Télécharger - Annales partiels ENSTBB

Chapitre 2 : croissance bactérienne
I- Milieux et méthodes de cultures des microorganismes
A- Matériel utilisé
Les cultures en milieux solides se font dans des boîtes de Pétri ou des tubes de culture. Les cultures en
milieux liquides dans des tubes de culture, des erlenmeyers ou des fermenteurs.
B- Milieux de culture
1- Les constituants fondamentaux
Les nutriments sont les substances utilisées dans la biosynthèse ou la production d’énergie. Les bactéries ont
besoins de différents éléments pour leur croissance :
 Macroéléments : C, H, O, N, P et S (g/L) puis K, Mg, Fe et Ca (mg/L).
 Oligoéléments : sous forme de traces : Mn, Co, Zn, Cu, Ni et Mo (µg/L).
Les milieux de culture sont faits dans de l’eau osmosée avec du tampon. La composition du milieu varie en
fonction de l’espèce à cultiver. Certains milieux permettent de sélectionner des microorganismes.
2- Les différents milieux utilisés
a- Milieux complexes ou empiriques
Ce sont des milieux riches contenant des peptones, des extraits de levures ou de viandes (sources de C, N
vitamines, nucléotides et minéraux) et dont la composition n’est pas exactement connue.
i- Milieux sélectifs ou d’enrichissement
Ils contiennent des inhibiteurs de croissances (NaCl 70 g/L  Staphylocoques ; sels biliaires, fuchsine ou
cristal violet  Gram - ; sélénite de sodium  favorise la croissance des Salmonella).
ii- Milieux différentiels ou d’identification
Ils permettent de distinguer des groupes ou d’identifier des bactéries lors d’un isolement des cultures pures :
 Gélose au sang : hémolytique ou non hémolytique.
 Mc Conkey : entérobactéries lactose + (rose) ou non.
 Milieu SS : lactose -, H2S + (Salmonella et Shigella).
b- Milieux synthétiques
La composition de ces milieux est définie. Ils servent à l’étude des besoins nutritifs, à l’étude d’activité
enzymatiques ou pour le dosage de facteur de croissance.
Les milieux de culture peuvent être solidifié par de l’agar qui est un polysaccharide d’algues rouges qui
absorbe 400 fois son poids en eau et qui se liquéfie à 70°C ce qui permet de cultiver les bactéries thermophiles.

3- La stérilisation
a- Méthodes physiques
i- Chaleur
Les instruments peuvent être flambés au bec bunsen. Ce dernier offre une zone stérile due à la convection
de l’air chauffé.
Il est possible de stériliser par chaleur sèche au four Pasteur : 30 minutes à 2 heures à 180°C.
Le plus utilisé reste l’autoclave. Il s’agit d’une stérilisation par la vapeur d’eau. Après 30 minutes à 121°C, les
cellules végétatives et les spores ont été détruites. Les milieux de cultures et les contenants sont stérilisés de cette
façon. Seulement, certaines molécules ne supportent pas de fortes températures. Les sucres subissent la réaction de
Maillard et ne sont plus utilisables. Le glucose et les vitamines doivent être stérilisés avec un autre procédé.
ii- Filtration
Les substances thermolabiles et certains milieux de cultures sont filtrés grâce à des filtres épais, ou des
membranes filtrantes ayant des pores de 0,45 (levures) ou 0,22 µm (bactéries et levures).
iii- Les radiations
Les radiations ionisantes ou les UV détruisent les microorganismes en altérant leurs structures et leur ADN.
Les UV proches de 260 nm ne traversent pas le verre, ils sont utilisés pour stériliser des salles de culture, des PSM ou
pour stériliser l’eau en couche mince.
iv- Les hautes pressions
En milieu liquide est à des pressions de 1 à 10 KBars les cellules éclatent. Les bactéries Gram – sont plus
sensibles que les bactéries Gram + et les champignons. Les spores peuvent être détruites à 8 KBars. La durée du
traitement varie entre 10 et 30 minutes.
b- Méthodes chimiques
i- Les complexes phénoliques
Ils dénaturent les protéines et altèrent les membranes. Leur action dure longtemps après utilisation.
ii- Les alcools
Ils sont des bactéricides et des fongicides, mais n’ont aucune actions sur les spores. Les plus utilisés sont
l’éthanol et l’isopropanol. Ils sont utilisés à 70%, ce qui réduit la vitesse d’évaporation. Ils dénaturent les protéines et
solubilisent les membranes.
iii- Les halogènes
L’iode et le chlore sont utilisés. Ils oxydent les composants cellulaires. A forte concentration, l’iode peut
détruire quelques spores. Pas le chlore.
iv- Ammoniums quaternaires
Sous forme de détergents, ils détériorent les membranes et dénaturent les protéines. Ils sont utilisés comme
antiseptiques de la peau.

