albifrons Whitney Cranshaw, Colorado State University, Bugwood.org Fig. 37 : Femelles ailées (2,5 mm), aptères (2 mm) et larves (1 mm) de Myzus cerasi Whitney Cranshaw, Colorado State University, Bugwood.org Fig. 38 : Femelle aptère, ailée, larve et mue de Macrosiphum euphorbiae Fiche de description - Pucerons Whitney Cranshaw, Colorado State University, Bugwood.org Fig. 39 : Colonies de Macrosiphum euphorbiae sur bourgeons de Lactuca sativa 300 ·· Plantes-hôtes : Tilia →→ Puceron du tulipier (Illinoia (= Macrosiphum) liriodendri) ·· 3 mm. Ovale. Jaune à vert pâle. Longues antennes brunes. Cornicules minces ·· Jaunissement du feuillage, chute prématurée ·· Plantes-hôtes : Liriodendron, Magnolia →→ Puceron du lupin (Macrosiphum albifrons) ·· 3-5 mm. Bleu-vert clair. Yeux, antennes et tibias rouge-brun. Longs appendices. Cornicules brunes à noires. Recouvert de cire blanche donnant un aspect poudreux. Sur tous organes ·· Dégâts les plus graves sur jeunes fleurs, avortement des inflorescences. Peut entraîner la mort ·· Plantes-hôtes : Lupinus →→ Puceron de l’euphorbe = Puceron vert et rose de la pomme de terre (Macrosiphum euphorbiae) ·· 2-3 mm. Fusiforme. Gris-vert ou rose foncé, brillant. Longs appendices. Antennes allant du jaunâtre au noir à leur extrémité. Pattes jaunes, noirs aux articulations. Cornicules noires, courbées. Cauda jaunâtre ·· Vecteur de virus (Mosaïque du freesia). Plantes déformées, aspect rabougri ·· Plantes-hôtes : Dioécique. Très polyphage ·· Hôte primaire : Brugmansia, Eucalyptus, Hibiscus, Rosa et autres Rosacées, Solanum ·· Hôte secondaire : Alcea, Antirrhinum, Aquilegia, Arum, Calendula, Chrysanthemum, Cineraria, Dahlia, Dianthus, Euphorbia, Freesia, Gladiolus, Iris, Senecio, Tulipa, Zantedeschia →→ Puceron des tiges de rosier (Maculolachnus submacula) ·· 2-4 mm. Brun foncé à noir, brillant. Antennes courtes. Courtes cornicules coniques. Cauda peu visible, arrondie. A la base des tiges, en général protégés par des abris en terre. Œufs d’hiver noir brillant sur la partie inférieure des tiges, facilement observable à la sortie de l’hiver. ·· Arrêt de croissance pouvant entraîner la mort ·· Plantes-hôtes : Rosa →→ Puceron de l’échalote (Myzus ascalonicus) ·· 1-2 mm. Légèrement convexe. Tons bruns, brillant. Cornicules renflées à leur extrémité. Cauda peu visible. Sur bulbes entreposés ·· Importantes déformations du feuillage et des inflorescences, pousses faibles ·· Plantes-hôtes : Sur plantes herbacées : Astéracées, Gladiolus, Graminées, Lilium →→ Puceron noir du cerisier (Myzus cerasi) ·· 1,5-2,5 mm. Aptère brun foncé à noire, ailé brun-jaunâtre portant une grande tâche noire sur l’abdomen. Longues cornicules effilées noires. A la face inférieure des feuilles. ·· Crispation du feuillage qui brunit puis noircit. Déformation des jeunes pousses, dépérissement ·· Plantes-hôtes : Dioécique ·· Hôte primaire : Prunus (P. padus, P. avium) ·· Hôte secondaire : Veronica →→ Puceron du troène (Myzus ligustri) ·· 1-2 mm. Jaune à vert-jaunâtre, brillant. Yeux noirs. Longues antennes vertes. Longues cornicules, enfumées aux extrémités. Cauda effilée, jaunâtre. Ailée à tête brune et lignes brunes transversales sur l’abdomen. Sur jeunes pousses. ·· Enroulement des bords du limbe, décoloration, chute prématurée, diminution de vigueur ·· Plantes-hôtes : Ligustrum →→ Pucerons géants des conifères (Cinara sp.) ·· 2-5 mm. Tons bruns foncé. Recouvert de poils fins. Cornicules courtes. Cauda peu visibles. En petite colonie. Œuf ovoïde, noir brillant. Sur pousses et face inférieure des feuilles. ·· Miellat produit en grande quantité. Décoloration des aiguilles, perte de vigueur ·· Différentes espèces : sur Conifères ·· Puceron du mélèze (C. cuneomaculata) sur Larix ·· Puceron du cyprès (C. cupressi) sur Chamaecyparis, Cupressocyparis, Cupressus, Thuja ·· Puceron du genévrier (C. juniperi) sur Juniperus (J. communis) ·· Puceron de l’épicéa (C. pilicornis) sur Picea (P. abies) Fiche de description - Pucerons 301 Stanislaw Kinelski, Bugwood.org Stanislaw Kinelski, Bugwood.org William M. Ciesla, Forest Health Management International, Bugwood.org Fig. 41 : Galle ananas ouverte pour l’émergence des adultes d’Adelges abietis (mues) Stanislaw Kinelski, Bugwood.org Fig. 42 : Dégâts de Cinara sp. sur haie de Cupressus macrocarpa Whitney Cranshaw, Colorado State University, Bugwood.org Fig. 40 : Femelles ailées d’Adelges abietis (2 mm) Gyorgy Csoka, Hungary Forest Research Institute, Bugwood.org Fig. 44 : Galle-ananas à Adelges abietis Fig. 45 : Adulte de Cinara sp. (4 mm) David McComb, USDA Forest Service, Bugwood.org Pennsylvania Department of Conservation and Natural Resources - Forestry Archive, Bugwood.org Fig. 43 : Galle-ananas à Adelges laricis Stanislaw Kinelski, Bugwood.org Fig. 47 : Femelle et œufs d’Adelges laricis (1,5 mm) Fig. 48 : Galle-ananas à Adelges cooleyi en formation sur épicéa Whitney Cranshaw, Colorado State University, Bugwood.org Whitney Cranshaw, Colorado State University, Bugwood.org Fig. 46 : Sécrétions d’Adelges laricis Louis-Michel Nageleisen, Département de la Santé des Forêts, Bugwood.org Fig. 49 : Vue en coupe transversale d’une galle-anas à Adelges cooleyi (gouttes de miellat) Whitney Cranshaw, Colorado State University, Bugwood.org Fig. 50 : Dégâts d’Adelges laricis sur aiguille de mélèze Fiche de description - Pucerons Fig. 51 : Femelles (2 mm) et larves (1 mm) Dysaphis tulipae Fig. 52 : Adelges cooleyi dans leurs sécrétions 302 ·· Gros puceron du pin (C.pinea) sur Pinus ·· Gros puceron du sapin (C. pruinosa) sur Picea (P. abies) ·· Puceron