Evaluation de la désinfection des endoscopes digestifs

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14/12/2014
Université Abou-Bekr Belkaid Tlemcen
FACULTE DES SNV/STU – Tlemcen
Laboratoire de Microbiologie Appliquée à l’Agroalimentaire,
au Biomédical et à l’Environnement (LAMAABE)
‫مختبر الميكربيولوجيب التطبيقية لالغدية للبيوطبي‬
‫وللبيئة‬
Equipe : Hygiène Hospitalière
EVALUATION DE LA CONTAMINATION
BACTERIENNE DES ENDOSCOPES DIGESTIFS AU
SERVICE DE GASTRO-ENTEROLOGIE
CHU TLEMCEN
Pr. H. HASSAINE
XXV journées endoscopie digestive , Alger Décembre 2014
1
Introduction
Hygiène ,la contamination des dispositifs
médicaux
problème dans le secteur hospitalier
Les infections associées aux soins sont devenues au
fil de ces dernières années
Véritable enjeu de santé publique
Conséquences lourdes
financières et morales
L’endoscopie est très répandue dans le monde
Les endoscopies digestives sont des actes diagnostiques et
thérapeutiques très fréquemment pratiqués au service de
gastro-entérologie
Plus de 3000 actes endoscopiques digestifs /an sont réalisés
au CHU de Tlemcen
Ces gestes ne sont pas dénués de risques pour les patients,
risques liés au geste lui-même, mais également à l’utilisation
de matériels réutilisables
La question du risque infectieux associé à cet examen est
toujours d’actualité
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XXV journées endoscopie digestive , Alger Décembre 2014
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Endoscopie digestive et risque infectieux
Complications Infectieuses
Exogènes
Endogènes
La propre flore des patients
Streptocoques,
Staphylococcus spp
Escherichia coli
Klebsiella pneumoniae
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Transmission de microorganismes de
patient à patient via
* Endoscope préalablement utilisé qui
n’a pas été adéquatement nettoyé ou
retraité.
* microorganismes présents dans
l’environnement, sur la peau ou dans
l’eau).
XXV journées endoscopie digestive , Alger Décembre 2014
4
Plusieurs dysfonctionnements sur le plan de l’hygiène
ont été retrouvés.
Pseudomonas aeruginosa , Serratia spp , E.coli
Sont des microorganismes les plus fréquemment isolés
en raison de leur capacité à s’adhérer et peuvent vivre
plusieurs semaine ds des endroits humides
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former un biofilm au sein des canaux des
endoscopes.
XXV journées endoscopie digestive , Alger Décembre 2014
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Du fait de leur conception, les endoscopes souples
ne sont pas stérilisables et nécessitent des
procédures spécifiques de nettoyage et de
désinfection
La complexité de la
structure des endoscopes
La sensibilité à la chaleur
des endoscopes
Points d’ancrage
des germes
Des substrats favorables
à la multiplication de
micro-organismes
Contamination de patients par l’intermédiaire des
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biofilms formés à l’intérieur des endoscopes
XXV journées endoscopie digestive , Alger Décembre 2014
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Canaux et Capacités
Canal Air
 0.7 mm
Canal Irrigation
 0.7 mm
Canal à Biopsie
 4.2 mm
Canal d ’aspiration  4.2 mm
Canal CO2
Canal Water jet
Canal élévateur
 0.7 mm
 0.7 mm
 0.15 mm
Procédure de désinfection
défaillante
Pseudomonas aeruginosa , Serratia spp
E.coli ….
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Biofilm au sein des
canaux des endoscopes.
Un risque de transmission
d’infections associées aux soins
XXV journées endoscopie digestive , Alger Décembre 2014
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Les biofilms sont partout
10
Le biofilm serait le mode de vie naturel de la plupart des
microorganismes, notamment en milieu hostile
99% des bactéries sont fixées à des supports
solides dans les écosystèmes : DM, Eau, Sol et
Surfaces
12
Définition d’un biofilm
Ce qui ne tue pas endurcit !
Un biofilm est une communauté de microorganismes
(bactéries, champignons etc.) adhérant entre eux, fixée à
une surface, et caractérisée par la sécrétion d'une
matrice polysaccharides ( peptidoglycanes, cellulose)
imbibée d'eau, adhésive et protectrice.
On sait aujourd’hui que les bactéries sont capables de
communiquer entre elles (Quorum Sensing) et de vivre
en association : Biofilm.
Ensemble on est plus fort
Ils sont à l’origine de nombreuses
infections chroniques
Le biofilm Est –il dangereux ?
