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Fiches des méthodes d’observaon et de suivi - INSECTES DU SOL
Fiches des méthodes d’observation et de suivi
Pour les espèces citées ici, les dégâts sur les organes souterrains et collet sont occasionnés par les larves.
Coléoptères
Hannetons ou vers blancs (Scarabéidés)
Organismes polyphages sur tous types de végétaux.
→→Hanneton commun (Melolontha melolontha)
→→Grand hanneton de la Saint-Jean (Amphimallon solsalis)
→→Hanneton horcole (Phyllopertha horcola)
Organismes très polyphages sur tous types de végétaux, en parculier sur :
·Anemone
·Chrysanthemum
·Dahlia
·Dianthus
·Gladiolus
·Primula
→→Taupins des jardins (Athous haemorrhoidalis)
→→Taupin commun (Agriotes lineatus)
→→Hylobe du pin (Hylobius abies) / Abies, Larix, Picea, Pinus, Pseudotsuga
→→(Oorhynchus clavipes) / Acer, Forsythia, Ligustrum, Lonicera,
Rubus, Viburnum, Weigela
→→Oorhynque ovale (Oorhynchus ovatus) / Berberis, Picea, Rubus
→→Oorhynque du cyclamen (Oorhynchus rugosostriatus) / Aucuba, Begonia, Cornus, Crataegus, Cyclamen,
Euonymus, Hydrangea, Ligustrum, Lilium, Primula, Rosa, Syringa
→→Oorhynchus singularis / Azalea, Buddleja, Clemas, Hydrangea, Wisteria
→→    (Oorhynchus sulcatus) / Aster, Azalea, Begonia, Callistephus, Camellia,
Chamaecyparis, Convallaria, Cornus, Cotoneaster, Cunninghamia, Cyclamen, Euonymus, Hosta, Hydrangea,
Impaens, Lilium, Paeonia, Phlox, Primula, Prunus laurocerasus, Rhododendron, Rosa, Senecio, Thuja,
Viburnum, Wisteria
Diptères
Tipules (Tipulidés)
Organismes polyphages sur plantes herbacées.
→→Tipule des prairies (Tipula paludosa)
→→Tipule des jardins (Tipula oleracea)
Lépidoptères
Hépiales (Hépialidés)
→→Hépiale du houblon (Hepialus humili) / Anemone, Aster, Campanula, Chrysanthemum, Convallaria, Dahlia,
Delphinium, Gladiolus, Iris, Lupinus, Narcissus, Paeonia, Phlox
→→Pete hépiale du houblon, louvee (Korscheltellus lupinus) / Anemone, Aster, Campanula, Chrysanthemum,
Convallaria, Dahlia, Delphinium, Gladiolus, Iris, Lilium, Lupinus, Narcissus, Paeonia, Phlox
Noctuelles terricoles ou vers gris (Noctuidés)
→→Noctuelle de la pomme de terre (Hydraecia micacea) / Anthirrhinum, Chrysanthemum, Dahlia, Helianthus,
Iris

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Fiches des méthodes d’observaon et de suivi - INSECTES DU SOL
Fig. 1 : Larve de Melolontha sp. (4 cm)
Petr Kapitola, State Phytosanitary Administraon, Bugwood.org
Fig. 2 : Larve de taupin (2 cm)
David Cappaert, Michigan State University, Bugwood.org
Fig. 3 : Adulte d’Agriotes lineatus (8 mm)
Roger S Key, English Nature, Bugwood.org
 Les autres larves de hannetons ont une
morphologie et des couleurs similaires. Pour les photos
d’adultes cf. che ‘Coléoptères phytophages’.
 Les autres espèces de taupins ont une
morphologie et des couleurs similaires
Fig. 5 : Larve d’Hylobius abies
(5 mm)
Gyorgy Csoka, Hungary Forest Research
Instute, Bugwood.org
Fig. 4 : Larves d’Hylobius abies dans leur loge sur
racine de Pinus sylvestris
Petr Srutka, Czech University of Agriculture - Prague, Bugwood.org
Crédits : Gyorgy Csoka, Hungary Forest
Research Instute, Bugwood.org
Fig. 6 : Nymphe d’Hylobius
abies (8 mm)
 Pour les photos d’adultes cf. che
‘Insectes xylophages et foreurs.
Fig. 7 : Dégâts de larves d’Oorhynchus sulcatus
Jim Baker, North Carolina State University, Bugwood.org
Fig. 8 : Nymphe d’Oorhynchus sulcatus (8 mm)
Jim Baker, North Carolina State University, Bugwood.org
Peggy Greb, USDA Agricultural Research Service, Bugwood.org
Amandine Gourlay, Fredon Pays de la Loire
 Les autres stades larvaires d’oorhynque ont une
morphologie et des couleurs similaires.
Pour les photos d’adultes cf. che ‘Coléoptères phytophages’.