du thuya (C. tujafilina) sur Cupressocyparis, Thuja →→ Chermès de l’épicéa (Adelges abietis) ·· 2 mm. Aptère vert-jaunâtre à vert clair, ailée jaune. Sans cornicules. Œufs jaune clair, groupées, recouvert partiellement de cire blanche. Larve orange-rosâtre clair. ·· Galles-ananas sur jeunes pousses de 1,5-2 cm de long, n’entourant pas totalement la pousse. Déformation des pousses ·· Plantes-hôtes : Picea →→ Chermès du douglas (Adelges cooleyi) ·· 1,5-2,5 mm. Brun-rougeâtre à noir-pourpré. Sans cornicules. Colonies dans amas de cire blanche d’aspect laineux. Sur pousses ·· Galle-ananas, déformation des pousses, aiguilles marquées de petites tâches jaunes, croissance inhibée ·· Plantes-hôtes : Dioécique ·· Hôte primaire : Pseudotsuga (P. menziesii) ·· Hôte secondaire : Picea (P. sitchensis) →→ Chermès des aiguilles de mélèze (Adelges laricis = A. coccineus) ·· 1-2 mm. Vert foncé sur Larix, grisâtre à noirâtre sur Picea. Sans cornicules. Rassemblé en boules blanches de cire blanche d’aspect laineux sur aiguilles. ·· Galles couvertes de cires, de couleur crème, 10-15 mm de long. Décoloration, déformation des aiguilles, aspect bleu du feuillage quand forte attaque, chute prématurée, dépérissement des pousses ·· Plantes-hôtes : Dioécique ·· Hôte primaire : Picea ·· Hôte secondaire : Larix →→ Puceron des viornes (Aphis viburni) ·· 2-3 mm. Noir-verdâtre foncé à noir-brunâtre. A la face inférieure des jeunes feuilles. ·· Enroulement des jeunes pousses ·· Plantes-hôtes : Viburnum →→ Puceron brun des serres (Aulacorthum circumflexum) ·· 1,5-2,5 mm. Blanchâtre à jaune-verdâtre, brillant. Marques noirâtre sur l’abdomen en motif de fer à cheval. Yeux noirs. Longues antennes jaune-verdâtre striées de noirs. Pattes claire. Cornicules et cauda allongées. Larves dépourvues de marques noires. Sur feuilles, fleurs, en particulier en situation abritée ·· Miellat produit en grande quantité. Dégâts directs nuisibles ·· Important vecteur de virus (virus de la mosaïque du dahlia, virus de la panachure de la tulipe) ·· Plantes-hôtes : Asparagus, Begonia, Calceolaria, Chrysanthemum, Cineraria, Cyclamen, Fougères, Freesia, Fuchsia, Lilium, Petunia, Primula, Rosa, Saxifraga, Tulipa, Viola, Zantedeschia →→ Puceron de la tulipe (Dysaphis tulipae) ·· 1-3 mm. Jaune-grisâtre à brun-rosâtre. Cornicules foncées, effilées. Cauda petite. Couvert de cire blanche poudreuse. Sur bulbes entreposés puis toute la plante après plantation. ·· Inhibition de la croissance, malformation ·· Vecteur de virus (virus du lis sans symptôme, virus de la panachure de la tulipe) ·· Plantes-hôtes : Crocus, Galanthus, Gladiolus, Iris, Lilium, Tulipa →→ Puceron du chèvrefeuille (Hyadaphis passerinii) ·· 1,5-2,5 mm. Aptère : vert-bleuâtre foncé. Recouvert d’une pruine cireuse blanche. Longs appendices. Cornicules noires et renflées. Cauda noire et allongée. Ailé vert tacheté de vert foncé, tâches sombres à la base des cornicules. A la face inférieure des feuilles. ·· Miellat produit en grande quantité. Croissance des pousses et développement des fleurs altérés. ·· Plantes-hôtes : Dioécique ·· Hôte primaire : Lonicera ·· Hôte secondaire : Apiacées →→ Puceron des azalées (Illinoia azaleae) ·· 2-3 mm. Fusiforme. Vert profond, brillant. Yeux noirs. Longs appendices à extrémité noirâtre. Longues cornicules claires à extrémité noirâtre, légèrement renflées. ·· Chute des feuilles, perte de vigueur ·· Plantes-hôtes : Azalea, Rhododendron Fiche de description - Pucerons 303 Plante & Cité, Guérin M. . E. Bradford Walker, Vermont Department of Forests, Parks and Recreation, Bugwood.org Fig. 53 : Colonies d’Aphis nerii sur fleurs de Nerium oleander Fig. 54 : Larves de Mindarus abietinus David Cappaert, Michigan State University, Bugwood.org Fig. 55 : Femelle ailée (2 mm) et larve (1 mm) d’Aphis nerii Jim Baker, North Carolina State University, Bugwood.org Plante & Cité, Guérin M. . Fig. 57 : Colonies de Phylloxera glabra (0,5 mm) au revers d’une feuille Steven Katovich, USDA Forest Service, Bugwood.org Fig. 58 : Dégâts de Mindarus abietinus sur jeunes pousses Fig. 56 : Femelle aptère (2 mm) et larve (1,5 mm) de Macrosiphoniella sanborni Jim Baker, North Carolina State University, Bugwood.org Fig. 59 : Femelles ailée, aptère et larve de Sarucallis kahawaluokalani Plante & Cité, Guérin M. . Rayanne Lehman, Pennsylvania Department of Agriculture, Bugwood.org Fig. 60 : Dégâts de Phylloxera glabra sur feuille de Quercus robur Fig. 61 : Femelle ailée de Mindarus abietinus Gyorgy Csoka, Hungary Forest Research Institute, Bugwood.org Jim Baker, North Carolina State University, Bugwood.org Fig. 62 : Colonie de Sarucallis kahawaluokalani au revers d’une feuille de lilas des Indes Fiche de description - Pucerons Fig. 63 : Femelle aptère (4,5 mm) et larve (3 mm) de Tuberolachnus salignus 304 →→ Puceron des pousses du sapin (Mindarus abietinus) ·· Gris clair. Yeux brun-rouge. Appendices courts. Recouvert de sécrétions cireuses conséquentes donnant un aspect laineux. En petites colonies. Sur jeunes pousses ·· Miellat produit en quantité. Déformation des aiguilles ·· Plantes-hôtes : Abies →→ Phylloxera du chêne pédonculé (Phylloxera glabra) ·· < 1 mm. Ovale. Jaune- orangé. Aspect de granulations réparties sur l’ensemble du revers des feuilles, notamment les plus jeunes. Œufs jaunes brillants pondus en petits cercles. Feuilles atteintes par groupes au bout d’un rameau distribués aléatoirement dans le houppier ·· Associé sur la face supérieure à des ponctuations jaunes évoluant en nécrose au cours de la saison. Brunissement du feuillage, chute