v- Les aldéhydes
Ils inactivent les protéines. Les plus utilisés sont le formaldéhyde et le glutaraldéhyde. Ils sont utilisés pour
désinfecter le matériel médical et le matériel de laboratoire.
4- Préparation des milieux de culture
a- Les prêts à l’emploi
 Les milieux conditionnés en boite de Pétri ou en tube. Cher et à utiliser rapidement.
 Les milieux non conditionnées, à passer aux micro-ondes et à couler. Conservable 3 à 4 mois.
b- Les milieux à préparer
Ce sont les milieux lyophilisés. Ils peuvent être conservés plusieurs années mais il faut les reconstituer, les
stériliser et enfin les couler.
II- La croissance microbienne
A- Méthodes de mesure de la biomasse
1- A partir de la masse totale de cellules
Mesure de la masse humide : après centrifugation on pèse le culot (rapide mais peu précis).
Mesure de la masse sèche : séchage au four à environ 100°C pendant 10 à 24h (plus long mais précis).
2- A partir du dosage chimique d’un composé cellulaire
Dosage de l’azote total (14% de la matière sèche) : la méthode de Kjeldahl consiste à minéraliser l’azote avec de
l’acide sulfurique pour donner de l’ammoniac que l’on dose par volumétrie.
Dosage des protéines : Lowry, Bradford, BCA et Biuret.
Dosage de la chlorophylle.
3- Par comptage direct des cellules
Au microscope avec cellule de comptage : si on ajoute du bleu de méthylène on peut différencier les vivantes.
Au microscope par cytométrie sur filtre : On filtre et on lave, on met de l’acridine orange : coloration rouge en
présence d’ARN (vivantes), et verte en présence d’ADN (mortes). On peut automatiser cette technique.
Par cytométrie de flux : les cellules sont marquées avec un marqueur de viabilité. Grâce au liquide de manchonnage
les cellules passent devant le lecteur qui compte les pulsations fluorescentes.
Par compteur de particules : Automate de cellules sanguines qui possède un orifice. Quand les cellules traversent il y
a une augmentation de la résistance (U=RI) donc la tension augmente.
4- Par dénombrement après culture
Sur milieu solide (consomme beaucoup de matériels et de temps, on peut ensemencer avec l’ensemenceur spiral)
ou en milieu liquide.
5- Par évaluation de l’activité totale
Par impédancemétrie : délais de détection plus court quand il a y plus de bactérie. Nécessite un étalonnage.
Par dosage de l’ATP : seulement en phase exponentiel sinon il n’y a pas de proportionnalité avec la biomasse.

Par mesure du pH : le pH diminue proportionnellement à l’augmentation de la biomasse.
6- Mesure du trouble : turbidimétrie et néphélémétrie.
Rayonnement transmis : turbidimétrie :   
  avec <1
Rayonnement diffusé : néphélémétrie :     
B- Phases caractéristiques d’une courbe de croissance lors d’une culture en milieu non renouvelé
1- Les courbes de croissance en milieu non renouvelé ont une allure caractéristique
Les différentes phases :
1. Phase de latence
2. Phase d’accélération
3. Phase exponentielle
4. Phase de ralentissement
5. Phase stationnaire
6. Phase de déclin
2- La phase de latence
C’est la phase dans laquelle les microorganismes s’adaptent à leur milieu de culture. Il n’y a pas d’augmentation du
nombre de cellules. La durée de cette phase est très variable. Si le milieu de pré-culture était le même que celui du
batch, cette phase peux ne pas être présente.
3- La phase exponentielle de croissance
La pente de la droite ln(N) = f(t) est µ, le taux de croissance népérien (h-1) :   
 ou   
 tg = temps que met la biomasse pour doubler (h)
4- La phase stationnaire
Les substrats sont en faibles concentrations, les inhibiteurs et déchets en fortes concentrations. Les bactéries
survivent sans proliférer (elles font des réserves et peuvent sporuler). Le métabolisme secondaire se met en place.
5- La phase de déclin
  : k est le taux de mortalité
C- Etude expérimentale de la phase exponentielle
1- Le modèle et les équations qui découlent
La biomasse dX produite pendant l’instant dt dépend de la biomasse X
présente à l’instant t. On considère que la croissance est un phénomène
autocatalytique :

2- Taux de croissance et taux de croissance népérien
Taux de croissance : masse de biomasse formée par unité de masse de biomasse présente par heure (g/g/h ou h-1).
Le taux de croissance népérien est la valeur maximale que prend le taux de croissance, c’est-à-dire pendant la phase
exponentielle.
D- Cinétique d’utilisation du substrat et de formation des produits
1- Cinétique d’utilisation du substrat et de production des produits
2- Métabolites primaires et secondaires
La phase de production de métabolites primaires est appelée trophophase, celle de production de métabolites
secondaires est appelée idiophase. Cela est dû à de nouvelles enzymes exprimées en fin de phase exponentielle.
3- Courbe de croissance biphasique : phénomène de diauxie
Il y a deux phases exponentielles successives séparées par une phase de latence
durant laquelle les bactéries synthétisent les enzymes nécessaires pour utiliser le
deuxième substrat.
E- Facteurs de concordance et caractéristiques de croissance
1- Facteurs de concordances
Ils permettent de déterminer la biomasse à partir de la densité optique : on va chercher à trouver la relation entre la
masse sèche et la densité optique. On va obtenir un facteur de concordance MS/DO (g/L/uDO).
2- Caractéristiques de croissance
a- Par rapport à la culture
 La vitesse de croissance : 
 (g/L/h).
On distingue la vitesse instantanée ou nette (entre t1 et t2), la vitesse moyenne ou globale (entre l’état initial
et l’état final) et la vitesse maximale (en fin de phase exponentielle).
Produit associé à
la croissance
primaires