LV312 Génétique et Biologie Moléculaire I 1ère session-26 mai 2009 CORRIGE Sujet de Génétique- Durée conseillée : 1h- Sans document ni calculatrice- Les téléphones portables doivent être éteints. Vos réponses doivent être concises mais néanmoins justifiées. Le syndrome de Noonan (NS) est une maladie autosomique dominante, avec de nombreux effets pléiotropes (problèmes cardiaques, défauts du squelette, anomalies sanguines…). Pour certains individus, la mutation responsable de cette maladie est une mutation de type fauxsens dans le gène PTN11, qui code pour une protéine intervenant dans une voie de transduction de signal impliquant le récepteur transmembranaire EGFR, la petite protéine G Ras et la MAP kinase ERK. Dans les conditions normales, cette voie est activée par la fixation d’un ligand au récepteur EGFR. Il existe plusieurs protéines permettant de réguler l’activité de cette voie, telle que la protéine Argos, qui est un régulateur négatif. La protéine PTN11 est également une protéine régulatrice de cette voie, mais on ne sait pas s’il s’agit d’un régulateur positif ou négatif (Figure 1). Cette voie est conservée chez tous les métazoaires, et intervient dans de nombreux processus cellulaires (prolifération, différenciation…). Afin de déterminer la fonction précise de la protéine PTN11 dans la voie (régulateur positif ou négatif) et de comprendre pourquoi certains allèles mutants de PTN11 sont responsables de l’apparition de NS, des lignées transgéniques de Drosophile permettant de modéliser cette maladie ont été générées, en utilisant l’homologue Drosophile de PTN11, appelé corkscrew (csw). Deux allèles mutants du gène csw contenant des mutations identifiées chez certains malades ont été générés : l’allèle cswA72S (mutation d’une A en S à la position 72) et l’allèle cswN308D (mutation d’une N en D à la position 308). Ces allèles ont été clonés dans un vecteur permettant de faire de la transgenèse, sous contrôle d’un promoteur minimal et de séquences UAS (transgènes UAS-cswA72S et UAS-cswN308D). A titre de contrôle, l’allèle sauvage de csw a été également cloné de la même façon (transgène UAS- cswWT). Ces trois transgènes ont été utilisés pour générer des lignées transgéniques de drosophile. Q1. Expliquez le principe de la transgenèse à l’élément P chez la drosophile (15 lignes maximum et schéma). -Elément P : transposon qui peut s’insérer au hasard dans le génome de la drosophile, donc utilisé comme vecteur de transgenèse -Pour s’insérer, P doit avoir des pieds fonctionnels, et il faut la production de transposase -Pour la transgenèse, utilisation de deux plasmides fournissant ces deux éléments (pieds et transposase) séparément: le premier plasmide a des pieds fonctionnels, un marqueur de transgenèse (ex : gène white+) et le transgène souhaité; le second plasmide a des pieds défectueux et contient le gène qui code pour la transposase ; ce plasmide ne peut pas s’intégrer dans le génome des embryons injectés et sera donc perdu au cours des divisions cellulaires, ce qui permet d’avoir des lignées transgéniques stables car dépourvues de transposase. -Co-injection des 2 plasmides au pole postérieur (= localisation des futures cellules de la lignée germinale) d’embryons mutés dans le gène white ; récupération d’adultes G0 issus des embryons injectés (ils ont tous les yeux blancs) ; croisements individuels de ces adultes G0 avec des adultes mutés dans le gène white ; les adultes G0 qui n’ont pas intégré le transgène dans leur lignée germinale ont 100% de descendants à yeux blancs ; les adultes G0 qui ont intégré le transgène dans une cellule de leur lignée germinale ont une lignée germinale mosaïque, ce qui se traduit par une descendance G1 constituée d’individus à yeux blancs (non transgéniques) et d’individus à yeux colorés (transgéniques). Ces derniers sont récupérés et utilisés pour établir des lignées transgéniques. Pour chaque transgène, une lignée homozygote contenant le transgène inséré sur le chromosome II a été obtenue. Ces trois lignées ont été croisées avec une lignée pilote contenant le transgène Ptub-Gal4 à l’état homozygote sur le chromosome II (Ptub: promoteur du gène tubuline, qui s’exprime de manière ubiquitaire tout au long du développement). Des embryons issus de ces croisements ont été récoltés, leurs protéines extraites et mises à migrer sur gel. A la fin de la migration, le gel a été transféré sur membrane et celle-ci a été incubée avec un anticorps spécifique de la protéine Corkscrew (expérience de « western blot ») (Figure 2). Q2. Expliquez le principe du système UAS-Gal4 (5 lignes maximum et schéma). -Système UAS-Gal4= système bipartite permettant l’expression d’un gène de manière tissu spécifique, stade de développement spécifique… -Gal4=activateur transcriptionnel de levure qui se fixe sur des séquences spécifiques appelées UAS - La première lignée utilisée contient le transgène à exprimer : celui-ci est cloné sous contrôle d’un promoteur minimal et de séquences UAS ; la seconde lignée contient le transgène pilote : celui-ci contient le gène Gal4 sous contrôle d’un promoteur particulier (ici, promoteur ubiquitaire tubuline) -Les descendants issus du croisement entre ces deux lignées expriment de manière ubiquitaire (grâce au pilote tubuline::Gal4) le transgène étudié. Q3. Interprétez le résultat de la figure 2. Les trois transgènes csw utilisés permettent bien, grâce à Gal4, l’expression, en à peu près la même quantité, de la protéine Csw sauvage ou mutée (pour