prématurée. ·· Plantes-hôtes : Quercus (Q. robur) →→ Puceron du lagerstroemia (Sarucallis (=Tinocallis) kahawaluokalani) ·· Jaune-verdâtre. Yeux rouges. Ailée à corps, ailes et antennes marquées de noir. ·· Miellat produit en grande quantité. Jaunissement, dessèchement marginal du limbe, chute prématurée ·· Plantes-hôtes : Lagerstroemia →→ Grand puceron du saule (Tuberolachnus salignus) ·· 4-5 mm. Brun-noirâtre tâché de noir. 3 tubercules en saillie au bout de l’abdomen. Recouvert de fins poils gris. Longues pattes allant du rouge à l’insertion au noir à leur extrémité. En colonies denses ·· Grosse production de miellat attirant un grand nombre d’insectes (fourmis et autres hyménoptères …) ·· Plantes-hôtes : Salix →→ Puceron du laurier-rose (Aphis (= Cerosipha) nerii) ·· 2 mm. Jaune vif à orange. Yeux rouge-brun foncé. Appendices noirs. Ailes à nervation foncée. Longues cornicules noires. Courtes cauda noire. En colonies denses. Sur pousses, boutons floraux, feuilles. ·· Plantes-hôtes : Asclepias, Citrus, Nerium, Vinca →→ Puceron cendré du bouleau (Euceraphis betulae) ·· 3-4 mm. Allongé. Vert clair à vert jaunâtre. Longues antennes noires striées de vert. Longues pattes à extrémité noirâtre. Courtes cornicules noirâtres. Cauda globuleuse. Recouvert de sécrétions cireuses blanchâtres. Adultes toujours ailés. Isolé, très actif. Se laisse tomber quand dérangé. Jeunes feuilles, face inférieure des feuilles ·· Plantes-hôtes : Betula (B. pendula) →→ Eulachnus agilis ·· 2-3 mm. Fusiforme. Vert vif. Plages dorsales brun-rougeâtre portant une soie courte et pointue. Courtes antennes brun-verdâtre clair à longues soies. Pattes vert clair à longs poils noires. Cornicules petites ·· Chute prématurée et massive des aiguilles âgées ·· Plantes-hôtes : Pinus (P. sylvestris, P. nigra) →→ Puceron du chrysanthème (Macrosiphoniella sanborni) ·· 1-2,5 mm. Brun-rougeâtre à brun-noirâtre, luisant. Antennes et pattes noirs. Courtes cornicules noires trapues. Cauda noire, allongée. A la face inférieure des feuilles, bourgeons, tiges florales. ·· Fleurs et bourgeons déformés ·· Vecteur de virus (virus de la marbrure des nervures de chrysanthème, virus B du chrysanthème) ·· Plantes-hôtes : Chrysanthemum →→ Petit puceron vert du rosier (Myzaphis rosarum) ·· 1,5-2 mm. Oblong, aplati. Vert-jaunâtre à vert. Longues cornicules renflées à l’extrémité foncée. Longue cauda. Sur la nervure centrale des feuilles, difficilement observable tant que les folioles ne sont pas déployés. ·· Plantes-hôtes : Rosa (espèces grimpantes ...) →→ Puceron jaune du noisetier (Myzocallis coryli) ·· 1-2 mm. Blanchâtre à vert-jaunâtre, brillant. Grands yeux rouges. Ailes à tâches marginales enfumées. Cornicules trapues. Cauda globuleuse. Larve à corps couvert de soies. Colonies denses. A la face inférieure des feuilles. Œufs d’hiver noir mât sur tronc ·· Plantes-hôtes : Carpinus, Corylus →→ Puceron orné (Myzus ornatus) ·· 1-2 mm. Jaune-brunâtre clair ou vert mât. Marques transversales foncées disposées par paire sur le thorax et l’abdomen. Cornicules claires et cylindriques. Larve vert clair à yeux rouge foncé. En petites colonies sur feuilles. ·· Miellat produit en grande quantité. Fiche de description - Pucerons 305 Gyorgy Csoka, Hungary Forest Research Institute, Bugwood.org Haruta Ovidiu, University of Oradea, Bugwood.org Fig. 64 : Galles à Tetraneura ulmi sur feuille d’orme Fig. 65 : Orme infesté par Tetraneura ulmi Clemson University - USDA Cooperative Extension Slide Series, Bugwood.org Whitney Cranshaw, Colorado State University, Bugwood.org Clemson University - USDA Cooperative Extension Slide Series, Bugwood.org Fig. 67 : Femelle ailée d’Aphis gossypii (1,5 mm) Fig. 66 : Colonie d’Aphis gossypii Bayer Pflanzenschutz Archive, Bayer Pflanzenschutz, Bugwood.org Fig. 69 : Galles à Pemphigus bursarius sur pétiole de Populus nigra Fig. 68 : Femelle de Toxoptera citricida (2 mm) Gyorgy Csoka, Hungary Forest Research Institute, Bugwood.org Whitney Cranshaw, Colorado State University, Bugwood.org Jeffrey W. Lotz, Florida Department of Agriculture and Consumer Services, Bugwood.org Fig. 70 : Colonie de Toxoptera citricida sur Citrus Fig. 71 : Galles à Pemphigus bursarius ouverte Eugene E. Nelson, Bugwood.org Scott Bauer, USDA Agricultural Research Service, Bugwood.org Fig. 72 : Dégâts de Myzus persicae sur Prunus Fiche de description - Pucerons Fig. 73 : Femelles ailées, aptères (2 mm) et larves (1 mm) de Myzus persicae Fig. 74 : Femelle ailée de Myzus persicae 306 ·· Plantes-hôtes : Azalea, Begonia, Impatiens, Veronica, Viola →→ Puceron du pétiole du peuplier (Pemphigus bursarius) ·· 1,5-3 mm. Elliptique. Aptères blanc-jaunâtre, ailés brun-orangé. Touffe de cire blanche sur la partie postérieure. Plaques cireuses foncées sur l’abdomen. Cornicules réduites en anneaux. ·· Galle en forme de bourse sur pétiole à ouverture en forme de goulot. Déformation et décoloration du feuillage ·· Plantes-hôtes : Populus (P. nigra) →→ Puceron des écorces de saule (Pterocomma salicis) ·· 3-4 mm. Noir-grisâtre mât. Marques blanchâtres. Poilu. Appendices rouge-orangé à extrémité noire. Cornicules en forme de flacon. Colonies denses. Sur pousses et jeunes tiges. ·· Plantes-hôtes : Salix →→ Puceron des feuilles d’orme (Tetraneura ulmi) ·· Blanc-jaunâtre à jaune clair. Recouvert de sécrétions cireuses blanches floconneuses. ·· Galle réniforme de 1,5 cm vert, crème puis brune, ouverture à la base, feuillage boursouflé tout autour de la galle ·· Plantes-hôtes : Dioécique ·· Hôte primaire : Ulmus ·· Hôte secondaire : Graminées →Puceron → de la bourdaine = Puceron du melon et du cotonnier (Aphis frangulae gossypii) ·· Organisme de lutte obligatoire dans les DOM ·· 1-2 mm. Vert foncé à noir. Parfois tâché de vert jaunâtre. Antennes jaune pâle. Courtes cornicules très foncées. Cauda pâle. ·· Miellat abondant. Nombreuses nuisances. Feuilles jaunies, fanées ·· Vecteur de virus (Mosaïque du concombre, Tristeza des agrumes …) ·· Plantes-hôtes : Très polyphage : Begonia, Camellia, Catalpa, Chrysanthemum, Cineraria, Citrus, Euonymus, Hibiscus, Hypericum Lagerstroemia, Malus, Malva, Musa, Prunus, Rhamnus, Salix, Zantedeschia →Puceron → vert du pêcher (Myzus persicae) ·· Organisme de lutte obligatoire dans les DOM ·· 1-2,5 mm. Aptère jaune à vert-rougeâtre. Ailé à abdomen vert tâché de noir et thorax noir. Antennes presque aussi longues que le corps. Cornicules et cauda. ·· Important vecteurs de virus (Mosaïque du Dahlia, virus B du chrysanthème, virus latent de l’œillet, …) ·· Plantes-hôtes : Dioécique. Très polyphage ·· Hôte primaire : Brugmansia, Buddleja, Fuchsia, Photinia, Prunus, Rubus ·· Hôte secondaire : Herbacées annuelles : Antirrhinum, Begonia, Cactées, Calceolaria, Chrysanthemum, Dahlia, Dianthus, Hyancithus, Ipomoea, Phlox, Primula, Tropaeolum, Tulipa, Viola, Zantedeschia →Puceron → tropical des Citrus (Toxoptera citricida) ·· Organisme de quarantaine non introduit en Europe, organisme de lutte obligatoire dans les DOM a VEILLE en particulier sur Citrus dans la région méditerranéenne ·· 2 mm. Marron-rougeâtre à noir, luisant. Appendices plus clairs à l’insertion. Sur jeunes pousses ·· Vecteur de virus (dont Citrus tristeza closterovirus, organisme de quarantaine) ·· Plantes-hôtes : Camellia, Citrus Eléments de Biologie Cycle biologique Cf. schéma ci-contre ·· Cycle complexe, variable selon les espèces : ·· 1 (puceron monoécique?) ou 2 plantes-hôtes (puceron dioécique?) ·· générations toutes ovipares ou succession de générations ovipares/vivipares (dans la plupart des cas) ·· hivernation sous forme d’œufs (si reproduction sexuée) ou de femelles adultes fécondées ·· < 10 œufs d’hiver/femelle, puis nombreuses générations courtes qui s’emboîtent : plusieurs dizaines d’individus/femelle aprolifération importante ·· Jusqu’à 4 mues par génération ·· Vie libre ou au sein de galles ·· Formes aptères regroupées en colonies denses ·· Migration sur parfois plusieurs centaines de km grâce au transport par le vent Fiche de description - Pucerons 307 ·· Premier pic de pullulation au printemps, chute des niveaux de population fin juin-début juillet (nombreux auxiliaires spontanées …), second pic de pullulation de moindre ampleur en septembre-octobre. ·· Favorisés par les hivers doux et les étés secs. Régime alimentaire ·· Dégâts dus à la prise de nourriture : injection de salive plus ou moins toxique, ponction de sève élaborée dans les vaisseaux du phloème, parfois ponction de parenchyme. En particulier sur organes jeunes ·· Sécrétion de miellat induisant une association mutualiste avec les fourmis ·· Monophage (90 % des cas) ou polyphage. Inoculation de virus ·· Acquisition potentielle puis réinoculation de virus (essentiellement persistants mais également semi ou non-persistant)/ phytoplasmes?/champignons parasites lors de la prise de nourriture sur monocotylédones, dicotylédones herbacées et ligneuses. ·· Groupe le plus important de vecteur aérien : ·· 300 espèces impliquées dont Myzus persicae, Aphis fabae, Aphis gossypii, Macrosiphum euphorbiae ·· 250 virus transmis dont les Carlavirus (virus latent de l’œillet (CLV), virus B/de la mosaïque du chrysanthème (CBV)), les Caulimovirus (virus de la mosaïque du dahlia (DMV)), les Closterovirus (virus de la tristeza des agrumes (CTV), virus de la bigarrure de l’œillet (CNFV)), les Cucumovirus (virus de la mosaïque du concombre (CMV), virus de l’aspermie de la tomate (TAC/CAV)), les Potyvirus (virus Y de la pomme de terre (PVY), virus de la panachure de la tulipe (TBV)) Auxiliaires associés Auxiliaires (liste non exhaustive) permettant une bonne régulation des populations dès la fin du printemps. Classe/Sous-classes Taxons Type Coléoptères : ·· Coccinelles : Adalia (A. bipunctata, A. decimpunctata , Anatis (A. ocellata), Coccinella (C. septempunctata), Harmonia (H. axyridis), Prédateurs Hippodamia, Scymnus ·· Carabes : Cicindela, Harpalus ·· Taupins Névroptères : ·· Chrysopes ·· Hémérobes ·· Conioptérygiens Insectes Prédateurs Hétéroptères (Punaises) : ·· Anthocoridés : Anthocoris (A. nemoralis, A. nemorum), Orius (O. albidipennis, O. insidiosus, O. majusculus, O. vicinus) … Prédateurs ·· Miridés : Blepharidopterus, Deraecoris (D. ruber), Phylus ·· Nabidés : Nabis Hyménoptères : ·· Aphididés : Aphidius (A. colemani, A. ervi), Praon, Lysiphlebus (L. testaceipes) Parasitoïdes ·· Aphelinidés : Aphelinus (A. mali) ·· Braconidés : Diaeretiella (D. rapae) ·· Fourmis : Formica (F. fusca, F. lugubris, F. rufa) ·· Cécidomyies : Aphidoletes (A. aphidimiza) Prédateurs Dermaptères ·· Forficules Prédateurs Diptères : ·· Cécidomyies : Aphidoletes (A. aphidimyza) … Prédateurs ·· Syrphes : Episyrphus (E. balteatus), Metasyrphus (M. corollae), Syrphus (S. ribesii), Sphaerophoria Acariens Trombidiidés Fiche de description - Pucerons Prédateurs 309 Plante & Cité, Guérin M. Fig. 76 : Coccinelles adultes au sein d’une colonie de pucerons sur arbousier Plante & Cité, Guérin M. Fig. 77 : Larve de coccinelle au sein d’une colonies de pucerons sur dahlia Plante & Cité, Guérin M. Fig. 79 : Larve de coccinelle Plante & Cité, Guérin M. Fig. 78 : Larves de syrphes au sein d’une