Le biofilm est véritable problème
Biofilm et endoscope
Surface interne du canal opérateur
d’un endoscope
Neuf
600 Utilisations
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Le prélèvement microbiologique des canaux internes
des endoscopes
reste un outil de référence pour
l’évaluation de la qualité microbiologique des
endoscopes
Recherche des biofilms
indicateur de la qualité des procédures de
traitement des endoscopes.
XXV journées endoscopie digestive , Alger Décembre 2014
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Essayer de vérifier l’état de contamination et
formation de biofilm bactérien dans les endoscopes
du service gastro-entérologie du « CHU Tlemcen »
Essayer de vérifier l’efficacité des procédures de
nettoyage appliquées au niveau de ce service
 Essayer de Proposer quelques perspectives et
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correctives
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2 endoscopes
7 Prélèvements
3 : avant acte endoscopique
Après durée de stockage > à 12h
4 :Juste Après désinfection
réalisée après un acte
endoscopique
Réalisés en deux phases
Injection d’une solution de
décrochage des micro-organismes
dans
•Canal opérateur
•Canal d’aspiration
•Canal insufflation
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Ecouvillonnage
Brossage
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Matériel et méthodes
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1- Injection de la solution de décrochage( 2X 50mL Twin+Thio)
Solutions récupérées
Gélose nutritive
Dénombrement
Gélose Mac Conkey
Bactéries à Gram (-)
Gélose Chapman
Bactéries Gram (+)
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Matériel et méthodes
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2- Ecouvillonnage et Brossage/ diamètre du canal
Brosse stérile
5ml d’eau
physiologique
Ecouvillon
Sonication
Vortexage
(20sec)
Gélose nutritive
Mac Conkey
Chapman
XXV journées endoscopie digestive , Alger Décembre 2014
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Matériel et méthodes
Identification des souches
caractères
macroscopiques
caractères
microscopiques
 Coloration
de Gram
 Détection
de Capsule
caractères
biochimiques
Api 20 E
Api Staph
Api NE
Matériel et méthodes
Evaluation de la
formation du
biofilm in vitro
Technique
qualitative
Rouge Congo
Technique
quantitative
Méthode en
Tube TM
Méthode de
Plaque de Culture
de Tissus
2) RCA : Production de Slime (Ziebuhr et al., 2001)
Milieu au rouge Congo
Milieu ensemencé une colonie/20ml EDS
Une nuit à 37°c et 24h à T° ambiante
PIA (+) Colonies rugueuses
polysaccaharide intracellulair
adhesin
PIA (-) Colonies rouge lisses
Evaluation de la l’adhésion du biofilm
DO ≤ DOt
DOt ≤ DO ≤ DOt×2
DOt×2 ≤ DO ≤ DOt×4
DO×4 ≤ DO
Pas adhésion
Faible
Modérée
Forte
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Evaluation de l’efficacité de l’agent désinfectant sur le
biofilm
Les biofilms formés sur microplaque ont été rincées et
placées en contact avec différentes concentrations du
désinfectant :( désinfectant pure, 1/33 et 1/100)
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Les microplaques ont été laissées à température
ambiante pendant le temps de contact recommandé
par le fournisseur qui normalement de 15min.
Le désinfectant est éliminé et rincé, les puits
étaient remplis de cristal violet (0.5%) pendant
15min à température ambiante puis rincés à l’eau
physiologique stérile.
la lecture des DO à 590nm des différentes
concentrations on les compare avec la DO du
biofilm non traité par le désinfectant
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Souches identifiées
Bactéries identifiées
Nombre
- Escherichia coli
10
- Serratia marcescens
8
- Staphylococcus. sp
6
- Staphylococcus lugdunensis
- Staphylococcus haemolyticus
4
- Klebsiella pneumoniae
3
- Serratia odorifera
2
- Morganella morganii
2
- Proteus penniri
2
- Vibrio cholerae
1
- Vibrio fluviatis
1
-Cedecea davisae
1
- Enterobacter cloacae
1
- Pseudomonas putida
1
- non identifiées
4
4
50
Total
XXV journées endoscopie digestive , Alger Décembre 2014
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Résultat du dénombrement de la flore mésophile aérobie totale et différentes bactéries
présentes dans les endoscopes étudiés après désinfection
Type Endoscope
Canal
Dénombrement de la FMAT
en UFC/canal (2x50mL)
Bactéries identifiées
FUJINON®
Opérateur
indénombrable
-Serratia marcescens
-Vibrio cholerae
- Staphylococcus. sp
FUJINON®
Opérateur
indénombrable
- Klebsiella pneumoniae
- Pseudomonas putida
