400 B. SALZGEBER & R. WEBER
total utilisee pour le test (activite specifique) soit a la quantite d'azote total de
l'organe (activite totale).
L'activite des cathepsines est determinee selon la methode colorimetrique
de Duspiva (1939) modifiee par Von Hahn & Herrmann (1962). A 50/^1 de
substrat, contenant 1% de caseine et 36% d'uree, ajuste a pH 5,0 par le
tampon Mcllvaine, on ajoute
10
y\ d'homogenat a 1,25 ou 2,5 %. Apres 2 heures
d'incubation a 37 °C, le melange est precipite par 60
jul
d'acide trichloracetique
10%
et conserve pendant 12 heures a basse temperature (0-4 °C). Apres centri-
fugation,
100 {A
de surnageant sont recueillis et traites par le reactif de Folin-
Ciocalteu; l'intensite de la couleur est mesuree au spectrophotometre Zeiss
PMQ II a 780 m/*. La concentration de substances 'Folin' positives a ete
determinee parallelement sur des echantillons temoins non incubes. En retran-
chant ces valeurs temoins des mesures d'extinction d'echantillons incubes, on
obtient la valeur d'extinction qui correspond reellement a l'activite enzymatique
de l'homogenat.
Pour le dosage de la phosphatase acide, nous avons suivi la methode decrite
par Weber & Niehus (1961).
30
fi\ de substrat, contenant 0,028 M de /?-glycero-
phosphate de sodium dans un tampon acetate a pH 5,0, sont incubes pendant
30min. a 37° avec 30
[A
d'homogenat a 0,5 et 1,0% en milieu hypotonique.
Le melange est ensuite precipite avec 60/*1 d'acide trichloracetique a 5%.
Apres centrifugation, on recueille
100
/d du surnageant. Les phosphates liberes
dans le surnageant sont doses d'apres la methode colorimetrique de Kuttner &
Cohen (1927). La mesure des valeurs d'extinction est effectuee a 710 m/i. Des
temoins non incubes ont servi a la determination de la teneur en phosphate libre
dans l'homogenat. Celle-ci sert de correction pour l'obtention des valeurs
d'extinction des echantillons incubes.
Les determinations d'enzymes ont ete realisees dans des conditions telles
que le phenomene de latence soit exclu, soit par l'utilisation d'un milieu hypo-
tonique (phosphatase acide) soit par l'emploi de forte concentration d'uree
provoquant une solubilisation des proteines (cathepsines).
Afin de comparer le degre de solubilisation des enzymes dans les tissus en
croissance et en regression (cf. p. 406) des fractionnements ont ete effectues
dans des conditions iso- et /*y/?otoniques.
L'azote total qui permet d'evaluer la teneur en tissus des homogenats est
dose selon une ultramicromethode de type Kjeldahl mise au point par Boell &
Shen (1954). Quelques dosages d'azote proteinique ont ete effectues selon la
methode de Von Hahn & Herrmann (1962).
(2) Techniques histochimiques
Les organes sont fixes pendant 16 heures a 0 °C dans une solution de formol
a 4% neutralisee avec CaCO3 en presence de saccharose a 10%. Apres lavage
dans l'eau courante, les pieces sont incluses dans du muscle de Rat et immediate-
ment congelees a l'azote liquide (15 a 20 secondes). Les sections effectuees au
cryostat (-10 °C) sont recueillies sur lamelles.