colonies de pucerons sur érable Plante & Cité, Guérin M. Fig. 81 : Œufs de coccinelle Amandine Gourlay, Fredon Pays de la Loire Fig. 80 : Larve d’Aphidoletes aphidimyza (cécidomyie prédatrice) David Riley, University of Georgia, Bugwood.org Plante & Cité, Guérin M. Fig. 82 : Anthocoris tomentosus attaquant Myzus persicae Fiche de description - Pucerons Fig. 83 : Momies de pucerons parasités par des hyménoptères parasitoïdes 310 Classe/Sous-classes Taxons Type Araignées Phalangium Prédateurs Oiseaux Mésanges Prédateurs Champignons ·· Entomophtorales : Beauveria bassiana, Conidiobolus … ·· Baciliales : Bacillus thuringiensis ·· Verticillium lecanii Parasites Textes réglementaires associés ·· Puceron de la bourdaine (Aphis frangulae gossypii) : au niveau français, organisme de lutte obligatoire dans les DOM de part l’«Arrêté du 31 juillet 2000 établissant la liste des organismes nuisibles aux végétaux, produits végétaux et autres objets soumis à des mesures de lutte obligatoire» (J.O. 31/08/00). ·· Puceron vert du pêcher (Myzus persicae) : au niveau français, organisme de lutte obligatoire dans les DOM de part l’«Arrêté du 31 juillet 2000 établissant la liste des organismes nuisibles aux végétaux, produits végétaux et autres objets soumis à des mesures de lutte obligatoire» (J.O. 31/08/00). ·· Puceron tropical des Citrus (Toxoptera citricidus) : ·· Au niveau européen : organisme de quarantaine listé sur l’annexe A2 (organisme présent sur le territoire) de l’ «EPPO lists of pest recommended for regulation as quarantine pests». ·· Au niveau français : organisme de lutte obligatoire dans les DOM de part l’«Arrêté du 31 juillet 2000 établissant la liste des organismes nuisibles aux végétaux, produits végétaux et autres objets soumis à des mesures de lutte obligatoire» (J.O. 31/08/00). Eléménts de Bibliographie ·· Minks A.K., Harrewijn P. (1987). World crop pests - Aphids, Their biology, natural enemies and control - Volume 2A. Amsterdam: Elsevier Science. 450 p. ·· Minks A.K., Harrewijn P. (1988). World crop pests - Aphids, Their biology, natural enemies and control - Volume 2B. Amsterdam: Elsevier Science. 364 p. ·· Minks A.K., Harrewijn P. (1989). World crop pests - Aphids, Their biology, natural enemies and control - Volume 2C. Amsterdam: Elsevier Science. 312p. ·· Van Emden H. M., Harrington R. 2007. Aphids as crop pests. CABI press. 752 p. ·· Entomofaune du Québec. (2010). Les pucerons du Québec. http://entomofaune.qc.ca/entomofaune/Pucerons/ Index_Pucerons.html Glossaire ·· Cauda : processus charnu à l’extrémité de l’abdomen de la femelle adulte servant à l’épandage du miellat. ·· Cornicule : protubérance portée par paire sur l’abdomen de chaque côté de la cauda. Elles sécrètent des substances cireuses agissant comme phéromone d’alarme ou servant de matériaux de couverture ·· Dioécique : espèce effectuant son cycle sur 2 plantes-hôtes appartenant à des familles différentes. L’hôte primaire est celui sur lequel seront déposés les œufs d’hiver, le secondaire celui sur lequel les pucerons migrent en début d’été. A opposer à monoécique. ·· Femelles fondatrices : femelles issues des œufs d’hiver. ·· Femelles fondatrigènes : femelles produites par les femelles fondatrices. ·· Holocycle : cycle de développement complet, comprenant des générations femelles parthénogénétiques et une génération d’individus sexués qui donneront naissance aux œufs d’hiver. A opposer à anholocycle. ·· Hôte primaire : plante-hôte sur laquelle a lieu la reproduction sexuée. A opposer à hôte secondaire. ·· Monoécique : espèce effectuant la totalité de son cycle sur une seule plante-hôte (même espèce ou même famille). Des migrations peuvent cependant avoir lieu, elles s’effectueront sur des plantes du même taxon. A opposer à dioécique. Fiche de description - Pucerons 311 Fiche de description - Pucerons 312 Fig. 87 : Colonies de Macrosiphum rosae Anne W. Gideon, Bugwood.org Fig. 84 : Colonies de pucerons des feuilles Plante & Cité, Guérin M. Fig. 88 : Phyllaphis fagi Louis-Michel Nageleisen, Département de la Santé des Forêts, Bugwood.org Chris Schnepf, University of Idaho, Bugwood.org Fig. 86 : Femelle ailée d’Adelges cooleyi (2 mm) Fig. 89 : Galles-ananas à Adelges cooleyi sur épicéa Fig. 85 : Colonies d’ Eriosoma lanigerum Jim Baker, North Carolina State University, Bugwood.org Whitney Cranshaw, Colorado State University, Bugwood.org Fiche de description - Pucerons 313 Recouvert de filaments blancs donnant un aspect Jaune pâle à gris-brun laineux Recouvert de filaments blancs donnant un aspect Absence de cornicules laineux Ailes repliées en ciseau au repos Bisanuelle (pour la plupart), parfois annuelle Dioecique (pour la plupart) : ·· Hôte I : Picea ·· Hôte II : pour Pineus : Pinus pour Adelges : autres conifères ·· Hôte I : vie au sein de galles ·· Hôte II : vie libre sur aiguilles Galles sur feuilles ou écorce Annuelle Dioécique (pour la pupart) Vie au sein de galle pour les aptères, libre pour les ailés Couleurs variables Pas/peu de sécrétions Enroulement, crispation du feuillage Annuelle Mono ou dioecique : ·· Hôte I : herbacée (pour la plupart) ·· Hôte II : ligneux Vie libre sur pousses et feuilles Caractéristiques morphologiques Symptômes caractéristiques Cycle de développement Mode de vie Galle-ananas passant du vert au brun au cours de la saison, formée d’une série de loges visibles en coupe transversale, à la base des aiguilles Conifères Feuillus Feuillus, conifères, plantes molles Adelgidés ·· Adelges ·· Pineus Chermès Plantes-hôtes Phylloxéridés Pemphigidés ·· Phylloxera ·· Pemphigus ·· Eriosoma Pucerons Galligènes Famille/Genre Lachnidés ·· Cinara Pucerons des Pousses et des Feuilles Aphididés ·· Aphis ·· Myzus ·· Macrosiphum Type Morphologique Les espèces citées sont celles les plus fréquemment rencontrées en ZNA, celles-ci ne constituent pas une liste exhaustive. Tableau Recapitulatif des Différénts Types Morphologiques Fiche de description Thrips Les thrips forment un groupe d’insectes peu connu et peu étudié. Ils sont caractérisés par une forte polymorphie intra-spécifique aussi bien au niveau de leur morphologie que de leur développement ou de leur comportement. Bien que présents en ZNA, les dégâts directs par piqûres ne sont en général pas réellement dommageables aux plantes, les nuisances étant d’avantage esthétiques. En revanche, les dégâts indirects par transmission de virus peuvent avoir des conséquences bien plus graves. On trouve également dans ce taxon des auxiliaires de culture prédateurs d’acariens et d’insectes. Fiche de description - Thrips 315 Whitney Cranshaw, Colorado State University, Bugwood.org Fig. 1 : Dégâts de Dendrothrips ornatus sur feuille de troène Howard F. Schwartz, Colorado State University, Bugwood.org Fig. 3 : Dégâts de Thrips tabaci sur feuilles d’oignon Plante & Cité, Guérin M. Fig. 2 : Dégâts sur feuilles d’hibiscus Whitney Cranshaw, Colorado State University, Bugwood.org Fig. 4 : Dégâts de Thrips simplex sur fleur de glaïeul Fiche de description - Thrips 316 Eléments de Classification Les thrips représentent l’ensemble des Insectes Néoptères Hémiptéroïdes de l’ordre des Thysanoptères. A ce jour, environ 5600 espèces de thrips ont pu être identifiées. 90 % d’entre-elles sont phytophages. Les espèces présentes en ZNA appartiennent essentiellement à la famille des Thripidés (sous-ordre Térébrants). Plantes-Hôtes Polyphage ou monophage, sur tous types de végétaux. Pour une même espèce de thrips, plantes-hôtes variables selon la localisation géographique. En ZNA, dégâts les plus importants engendrés sur Plantes à jardinière et à massif, en particulier sur Astéracées. Arbres Sensibles Moyennement sensibles Peu sensibles Larix (mélèze) Olea (olivier), Prunus (cerisier d’ornement, laurier-cerise, prunier d’ornement), Pyrus (poirier d’ornement) Acer (érable), Alnus (aulne), Eucalyptus (eucalyptus), Magnolia (magnolia), Malus (pommier d’ornement), Ostrya (ostryer), Picea (épicéa), Pinus (pin), Tilia (tilleul) Arbustes Très sensibles Sensibles Ligustrum (troène) Brugmansia (brugmansia), Lantana (lantana), Rosa (rosier), Syringa (lilas), Viburnum (viorne) Moyennement Hibiscus (hibiscus), Hydrangea (hortensia) sensibles Peu sensibles Arbutus (arbousier), Camellia (camélia), Cornus (cornouiller), Laurus (laurier-sauce), Phyllirea (filaria), Rhododendron (rhododendron) Palmiers et autres plantes de climats doux et d’orangerie1 Très sensibles Sensibles Moyennement sensibles Citrus (citronnier, mandarinnier, oranger) Dracanea (dragonnier), Ficus (figuier), Palmiers, Phoenix (palmier-dattier) Cycas (cycas), Musa (bananier) Plantes à jardinière et à massif Arbrisseaux et sous-arbrisseaux Moyennement sensibles Peu sensibles Azalea (azalée), Calluna (callune), Erica (bruyère) Fuchsia (fuchsia) Bulbes et assimilés Sensibles Moyennement sensibles Peu sensibles 1 Crocus (crocus), Cyclamen (cyclamen), Dahlia (dahlia), Freesia (freesia), Gladiolus (glaïeul), Iris (iris), Lilium (lis) Allium (ail d’ornement), Alstroemeria (alstromère), Amaryllis (amaryllis), Crinum (crinum), Zantedeschia (calla) Arum (arum), Narcissus (narcisse) Ces plantes correspondent aux espèces installées dans les parcs et jardins l’été et hivernées sous abris Fiche de description - Thrips 317 Plante & Cité, Guérin M. Fig. 6 : Symptôme sur fleur d’impatience Whitney Cranshaw, Colorado State University, Bugwood.org Fig. 5 : Dégâts de Frankliniella occidentalis sur fleur de pâquerette Amandine Gourlay, Fredon Pays de la Loire Fig. 7 : Symptôme sur feuille Whitney Cranshaw, Colorado State University, Bugwood.org Fig. 8 : Dégâts de Frankliniella occidentalis sur feuille de haricot (individu) Fiche de description - Thrips 318 Antenne TETE Œil composé THORAX Patte ABDOMEN Aile Soie Source : Plante & Cité Fig. 11 : Thrips adulte ailé (1-2 mm) Amandine Gourlay, Fredon Pays de la Loire Fig. 9 : Larve de thrips (1 mm) Amandine Gourlay, Fredon Pays de la Loire Fig. 10 : Thrips adulte ailé (1-2 mm) Pennsylvania Department of Conservation and Natural Resources - Forestry Archive, Bugwood.org Pennsylvania Department of Conservation and Natural Resources - Forestry Archive, Bugwood.org Fig. 13 : Adulte ailé de Taenothrips inconsequens (1,5 cm) Fig. 14 : Larve de Taeniothrips inconsequens (1mm) Larve âgée Amandine Gourlay, Fredon Pays de la Loire Adulte Fig. 12 : Thrips adulte ailé (1-2 mm) Excréments Jeune larve David Cappaert, Michigan State University, Bugwood.org Martin Heffer, The Horticulture and Food Research Institute of New Zealand, Bugwood.org Fig. 15 : Symptôme d’Heliothrips haemorrhoidalis sur feuille (adulte) Fiche de description - Thrips Fig. 16 : Heliothrips haemorrhoidalis tous stades 320 Description Adulte ·· Description : 1-2 mm, grêle, élancé. Corps cylindrique jaune pâle, rouge, brun à noir. Aptère ou ailé de 2 paires d’ailes étroites frangées de soies, presque aussi longues que le corps, à nervation très peu développée. Antennes courtes. Appareil buccal piqueur-suceur portant des stylets. ·· Organe(s) attaqué(s) : feuilles (face inférieure), fleurs (fleurs doubles, riche en pollen), bourgeons ·· Période d’observation : du printemps à l’automne ·· Dégâts : Lors de la prise de nourriture Remarque. ·· La température a une forte influence sur la morphologie des thrips, en particulier sur la couleur du corps : ils ont tendance à s’éclaircir au cours de la saison. ·· Thrips ailés se laissant transporter par le vent pour se déplacer car difficultés à voler. La pluie les limite. Œuf Non observables l’œil nu. N’engendre pas de dégâts. Sur feuilles et bourgeons, en général à l’intérieur des tissus ce qui peut entrainer la sécrétion de gomme. Larve 2 stades larvaires ·· Description : semblable aux adultes, 1 mm, blanc translucide à jaune-verdâtre, aptère, très mobile ·· Organe(s) attaqué(s) : feuilles, bourgeons ·· Période d’observation : du printemps à l’automne ·· Dégâts : Lors de la prise de nourriture Nymphe 2 stades nymphaux : prénymphe puis nymphe. Semblables aux adultes, aptères. N’entraînent pas de dégâts. En général dans ou à la surface du sol. Détermination Critères à prendre en compte : ·· apparence du corps, ·· comportement, ·· plantes-hôtes. Principales espèces présentes en ZNA →Thrips → des serres (Heliothrips haemorrhoidalis(= H. adonidum)) ·· 1,2-1,8 mm. Brun-foncé, extrémité de l’abdomen orange, appendices jaune clair. Larve brun-jaune, produit des gouttes rougeâtres sur lesquelles se développe un champignon brun. Sur feuilles, fleurs ·· Plutôt en région Méditerranéenne ·· Plantes-hôtes : ·· Arbres et arbustes : Acer, Arbutus, Azalea, Cornus, Ficus, Fuschia, Hibiscus, Hydrangea, Ligustrum, Magnolia, Palmiers, Phyllirea, Prunus laurocerasus, Rhododendron, Rosa, Viburnum ·· Plantes molles : Begonia, Chrysanthemum, Cineraria, Coleus, Crinum, Dahlia, Dianthus, Fougères, Iris, Phlox →→ Thrips des arbustes d’ornement (Dendrothrips ornatus) ·· 0,9-1,1 mm. Brun, ailes à 3 bandes transversales blanches. Sur feuilles (face supérieure) ·· Essentiellement présent dans le Sud de la France ·· Plantes-Hôtes : Arbres et arbustes : Alnus, Ligustrum vulgare, Syringa vulgaris, Tilia, Viburnum →→ Thrips du poirier (Taeniothrips inconsequens) ··1-1,5 mm. Corps noir, ailes brun foncé. Sur fleurs et feuilles ··Plantes hôtes : Arbres et arbustes : Acer, Fruitiers d’ornement (Malus, Prunus, Pyrus) … Fiche de description - Thrips 321 Merle Shepard, Gerald R.Carner, and P.A.C Ooi, Insects and their Natural Enemies Associated with Vegetables and Soybean in Southeast Asia, Bugwood.org Jack T. Reed, Mississippi State University, Bugwood.org Fig. 17 : Adulte ailé (2 mm) et larve (1,5 mm) de Frankliniella occidentalis Fig. 18 : Adulte ailé de Thrips palmi (1,3 mm) Carroll E. Younce, USDA Agricultural Research Service, Bugwood.org Alton N. Sparks, Jr., University of Georgia, Bugwood.org Fig. 19: Adulte (1,3 mm) et larve (1 mm) de Thrips tabaci Fig. 20 : Symptôme de Frankliniella occidentalis sur feuille de nectarine et individus OVIPOSITION Mort DE G OEUF AT S 2-4 jours 15-40 jours REPRODUCTION ADULTE 3-10 jours LARVE I Printemps à automne : 2-4 générations/an 1-3 jours NYMPHE LARVE II 1-3 jours Joseph Morse, University of California Riverside, Bugwood.org Fig. 21 : Adulte ailé de Scirtothrips citri Fiche de description - Thrips PRÉNYMPHE DE TS GA 3-10 jours Source : Plante & Cité Fig. 22 : Cycle biologique du thrips 322 →→ Thrips du rosier (Thrips fuscipennis (= T. menyanthidis) ·· 1,2-1,6 mm. Brun jaunâtre à foncé. Pattes brunes. Ailes antérieures brun-gris, plus claires à la base. Larve blanche à jaune clair. Sur fleurs et jeunes feuilles ·· Plantes-hôtes : Polyphage ·· Arbres et arbustes : Ostrya, Rosa ·· Plantes molles →→ Thrips du glaïeul (Thrips simplex) ·· 1,5 mm. Brun foncé. Appendices bruns éclaircis à la base. Larve jaune à orange. Hiverne dans les bulbes entreposés. Sur fleurs et feuilles ·· Plantes-hôtes : Plantes molles : Calendula, Crocus, Dahlia, Dianthus caryophyllus, Freesia, Gladiolus, Iris, Lilium, Narcissus →Thrips → californien (Frankliniella occidentalis) ·· Organisme de quarantaine présent en Europe, organisme de lutte obligatoire dans les DOM ·· 2 mm. Jaune clair à jaune brunâtre. Poils au bout de l’abdomen. Ailes jaunâtres. Larve translucide puis jaune dorée. Sur fleurs, également sur feuilles ·· En particulier dans les régions méridionales ·· Important vecteur de virus (Maladie bronzée de la tomate (TSWV), Tâches nécrotiques de l’impatiens (INSV) …) ·· Plantes-hôtes : Très polyphage (>300 espèces) ·· Arbres et arbustes : Brugmansia, Malus, Palmiers, Prunus, Rosa ·· Plantes molles : Chrysanthemum, Cineraria, Cyclamen, Dahlia, Dianthus, Gladiolus, Gerbera, Impatiens, Pelargonium, Petunia, Verbena →Thrips → des agrumes (Scirtothrips citri) ·· Organisme de quarantaine non introduit en Europe, organisme de lutte obligatoire dans les DOM a VEILLE en particulier sur agrumes dans la région méditerranéenne ·· Plutôt sur plantes poussant en conditions chaudes et sèches ·· Plantes-hôtes : Arbres et arbustes : Citrus, Phoenix, Rosa →Thrips → des palmiers (Thrips palmi) ·· Organisme de quarantaine non introduit en Europe, organisme de lutte obligatoire dans les DOM a VEILLE sur plantes cultivées ou hivernées sous serre, en particulier sur chrysanthème. Sur pousses, jeunes feuilles ·· 1,3 mm. Corps et pattes jaune clair à blanchâtre. Soies noirâtres ·· Vecteur de topsovirus (Ground bud necrosis virus (GBNV) ·· Plantes-hôtes : ·· Arbres et arbustes : Citrus, Ficus, Hibiscus, Palmiers, Prunus ·· Plantes herbacées : Chrysanthemum, Cyclamen, Dahlia, Dianthus, Helianthus, Musa, Nicotiana →Thrips → du tabac et de l’oignon (Thrips tabaci) ·· Organisme de lutte obligatoire dans les DOM ·· 1-1,3 mm. Jaune-grisâtre à