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Fiches des méthodes d’observaon et de suivi - CLOQUES FOLIAIRES
Fiches des méthodes d’observation et de suivi
Fausses-cloques à Exobasidium
→→Fausse-cloque du camélia (Exobasidium camelliae) / Camellia
→→Maladie des galles du rhododendron (Exobasidium japonicum) / Azalea, Rhododendron
→→Galles foliaires du rhododendron (Exobasidium rhododendri)Azalea, Rhododendron
→→Fausse cloque de l’azalée (Exobasidium vaccinii)Arbutus, Azalea, Pieris, Rhododendron
Cloques à Taphrina
→→Cloque du pêcher (Taphrina deformans) Prunus persica
→→Cloque foliaire de l’aulne (Taphrina sadebeckii) / Alnus
→→Cloque foliaire du bouleau (Taphrina betulae) / Betula
→→Cloque dorée du peuplier (Taphrina populina)  Populus
→→Cloque foliaire du chêne (Taphrina caerulescens) / Quercus
→→Cloque de l’orme (Taphrina ulmi) / Ulmus
· L’unité de suivi, la parcelle, correspond à une combinaison site * espèce végétale.
· Le suivi est à eectuer de mars à juillet sur arbres et arbustes hors conifères. Si possible, réaliser une
, le même jour.
· Les végétaux observés seront les mêmes tout le long du suivi (mere un repère). Observer 5 plantes par
parcelle. Répares sur l’ensemble de la parcelle, elles seront choisies comme suit :
→·Massifs et bosquets :
→· 2 plantes en bordure de la parcelle,
→· 2 plantes au cœur de la parcelle,
→· 1 plante située entre le bord et le cœur de la parcelle.
→·Haies et alignements : plantes placées à intervalle régulier.
Suivi standard
Le suivi consiste à eectuer des.
PROTOCOLE
· Observer le feuillage des végétaux choisis et relever les informaons suivantes :
Noter la présence/absence de cloques sur la parcelle
Exobasidium :
- jeunes feuilles transformées en boursouure blanc crème pouvant
aeindre 20 cm de long
- feuille âgée épaissie, boursouée, s’enroulant, se couvrant d’une
pruine blanche s’enlevant facilement au toucher
- bourgeons oraux transformées en rosee charnue blanc crème
Taphrina : feuilles portant des cloques vert pâle se couvrant d’un
feutrage blanchâtre à grisâtre sur la face inférieure, enroulées,
épaissies, rougies
·Cloques sur au moins une plante :
Saisir « Présence »
·Cloques absentes de l’ensemble de la
parcelle depuis le début des notaons :
Ne pas renseigner la BDD
 la maladie à cloque observée Espèce (si possible)

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Fiches des méthodes d’observaon et de suivi - CLOQUES FOLIAIRES
Fig. 1 : Exobasidium
camelliae sur Camélia
Mary Ann Hansen, Virginia
Polytechnic Instute and State
University, Bugwood.org
à Exobasidium camelliae sur
Camellia japonica
Clemson University - USDA Cooperave
Extension Slide Series, Bugwood.org
Exobasidium vaccinii sur rhododendron
John Hartman, University of Kentucky, Bugwood.org
Paul Bachi, University of Kentucky Research and
Educaon Center, Bugwood.org
Exobasidium vaccinii sur rhododendron
Paul Bachi, University of Kentucky Research and Educaon
Center, Bugwood.org
Exobasidium vaccinii sur rhododendron
Joseph O’Brien, USDA Forest Service, Bugwood.org
Fig 5 : Cloques à Taphrina caerulescens
sur feuille de chêne
Taphrina
caerulescens sur feuille de chêne
(gauche) et feuille saine (droite)
Darren Blackford, USDA Forest Service, Bugwood.org
Joseph O’Brien, USDA Forest Service, Bugwood.org
Fig. 7 : Cloque à Taphrina caerulescens
sur feuille de Quercus alba
Fig. 9 : Cloques à Taphrina caerulescens
vue sur la face inférieure et supérieure
d’une feuille de chêne
Florida Division of Plant Industry Archive, Florida
Department of Agriculture and Consumer Services,
Bugwood.org
Paul Bachi, University of Kentucky
Research and Educaon Center,
Bugwood.org
Fig. 4 : Cloques à
Taphrina deformans sur
feuilles de pêcher
William M. Brown Jr., Bugwood.org
Fig. 3 : Cloques à Taphrina
deformans sur pousse de pêcher
Fig. 8 : Feuillage de pêcher déformé
par Taphrina deformans
Plante & Cité, Guérin M.
Fig. 11 : Cloques à Taphrina ulmi
sur feuilles d’orme
Mary Ann Hansen, Virginia Polytechnic
Instute and State University, Bugwood.org
Fig. 10 : Cloques à Taphrina populina
sur feuille de Populus deltoides
Theodor D. Leininger, USDA Forest Service, Bugwood.org