chaque lignée, comparer la piste avec et sans pilote Gal4). Les deux mutations testées n’ont pas d’effet sur la stabilité de la protéine. De plus, la surexpression de cette protéine (sauvage ou mutée) n’entraine pas de létalité (ou alors pas une létalité totale) dans les stades précoces du développement (embryogenèse) puisqu’on obtient des embryons. Ces trois lignées ont ensuite été croisées avec une autre lignée pilote : celle-ci contient le transgène Ptub-Gal4 à l’état hétérozygote inséré sur le chromosome III, face à un chromosome balanceur TM3, Sb1 (l’allèle Sb1 confère à l’état hétérozygote un phénotype adulte de soies courtes et épaisses, noté [Sb], et une létalité à l’état homozygote). Les adultes issus de chacun de ces croisements ont été dénombrés. Les résultats sont présentés dans le tableau 1. Q4. Interprétez le résultat de ces croisements en écrivant les génotypes et phénotypes des parents et des descendants. Que peut-on en conclure sur les allèles mutants UAS-cswA72S et UAS-cswN308D ? Descendance théorique attendue s’il n’y a pas de létalité d’une catégorie: 50% [Sb], qui ne sur-expriment pas Csw, 50% [Sb+], qui sur-expriment Csw. C’est ce qu’on observe avec cswWT et cswN308D, ces deux protéines sur-exprimées ubiquitairement n’induisent donc pas de létalité. Pas contre, on n’observe aucun [Sb+] avec cswA72S. La sur-expression ubiquitaire de cette protéine mutée est donc létale Les adultes [Sb+] issus du croisement avec la lignée UAS-cswN308D présentent dans 100% des cas des anomalies au niveau du plan d’organisation de l’aile (Figure 3C, présence de nervures surnuméraires), alors que ce n’est pas le cas des adultes [Sb+] issus du croisement avec la lignée UAS-cswWT (Figure 3B), dont l’aile est identique à celle de la souche de référence (Figure 3A). Par ailleurs, le phénotype des individus 3C ressemble au phénotype d’une lignée exprimant une forme mutante constitutivement active du récepteur EGFR (= récepteur capable de transduire un signal même en l’absence de son ligand) (Figure 3E). Ce phénotype est à comparer également avec celui d’individus portant une mutation perte de fonction partielle du gène csw (Figure 3D). Q5. D’après ces résultats, répondez aux questions suivantes : (1) Que pouvez-vous conclure sur le rôle de la voie de transduction EGFR dans le développement des nervures de l’aile ? Comparaison 3A/3E: l’activation constitutive de la voie de transduction impliquant le récepteur EGFR induit des nervures surnuméraires. Cette voie de transduction régule donc positivement la formation des nervures. (2) Ces résultats vous permettent-ils de préciser la fonction de la protéine régulatrice Csw ? Comparaison 3E/3D: un mutant perte de fonction pour csw présente le phénotype inverse d’une activation constitutive de la voie, c'est-à-dire des nervures incomplètes. Ce résultat suggère que la fonction de la protéine Csw est de réguler positivement la voie de transduction EGFR/ERK. (3) Comment interprétez-vous l’effet de la mutation cswN308D sur la fonction de la protéine Csw ? Comparaison 3C/3E : la sur-expression de la protéine CswN308D a le même effet que le récepteur constitutif EGFR : l’effet de la mutation cswN308D est donc d’hyper-activer la voie de transduction (allèle gain-de-fonction). Ce phénotype n’est pas observé quand on surexprime la protéine Csw sauvage (3B). Afin de confirmer ces hypothèses, des individus portant à la fois le transgène UAS-cswN308D, le transgène Ptub-Gal4, ainsi qu’un allèle mutant M dans un gène de la voie de transduction étudiée (Figure 1), ont été générés par croisement, et leurs ailes ont été observées. Leur phénotype de nervures surnuméraires a été comparé avec celui des individus portant seulement le transgène UAS-cswN308D et le transgène Ptub-Gal4. Le tableau 2 résume les résultats obtenus avec les différents allèles M utilisés (+++ : aggravation du phénotype des individus UAS-cswN308D, Ptub-Gal4 ; --- : suppression du phénotype des individus UAScswN308D, Ptub-Gal4). Q6. Interprétez ces résultats. Confirment-ils les résultats de la question Q5? On réalise ici des expériences d’interactions génétiques. Le phénotype cswN308D est supprimé par deux allèles perte de fonction d’acteurs de la voie (EGFR et Ras). A l’inverse, le phénotype cswN308D est augmenté par un allèle perte de fonction du régulateur négatif Argos. Ces résultats montrent donc que l’allèle cswN308D induit une hyper-activation de la voie, et joue un rôle opposé à celui du régulateur négatif Argos. Sujet écrit d’après Oishi et al. (2006), Human Molecular Genetics 15, 543-553 ligand EGFR EGFR + Ras PTN11 (Csw) + ou - ? + Argos ERK Gènes cibles Figure 1: Schéma simplifié de la voie de transduction du signal EGFR/ERK. +: régulation positive; -: régulation négative Figure 2: Western blot de protéines d’embryons avec un anticorps dirigé contre la protéine Csw. Le génotype des embryons est indiqué au dessus de chaque piste. WT: embryons sauvages Lignée transgénique UAS- cswWT UAS-cswN 308D UAS-cswA72S Nombre d’individus [Sb] 54 46 46 Nombre d’individus [Sb+] 44 51 0 Tableau 1 Figure 3: Phénotypes d’ailes induits par certains génotypes (voir texte pour les génotypes). A: aile sauvage; en C, D, E, les flèches montrent les défauts de nervures Nom de l’allèle M testé Egfr top1 Protéine codée par le gène M EGFR aosD7 Argos Ras85De1B Ras Phénotype par rapport aux individus Type d’allèle UAS-csw N308D , Ptub-Gal4 Perte de fonction Perte de fonction Perte de fonction Tableau 2 --+++ ---