- non identifiée
Insufflation
Indénombrable
- Serratia marcescens
- Klebsiella pneumoniae
- Escherichia coli
- Staphylococcus lugdunensis
- Staphylococcus sp
Aspiration
Indénombrable
- Serratia marcescens
- Escherichia coli
- Staphylococcus sp
OLYMPUS®
Opérateur
indénombrable
- Serratia marcescens
OLYMPUS®
Opérateur
indénombrable
- Serratia marcescens
- Enterobacter cloacae
- Klebsiella pneumoniae
- Escherichia coli
- Staphylococcus haemolyticus
Insufflation
1,05.104
Aspiration
indénombrable
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- Escherichia coli
- Serratia marcescens
- Staphylococcus lugdunensis
- Staphylococcus sp
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Résultat du dénombrement de la flore mésophile aérobie totale et
différentes bactéries présentes sur les embouts distaux et proximaux
des endoscopes étudiés après désinfection
Type Endoscope
Canal
Dénombrement de la FMAT
en UFC/canal
FUJINON®
Opérateur (brosse)
-
- Proteus penniri
- Cedecea davisae
- Staphylococcus haemolyticus
Opérateur (écouvillon)
5,4.103
- Staphylococcus haemolyticus
- non identifiée
Opérateur (écouvillon)
indénombrable
- Escherichia coli
Aspiration (écouvillon)
indénombrable
- Escherichia coli
Aspiration (brosse)
Indénombrable
-Escherichia coli
-Klebsiella pneumoniae
Opérateur (brosse)
indénombrable
-Escherichia coli
FUJINON®
OLYMPUS®
Bactéries identifiées
--Staphylococcus haemolyticus
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Opérateur (écouvillon)
indénombrable
- Escherichia coli
Insufflation
(écouvillon)
indénombrable
- Escherichia coli
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Etat de contamination des endoscopes
après stockage de 12h
Résultat du dénombrement de la flore mésophile aérobie totale et
différentes bactéries présentes dans les endoscopes étudiés avant
désinfection et après stockage
Type Endoscope
Canal
Dénombrement de la
FMAT en UFC/canal
FUJINON®
Opérateur
3,36.104
FUJINON®
OLYMPUS®,
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Opérateur
Opérateur
Bactéries identifiés
- Serratia odorifera
-Staphylococcus
lugdunensis
Indénombrable - Serratia odorifera
-Staphylococcus
lugdunensis
-Staphylococcus. spp
Indénombrable - Serratia marcescens
- Staphylococcu. spp
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Détection des souches formatrices de biofilm
Les souches choisies , sont les souches retrouvées
avant et après désinfection.
7 souches du genre Serratia (marcessens , odorifera)
11 souches du genre Staphylococcus ( coagulase (-)
Serratia
Staphylococcus
Biofilm filamenteux
Biofilm à colonies noires rugueuses
Formation de slime sur rouge Congo Agar
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Détection des souches formatrices de biofilm par la microplaque de
titration à 96 puits
DO
à
590nm
0,35
DO
à
590n
m
0,3
0,25
0,2
0,15
0,1
0,05
0,5
0,45
0,4
0,35
0,3
0,25
0,2
0,15
0,1
0,05
0
0
S odorifera1
S odorifera2
Dot x 4 ≤ DO
Biofilm ++++
Evaluation des DO des souches de Serratia spp
isolées des endoscopes étudiés
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1,2
0,352
0,35
0,348
DO
0,346
à
590nm 0,344
0,342
0,34
0,338
0,336
0,334
1
0,8
DO
à
0,6
590nm
0,4
0,2
Slugdunensis1
Slugnensis2
0
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s1
S2
s3
s4
S5
S6
DO
à
590nm
S7
0,4
0,35
0,3
0,25
0,2
0,15
0,1
0,05
0
Sheamo 1
Dot x 4 ≤ DO
Shemo2
Biofilm ++++
Evaluation des DO des souches de Staphylocoques étudiées sur
microplaques
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Evaluation de l’ efficacité de l’agent désinfectant(Glutaraldéhyde)
sur le biofilm
Temps de
contact (min)
0
Concentration
0
1/10
1/50
1/100
1/200
1/400
1/500
1/100
DO
0.30
0.55
0.43
0.35
0.30
0.28
0.33
0.47
Staphylococcus
spp
DO
0.15
0.52
0.26
0.19
0.14
0.15
0.15
0.31
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20
30
Serratia
marcessens
Rmq : Deux souches à de biofilm (+++) sont sélectionnées
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Est –il possible de prévenir la formation du
biofilm ???
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Conclusion
* Les causes de la contamination des endoscopes
sont nombreuses et souvent associées,
*Seule la maitrise de tous les paramètres permet
de s’assurer de résultats satisfaisants
* L’ennemi commun des DM et des endoscope est le
BIOFILM
C’est l’intérieur du patient qui est au bout de
l’endoscope
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Equipe Hygiène Hospitalière et Biofilm sur dispositifs médicaux
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