brun. Ailes jaune-brunâtre clair. Larve blanchâtre à orange-jaunâtre clair. Sur feuilles, fleurs ·· Vecteur de virus (Maladie bronzée de la tomate (TSWV)) ·· Plantes-hôtes : Très polyphage (> 150 espèces) : Asparagus plumosus, Begonia, Chrysanthemum, Cineraria, Cyclamen, Dahlia, Dianthus caryophyllus, Gerbera, Zantedeschia Eléments de Biologie Cycle biologique ·· 10-40 jours selon la température, parfois sur plusieurs hôtes d’espèces différentes, 2-7 générations/an ·· Reproduction bisexuée ou parthénogénétique ? (prolifération importante et rapide) : 150 à 300 œufs/femelles ·· Hivernation au stade nymphe, dans le sol (dans les 10 premiers cm en général) ou dans la litière ·· Favorisés par les temps chauds et secs. Régime alimentaire Dégâts sur végétaux consécutifs aux piqûres de nutrition : stades nuisibles : larves I et II (les plus actives), adultes (les Fiche de description - Thrips 323 Plante & Cité, Guérin M. Fig. 23 : Adulte de punaise prédatrice Jack T. Reed, Mississippi State University, Bugwood.org Fig. 24 : Adulte ailé de Frankliniella occidentalis Fiche de description - Thrips 324 autres stades ne s’alimentent pas). Alimentation par perforation des cellules qui se vident. Essentiellement sur tissus tendres : feuilles, fleurs, bourgeons. Inoculation de virus ·· Acquisition potentielle puis réinoculation selon 2 modes : ·· Acquisition de virus persistants par les larves lors du prélèvement du contenu cellulaire puis réinoculation par les larves/adultes lors de la prise de nourriture, ·· Acquisition par contact avec la surface des grains de pollen puis réinoculation par les adultes lors de la prise de nourriture. ·· Espèces vectrices : Frankliniella occidentalis (espèce vectrice la plus importante), Thrips tabaci … ·· Vecteur de topsovirus (Virus de la maladie bronzée de la tomate (TSWV), Virus des tâches nécrotiques de l’impatience (INSV), Virus de la bigarrure du tabac (TSV), virus de la panachure florale du pélargonium (PFBV)) Auxiliaires associés Classe/Sous-classes Taxons Hétéroptères (Punaises) : ·· Anthocoridés : Anthocoris, Orius (O. insidiosus, O. laevigatus, O. majusculus) ·· Miridés : Dicyphus, Macrolophus ·· Nabidés : Nabis Diptères : ·· Cécidomyies ·· Syrphes : Sphaerophoria Hyménoptères ·· Eulophidés ·· Trichogrammes ·· Sphecidés Insectes Thysanoptères (Thrips) : ·· Aeolothripidés : Franklinothrips (F. vespiformis) ·· Phlaeothripidés Orthoptères : ·· Grillons Névroptères : ·· Chrysopes ·· Hémérobes Coléoptères : ·· Coccinelles : Coccinella, Hippodamia , Scymnus ·· Staphyllins : Paederus ·· Laelapidés : Stratiolaelaps (S. miles) Acariens ·· Phytoséïdes : Amblyseius (A. degenerans, A. swirskii), Neoseiulus (N. cucumeris) Nématodes Steinernema (S. feltiae) ·· Entomophtorales ·· Hypocréales : Beauveria bassiana Champignons ·· Eurotiales : Paecilomyces ·· Moniliales : Cladosporium ·· Verticillium lecanii Type Prédateurs Prédateurs Parasitoïdes Prédateurs Prédateurs Prédateurs Prédateurs Prédateurs Prédateurs Parasites Parasites Textes réglementaires associés ·· Thrips californien (Frankliniella occidentalis) : ·· Au niveau européen : organisme de quarantaine listé sur l’annexe A2 (organisme présent sur le territoire) de l’ «EPPO lists of pest recommended for regulation as quarantine pests». ·· Au niveau français : organisme de lutte obligatoire dans les DOM de part l’«Arrêté du 31 juillet 2000 Fiche de description - Thrips 325 Whitney Cranshaw, Colorado State University, Bugwood.org Fig. 25 : Nymphes de Thrips tabaci sur feuille d’oignon Fiche de description - Thrips 326 établissant la liste des organismes nuisibles aux végétaux, produits végétaux et autres objets soumis à des mesures de lutte obligatoire» (J.O. 31/08/00). ·· Thrips des agrumes (Scirtothrips citri) : ·· Au niveau européen : organisme de quarantaine listé sur l’annexe A1 (organisme absent du territoire) de l’ «EPPO lists of pest recommended for regulation as quarantine pests». ·· Au niveau français : organisme de lutte obligatoire dans les DOM de part l’«Arrêté du 31 juillet 2000 établissant la liste des organismes nuisibles aux végétaux, produits végétaux et autres objets soumis à des mesures de lutte obligatoire» (J.O. 31/08/00). ·· Thrips des palmiers (Thrips palmi) : ·· Au niveau européen : organisme de quarantaine listé sur l’annexe A1 (organisme absent du territoire) de l’ «EPPO lists of pest recommended for regulation as quarantine pests». ·· Au niveau français : organisme de lutte obligatoire dans les DOM de part l’«Arrêté du 31 juillet 2000 établissant la liste des organismes nuisibles aux végétaux, produits végétaux et autres objets soumis à des mesures de lutte obligatoire» (J.O. 31/08/00). ·· Thrips du tabac et de l’oignon (Thrips tabaci) : au niveau français, organisme de lutte obligatoire dans les DOM de part l’«Arrêté du 31 juillet 2000 établissant la liste des organismes nuisibles aux végétaux, produits végétaux et autres objets soumis à des mesures de lutte obligatoire» (J.O. 31/08/00). Eléments de Bibliographie ·· Lewis T. (1997). Thrips as crop pests - 1st edition. Cab International. 736 p. ·· Mound L.A., Kibby G. (1998). Thysanoptera: an identification guide - 2nd edition. CAB International. 70 p. ·· Mark S. Hoddle, Laurence A. Mound, Dena Paris. (2008). Thrips of California. University of California. http://keys. lucidcentral.org/keys/v3/thrips_of_california/Thrips_of_California.html Fiche de description - Thrips 327
![III - 1 - Structure de [2-NH2-5-Cl-C5H3NH]H2PO4](http://s1.studylibfr.com/store/data/001350928_1-6336ead36171de9b56ffcacd7d3acd1d-300x300.png)
