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Stage proposé par Nom et adresse du Laboratoire ou de l’Unité : IBPS-UMR7622 Téléphone : Mail : Site internet : http://www.ibps.upmc.fr/fr/Recherche/umr-biologie-developpement Directeur du Laboratoire ou de l’Unité : Sylvie Schneider-Maunoury Intitulé de l ‘équipe d’accueil : Mammalian Oocyte Meiosis Prénom et NOM du Responsable de l’équipe : Katja Wassmann Résumé du thème de recherche de l’équipe (une dizaine de lignes maximum) : L’ovocyte est formé au cours de la méiose grâce à la succession de deux divisions, la méiose I et la méiose II. La méiose I conduit à la séparation des chromosomes homologues tandis que la méiose II conduit à la séparation des chromatides sœurs. Ainsi, la méiose permet de former un ovocyte haploïde, qui une fois fécondé par le spermatozoïde, permettra la formation d’un embryon diploïde. Si au terme de ces deux divisions, l’ovocyte reçoit un nombre incorrect de chromosomes, il formera, après fécondation, un embryon aneuploïde. Ainsi, dans l’espèce humaine, les erreurs de ségrégation en méiose peuvent conduire à des fausses couches ou à des trisomies telles que la trisomie 21.Dans le laboratoire de K. Wassmann, nous nous intéressons à différents aspects qui régulent la méiose pour empêcher les erreurs de ségrégation. La fonction du SAC (Spindle Assembly Checkpoint) au cours de la division de méiose dans l’ovocyte de souris Titre du projet de stage : 2e Prénom, NOM, téléphone et adresse e-mail du Responsable du stage: Eulalie BUFFIN 01 44 27 25 75 [email protected] Projet de stage : (une vingtaine de lignes maximum) Le SAC (Spindle Assembly Checkpoint) est un mécanisme de surveillance qui empêche l’anaphase tant que tous les chromosomes ne sont pas correctement attachés et alignés sur le fuseau. En effet, si un chromosome n’est pas correctement attaché au moment de l’anaphase, il risque de ségréger de façon aléatoire et conduire à un ovocyte aneuploïde. Ainsi, le SAC permet de laisser le temps aux chromosomes d’établir des attachements corrects avec les microtubules du fuseau afin d’éviter les erreurs de ségrégation. Ce projet de stage vise à analyser la fonction du SAC au cours de la méiose II dans l’ovocyte de souris. En effet, après la première division, les ovocytes sont maintenus arrêtés en métaphase II grâce à l’activité CSF. Par conséquent, les chromosomes ont tout le temps pour établir des attachements corrects avec le fuseau. On peut donc se demander si le SAC est requis en méiose II pour retarder l’anaphase II. Ce projet consiste à perturber l’attachement des chromosomes avec des agents pharmacologiques tels que le nocodazole ou le taxol qui ont un effet sur la stabilité des microtubules. L’activité du SAC et la ségrégation des chromosomes en méiose II seront analysés dans différents contextes mutants disponibles au laboratoire. Des techniques couramment utilisées au laboratoire seront réalisés, telles que des étalement chromosomiques, des immunofluorescences et le suivi par vidéomicroscopie de protéines de fusion fluorescentes. Techniques mises en œuvre par le stagiaire : Etalements chromosomiques, Immunofluorescences, Imagerie (videomicroscopie, spinning disc) Publications du Responsable de stage au cours des 5 dernières années : Mps1 kinase-dependant Sgo2 centromere localisation mediates cohesin protection in mouse oocyte meiosis I El Yakoubi W, Buffin E, Cadière D, Gryaznova Y, Berenguer I, Touati S, Gòmez R, Suja JA, Van Deursen JM, Wassmann K. En revision à Nature Communication. Mouse oocytes depend on BubR1 for proper chromosome segregation but not for prophase I arrest. Touati SA, Buffin E, Cladière D, Hached K, Rachez C, van Deursen JM, Wassmann K. Nat Commun. 2015 Apr 21;6:6946 The phosphorylation of ARPP19 by Greatwall renders the auto-amplification of MPF independently of PKA in Xenopus oocytes. Dupré A, Buffin E, Roustan C, Nairn AC, Jessus C, Haccard O. J Cell Sci. 2013 Sep 1;126(Pt 17):3916-26. Autres informations: Etudiants actuellement en thèse ou en M2 dans l’équipe d’accueil. Pour chaque étudiant indiquez le nom du responsable de thèse, l’année du début de la thèse et l’Ecole Doctorale de rattachement - Antoine Vallot : Encadré par K. Wassmann et E. Buffin ; thèse : octobre 2014-soutenance prévue en septembre 2017 ; ED physiologie physiopathologie thérapeutique. Nora Bouftas : Encadré par K. Wassmann ; thèse débutée en octobre 2015 ; ED physiologie physiopathologie thérapeutique Leonor Keating : actuellement en M2 ; encadré par K. Wassmann Etudiants ayant préparé ou soutenu leur thèse ou leur M2 dans l’équipe d’accueil au cours des six dernières années. Pour chaque étudiant indiquez le nom du responsable de l’étudiant, l’année du début de la thèse et de fin de la thèse, l’Ecole Doctorale de rattachement et le devenir de l’étudiant. Sandra Touati : Encadrée par K. Wassmann ; M2 + Thèse 2012-2014 ; ED physiologie physiopathologie thérapeutique ; actuellement en post doc à Londres. Cette proposition de stage s’adresse-t-elle spécifiquement à un étudiant scientifique, médecin ou vétérinaire ou bien est-il ouvert à tous les profils ? étudiant scientifique Ce sujet peut-il donner lieu à une thèse ? Pas garanti.