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Fiches des méthodes d’observaon et de suivi - CLOQUES FOLIAIRES
Suivi expert
A réserver aux parcelles connues pour être contaminées, sur les végétaux les plus sensibles, à savoir :
→·Azalea (azalée) →·Populus (peuplier) →·Prunus persica (pêcher) →·Rhododendron (rhododendron)
Selon l’appréciaon de l’observateur, ce suivi peut également être envisagé pour d’autres plantes-hôtes.
Le suivi consiste à eectuer des
PROTOCOLE
· Pour chaque plante, observer 2 rameaux * 10 feuilles.
· Eectuer les observaons suivantes :
Compter le nombre de feuilles contaminées Nombre de feuilles contaminées
Pour chaque feuille, évaluer le pourcentage de surface occupé
 selon les classes suivantes :
Classe la plus représentée
→·1 : < 5 %
→·2 : 5-25 %
→·3 : 25-60 %
→·4 : > 60 %
Evaluer l’- En augmentaon / Stable / En diminuon
 la maladie à cloque observée Espèce (si possible)
En cas d’observaon d’une , il peut être
envisagé de réaliser la déterminaon spécique de la maladie à cloque observée après accord de l’animateur
lière de la région concernée. Les procédures standards d’envoi d’échanllon sont les suivantes:
· Prélever les     . Pour avoir l’  , prélever autant
d’échanllons que nécessaire.
· Envelopper chaque échanllon  et placer le tout dans
un .
· Envoyer immédiatement les échanllons, sinon les envoyer le plus rapidement possible après les avoir
conservés au froid (4°C).
Remarque. Pour plus de précisions (laboratoires à contacter, procédures d’envoi parculières …), consulter l’index « Envoi
d’échanllon pour idencaon ».

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Fiches des méthodes d’observaon et de suivi - 
Fiches des méthodes d’observation et de suivi
→→* Chancre du noiseer (Anisogramma anomala) / Corylus
→→Chancre à Botrysphaeria (Botryosphaeria dothidea) / Acacia, Albizzia, Araucaria, Acer, Betula, Carya,
Carpinus, Castanea, Catalpa, Cercidiphyllum, Cercis, Citrus, Carpinus, Crataegus, Cupressocyparis, Fagus,
Ficus, Fraxinus, Gleditsia, Ilex, Juglans, Larix, Liquidambar, Liriodendron, Malus, Nyssa, Ostrya, Pinus,
Populus, Prunus, Pyrus, Pterocarya, Quercus, Rhus, Ribes, Robinia, Rosa, Salix, Sequoia, Sequoiadendron,
Sophora, Sorbus, Tilia, Viburnum
→→Rouille vésiculeuse de l’écorce des pins à 2 aiguilles (Cronarum accidum) / Pinus
→→Rouille vésiculeuse de l’écorce des pins à 5 aiguilles (Cronarum ribicola) / Pinus
→→* Chancre corcal du châtaignier (Cryphonectria parasica) / Castanea, Quercus
→→Chancre dothichizéen du peuplier (Cryptodiaporthe populea) / Populus
→→Maladie de la suie de l’érable (Cryptostroma corcale) / Acer
→→Cylindrocladiose du buis (Cylindrocladium buxicola) / Buxus
→→Maladie des tâches brunes de l’écorce (Cytospora chrysosperma) / Acer, Betula, Fagus, Picea abies, Populus,
Prunus, Salix, Sambucus, Sorbus
→→Chancre cytosporéen (Cytospora leucosperma) / Acer, Castanea, Juglans, Populus, Prunus, Robinia, Salix,
Sambucus, Ulmus
→→Chancre à Dothichiza du peuplier (Dothichiza populea) / Populus
→→* Pitch canker (Fusarium circinatum) / Pinus, Pseudotsuga menziesii
→→Gibberella baccata / Acacia, Acer, Albizzia, Carpinus, Citrus, Clemas, Euonymus, Ipomea, Morus, Populus,
Robinia, Sophora
→→Chancre noir du saule (Glomerella miyabeana) / Salix
→→Chancre du tremble (Hypoxylon mammatum) / Populus tremula
→→Chancre du mélèze (Lachnellula willkommii) / Larix
→→Chancre du rosier (Leptosphaeria coniothyrium) / Berberis, Euonymus, Rosa, Rubus
→→Rouille courbeuse des rameaux (Melampsora populnea) / Pinus
→→Maladie du corail (Nectria cinnabarina) / Acacia, Acer, Aesculus, Albizzia julibrissin, Alnus, Amelanchier,
Aralia, Betula, Broussonea, Buxus sempervivens, Carya, Carpinus, Cercis, Chaenomeles, Crataegus,
Cornus, Cotoneaster, Cydonia, Elaeagnus, Euonymus, Fagus, Forsythia, Fraxinus, Gleditsia, Hibiscus,
Hydrangea, Juglans, Larix, Ligustrum, Kerria, Koelreuteria, Malus, Mespilus, Morus, Philadelphus, Pinus,
Populus, Prunus, Pyrus, Quercus, Rhus, Ribes, Robinia, Rosa, Salix, Sambucus, Sophora, Sorbus, Spiraea,
Tilia, Ulmus, Viburnum, Wisteria
→→Maladie corcale du hêtre (Nectria coccinea) / Acer, Betula, Fagus, Populus, Sambucus
→→Chancre de l’épicéa (Nectria cucurbitula) / Abies, Larix, Picea, Pinus, Taxus
→→Chancre du hêtre (Nectria dissima) / Acer, Betula, Fagus, Malus, Pyrus, Quercus, Salix
→→(Neonectria galligena) / Acer, Aesculus, Alnus, Betula, Carya,
Carpinus, Crataegus, Cydonia, Fagus, Fraxinus, Juglans, Malus, Mespilus, Nyssa, Phonia, Populus,
Pyracantha, Pyrus, Rosa, Quercus, Salix, Sorbus, Ulmus
→→Chancre du genévrier (Phomopsis juniperovora) / Cryptomeria, Cupressus, Juniperus, Taxus, Thuja
→→ (Seiridium cardinale) / Chamaecyparis, Cupressus, Juniperis, Thuja
→→Dépérissement des pousses des pins et sapins (Sphaeropsis sapinea) / Abies, Araucaria, Cedrus, Larix, Pinus,
Pseudotsuga menziesii
→→(Volutella buxi) / Buxus
· L’unité de suivi, la parcelle, correspond à une combinaison site * espèce végétale.