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Fiches des méthodes d’observaon et de suivi - INSECTES DU SOL
→→Noctuelle ancée (Noctua pronuba) / Anemone, Calendula, Chrysanthemum, Dahlia, Primula
→→Noctuelle des moissons (Scoa segetum) / Aster, Calendula, Callistephus, Chrysanthemum, Dahlia,
Delphinium, Dianthus, Pelargonium, Petunia, Phlox, Primula, Rosa, Zinnia
· L’unité de suivi, la parcelle, correspond à une combinaison site * espèce végétale.
· Le suivi est à eectuer de mars à octobre (pour les pules, le suivi peut s’interrompre de mi-juin à mi-août)
sur :
TAUPINS plantes herbacées (bulbes en parculier) et arbustes (sujets jeunes en parculier)
HANNETONS plantes herbacées
OTIORRHYNQUES tous types de végétaux (sujets jeunes en parculier pour arbres et arbustes)
TIPULES plantes herbacées (bulbes et graminées ornementales en parculier)
HEPIALES plantes herbacées et arbustes (sujets jeunes en parculier)
NOCTUELLES plantes herbacées
Si possible, réaliser , le même jour.
· Les végétaux observés seront les mêmes tout le long du suivi (mere un repère). Observer 10 plantes par
parcelle. Répares sur l’ensemble de la parcelle, elles seront choisies comme suit :
→·Massifs et bosquets :
→· 4 plantes en bordure de parcelle,
→· 3 plantes au cœur de la parcelle,
→· 3 plantes situées entre le bord et le cœur de la parcelle.
→·Haies et alignements : plantes placées à intervalle régulier.
Suivi standard
Le suivi est constué de 2 étapes :
→·
→·
PROTOCOLE
· Observer les plantes choisies et relever les informaons suivantes :
Noter la présence / absence de symptômes sur la
parcelle
Plantes rabougries, jaunies, fanées, se rompant au niveau
du collet pour les plantes molles
Organes souterrains rongés, creusés de galeries
·Symptômes présents sur au moins une plante :
Saisir « Présence »
·Symptômes absents de l’ensemble de la parcelle :
Ne pas renseigner la BDD
· Si des symptômes sont observés, rechercher des insectes :
Inspecter la surface du sol minueusement et/ou dégager le sol sur quelques cm.
Noter la présence / absence de coléoptères sur la parcelle
- Hannetons : larves charnues, à paes bien développées, incurvées,
blanchâtres à tête brune, à corps mou
- Taupins : larves liformes, jaune-orangé à tête brune, brillante et à
corps dur
- Oorrhynques : larves charnues, apodes, incurvées, blanchâtres à
tête brune, segments poilus
- Tipules : larves apodes, brun-gris à tête noire peu visible, ternes
- Hépiales : larves liformes, blanches à tête brune, translucides, à
fausses-paes abdominales, s’enfonçant rapidement dans le sol
- Noctuelles : larves brun-gris, portant des fausses-paes abdomi-
nales, s’enroulant au toucher
·Coléoptères présents sur au moins une
plante :
Saisir « Présence »
·Coléoptères absents de l’ensemble de la
parcelle :
Saisir « Absence »
 l’insecte observé Espèce (si possible)

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Fiches des méthodes d’observaon et de suivi - INSECTES DU SOL
Plante & Cité, Guérin M.
Fredon Pays de la Loire
Plante & Cité, Guérin M.
 Les autres espèces de pules ont une
morphologie et des couleurs similaires
Fig. 13 : Larve de noctuelle terricole (5 cm)
Mississippi State University Archive, Mississippi
State University, Bugwood.org
Fig. 14 : Larve de noctuelle terricole
Clemson University - USDA Cooperave
Extension Slide Series, Bugwood.org
Fig. 15 : Papillon de Noctua pronuba (6 cm)
Larry Line, Mostly Moths of Maryland, Bugwood.org
 Les autres espèces de noctuelles terricoles
ont une morphologie et des couleurs similaires

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Fiches des méthodes d’observaon et de suivi - INSECTES DU SOL
Suivi expert
A réserver aux parcelles connues pour être infestées, sur les végétaux les plus sensibles, à savoir :
·Anemone (anémone)
·Aster (aster)
·Azalea 
·Dahlia (dahlia)
·Gladiolus (glaïeul)
·Ligustrum (troène)
·Phlox (phlox)
·Primula (primevère)
Selon l’appréciaon de l’observateur, ce suivi peut également être envisagé pour d’autres plantes-hôtes.
Le suivi consiste à eectuer .
PROTOCOLE
· Eectuer les observaons suivantes :
Compter le  Nombre de plantes infestées
Evaluer l’importance des symptômes par rapport à En augmentaon / Stable /En diminuon
Noter les stades en présence sur la parcelle Absent / Larves / Nymphes / Adultes / Divers stades
Noter la présence / absence d’auxiliaires sur la
parcelle et leur type
Carabes / Autres / Absence
 l’insecte observé Espèce (si possible)
En cas d’observaon d’une espèce inhabituelle d’insecte du sol pour une plante-hôte donnée, il peut être
envisagé de réaliser la déterminaon spécique de l’insecte observé après accord de l’animateur-lière de la
région concernée. Pour les insectes du sol, l’idencaon se fait au choix sur larves ou adultes. Les procédures
standards d’envoi d’échanllon sont les suivantes :
Larves :
· Prélever les larves sur les organes aaqués.
· Les plonger dans l’eau bouillante quelques minutes.
Adultes :
· Prélever les individus, si possible mâle et femelle, sur les organes aaqués.
Dans tous les cas :
· Prélever au minimum une dizaine d’individus.
· Les placer dans un/des tube(s) rigide(s) rempli au maximum d’ à 70 %.
· Les envoyer dès que possible (moins de 2 semaines après les avoir prélevés).
 Pour plus de précisions (laboratoires à contacter, procédures d’envoi parculières …), consulter l’index « Envoi d’échanllon
pour idencaon ».