TP - Faculté des Sciences de Rabat
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Université Mohammed V- Agdal Faculté des Sciences de Rabat Laboratoire de Physiologie Animale TRAVAUX PRATIQUES de PHYSIOLOGIE ANIMALE Conception : NOUZHA BOUAMOUD Participation : NOUZHA RAMI FOUZIA BOUZOUBAA IKBAL NACIRI 1) PRINCIPES PRINCIPES DE DE BASE BASE EN EN TP TP 1) DE DE PHYSIOLOGIE ANIMALE ANIMALE PHYSIOLOGIE 1) Ne JAMAIS maltraiter les animaux : si l’animal réagit au cours du travail malgré l’anesthésie, compléter la dose d’anesthésique (rat) ou refaire la démédulation ou la décérebration (grenouille). 2) Sacrifier le rat à la fin de chaque TP en sectionnant les carotides pour provoquer une hémorragie. Jeter à la poubelle spéciale l’animal après avoir vérifié qu’il est bien mort. 3) Laisser le plan de travail propre avant de quitter la salle : essuyer les traces de sang, rincer la verrerie, jeter tous les déchets 4) Se nettoyer longuement les mains et les ongles au savon avant de quitter la salle. Porter une blouse blanche pour protéger ses vêtements. 5) Bien entretenir son matériel de dissection : les petits ciseaux doivent servir exclusivement aux canulations et tout le matériel doit être soigneusement nettoyé et séché après chaque séance de TP. 2) ANESTHESIE ANESTHESIE DU DU RAT RAT 2) Produit utilisé : Ethyl uréthane uréthane Ethyl Anesthésique non réversible Solution mère à 10 g /100 ml Dose à injecter: 1g par Kg de rat Type d’injection : intrapéritonéale La contention contention du du rat rat se se fait fait par par la la La peau du du dos dos qui qui doit doit être être bien bien tendue tendue peau afin de de l’empêcher l’empêcher de de tourner tourner la la tête tête afin et éviter éviter ainsi ainsi les les éventuelles éventuelles et morsures. morsures. 1 2 Attention Le plus terrorisé, c’est moi !!! Ne me fais pas mal !!! L’aiguille doit être de bonne qualité afin de ne pas maltraiter l’animal Aiguille perpendiculaire à l’abdomen Enfoncer les deux tiers de l’aiguille Aiguille non perpendiculaire : risque d’injection sous-cutanée Éviter la zone des organes génitaux Éviter de piquer au niveau du foie et de l’estomac (risques d’hémorragies internes fatales) 3) MATERIEL MATERIEL 3) Cathéters divers Fil Gros ciseaux (peau) Seringue de 1ml remplie de NaCl 9 o/oo Coton Pinces fines Ciseaux fins (hémisections) Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Attention Ne pas trop serrer les nœuds coulants autour des pattes 4) LES LES CANULATIONS CANULATIONS 4) A) Canulation Canulation de de la la A) Veine Jugulaire Jugulaire Veine Rôle : 2 veines jugulaires droite et gauche ramènent le sang de la tête au cœur. Emplacement : le cou Utilité de la canulation : injection intraveineuse d’une hormone ou d’un produit pour étudier ses effets Tête Tête 1ère Ligature Sens de circulation du sang 2ème Ligature Veine Jugulaire Cœur Cœur Cathéter utilisé 2) Introduire Introduire lele cathéter cathéter 2) dans l’l’ hémisection hémisection dans 1ère Ligature serrée 1) Réaliser Réaliser une une hémisection hémisection 1) 2ème Ligature 3)Serrer 3)Serrer (Doublenœud) nœud) (Double Ne pas enfoncer le cathéter jusqu’au cœur Attention Vérification de de la la canulation canulation de de la la jugulaire jugulaire Vérification 1) Placer Placer une une Seringue Seringue de de NaCl NaCl 99 °/00 °/00 1) 2)Aspirer délicatement délicatement 2)Aspirer 3) Renvoyer Renvoyer lele sang sang dans dans lala circulation circulation 3) 4) Laisser Laisser lala seringue seringue en en place place 4) Attention Laisser la seringue de NaCl en place pour éviter les coagulations dans le cathéter Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Emplacement des jugulaires Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Dilacération des graisses sous-cutanées et séparation des glandes salivaires Attention Ne pas utiliser de ciseaux pour dilacérer (doigts et pinces) Jugulaire droite Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Fil de la ligature passant sous la jugulaire Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Pose d’une ligature serrée côté tête et d’une ligature en attente sous la jugulaire côté cœur Ne pas isoler la veine des tissus sous-jacents pour la ligature côté cœur Attention Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Réalisation d’une hémisection sur la jugulaire Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Introduction du cathéter dans la jugulaire Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Jugulaire droite canulée Jugulaire gauche B) Canulation Canulation de de la la B) Trachée Artère Artère Trachée Rôle : met en relation les voies aériennes supérieures avec les poumons Emplacement : le cou Dilacération Utilité de la canulation : soulager les problèmes respiratoires de l’animal généralement liés à l’anesthésie en lui permettant de respirer directement par trachéotomie Muscle sterno-hyoidien Attention La trachée artère doit être canulée uniquement dans le cas ou l’animal présente des problèmes respiratoires au cours de la manipulation (effet de l’anesthésie). Toutefois, cette canulation doit être préparée à l’avance : trachée artère dégagée et ligature prête à être serrée. Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Glandes salivaires (après dilacération) Dilacération à l’aide de pinces Muscle sterno-hyoidien entourant la trachée artère Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Ouverture du muscle sterno-hyoïdien par dilacération Attention Ne pas utiliser de ciseaux pour dilacérer le muscle sterno-hyoidien (risque de sectionner une carotide…) Glande thyroïde Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Dégagement de la trachée artère après ouverture du muscle sterno-hyoidien Fil Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Pose d’une ligature en attente sous la trachée hémisection 1 2 Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Tête 3 Poumons 4 Ne pas introduire le cathéter plus de 1 cm Attention Sens de de la la canulation canulation de de la la trachée trachée Sens Serrer la ligature Tête Poumons Cathéter Canuler la trachée avec le bout rond du cathéter ! Canuler la trachée vers les poumons ! Attention Ne pas enfoncer le cathéter dans les poumons ! C) Canulation Canulation du du Canal Canal C) Cholédoque Cholédoque Emplacement Emplacement Foie Canal cholédoque Veine porte Estomac Pancréas Duodénum (Anse duodénale) La bile sécrétée par le foie et la sécrétion pancréatique sont déversées dans le duodénum en passant par le canal cholédoque Les nutriments issus de la digestion sont transportés de l’intestin vers le foie par la veine porte Rôle : transport de la bile et des secrétions pancréatiques vers le duodénum Emplacement : relie le foie au duodénum en traversant le pancréas diffus. Utilité de la canulation : recueillir la bile sécrétée par le foie recueillir la sécrétion pancréatique (dans ce cas l’arrivée de la bile issue du foie est interrompue par la pose d’une ligature serrée sur le cholédoque à sa sortie du foie) Foie 1) Poser une ligature en attente sur le canal cholédoque 2) Charger le canal sur des pinces fines Ligature 3) Faire une hémisection sur le canal Canal cholédoque 4) Canuler en direction du foie 5) Serrer la ligature Bile Anse duodénale Photo canal choledoque Repérer l’apophyse xiphoïde qui servira de point de départ à l’ouverture de l’abdomen sur 2 cm Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Emplacement de l’estomac X Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Tête Base du Foie Pancréas Estomac Canal cholédoque Duodénum Queue Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Attention Ne pas manipuler le duodénum avec des pinces (risques hémorragiques) Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Réalisation d’une hémisection sur le canal cholédoque Bile progressant dans le cathéter Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Canal cholédoque canulé D) Canulation Canulation de de la la vessie vessie D) Utilité : mesurer la diurèse en recueillant directement les urines Vessie Cathéter Urines Ligature en attente VESSIE Ligature serrée autour du pénis Ouverture de l’abdomen sur 2cm Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Ligament Vessie Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Réalisation d’une hémisection à l’apex de la vessie Cathéter à embout rond Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Progression de l’urine dans le cathéter Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Ligature serrée sur le cathéter Vessie canulée Vessie Cathéter Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Attention Vérifier que le bout du cathéter est bien libre à l’intérieur de la vessie D) Canulation de la carotide (et repérage des nerfs vagues) Rôle : 2 artères carotides droite et gauche transportent le sang du cœur vers la tête Emplacement : le cou, à l’intérieur du muscle sterno-hyoïdien Tronc vaguo-carotidien Jugulaires Utilité de la canulation : prélèvement de sang Séparation du du nerf nerf vague vague et et de de la la carotide carotide Séparation Tronc vaguo-carotidien Séparation à l’aide de pinces fines Ne pas abîmer le nerf avec les pinces : fragile !!! Attention Isoler la carotide et le nerf sur un fil et tirer délicatement pour les séparer sur au moins 1 cm Muscle sterno-hyoidien écarté Trachée artère Tronc vago-carotidien Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Dégagement de la trachée artère après ouverture du muscle sterno-hyoidien Carotide droite Nerf vague droit Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Glisser les pinces fines fermées entre le nerf vague et la carotide Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Séparation du nerf vague et de la carotide droits Tirer délicatement les deux fils pour séparer le nerf vague de la jugulaire Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Séparation du nerf vague et de la carotide droits Cathéter rempli de NaCl 9°% et bouché à son extrémité extérieure Ligature serrée Sens de circulation du sang Ligature en attente Pince hémostatique Attention Ne jamais oublier de poser la pince à artères avant de réaliser l’hémisection : hémorragie immédiate et mortelle Carotide Pour prélever prélever du du sang sang àà partir partir d’une d’une carotide carotide :: Pour 2)Ouvrir Ouvrirlalapince pincehémostatique hémostatique 2) Sang Carotide Sectionnerl’extrémité l’extrémité 1)1)Sectionner ducathéter cathéter du 4)Refermer Refermerlalapince pincehémostatique hémostatique 4) 3)Prélever Préleverlelesang sangdans dansun untube tube 3) Tête 1 Ligature serrée 3 Pince hémostatique Carotide droite 2 Ligature en attente Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Réalisation d’une hémisection sur la carotide droite Cathéter (rempli de NaCl 9 °%) Hémisection Réalisé avec un animal sous anesthésie générale Canulation de la carotide droite Avancée du sang dans le cathéter 1) Serrer la ligature sur le cathéter 2) Ouvrir la pince hémostatique Réalisé avec un animal sous anesthésie générale 3) Recueillir un échantillon de sang Attention Le sang restant dans le cathéter après prélèvement doit être renvoyé dans la circulation générale à l’aide d’une seringue afin d’éviter toute coagulation au sein du cathéter Merci à Amina Badra et Mohammed Nour nos irremplaçables techniciens sans qui les travaux de Physiologie Animale ne seraient pas ce qu’ils sont. Leur mot d’ordre : efficacité, propreté et sourire… Merci à notre technicien animalier Abderrahmane, ainsi qu’à Khammar, qui gèrent efficacement depuis 20 ans nos exigences les plus farfelues de rats à jeun, de rats avec biberons ou de rattes vierges…
