Utilisation et besoins en phylogénie en microbiologie clinique Pierre-Edouard Fournier Unité des Rickettsies CNRS UMR6020 Faculté de Médecine - Marseille Phylogénie en microbiologie clinique pourquoi? • Nécessaire pour la taxonomie et l’identification • Mise au point de méthodes de détection • Genomique: origine des genes (LGT) • Traitement: prédiction de la sensibilité aux anti-microbiens Phylogénie phénotypique Limites = peu discriminant, convergences Phylogénie moléculaire • Zuckerland and Pauling. Molecules as documents of evolutionary history. J Theor Biol. 1965;8:35766. • Fox et al. The phylogeny of prokaryotes. Science. 1980;209:457-63. Renouveau de la phylogénie des Bacteria Découverte des Archae Plus discriminant Plus fiable Familles Tribus Rickettsiaceae Rickettsieae Genres Espèces Protéobactéries Rickettsia tsutsugamushi Orientia tsutsugamushi prowazekii Rickettsia prowazekii rickettsii Rickettsia rickettsii Rochalimaea quintana Ehrlichia sennetsu Coxiella Neorickettsia helminthoeca burnetii 1 Wolbachia pipientis Ehrlichia Ehrlichieae Cowdria sennetsu Anaplasma phagocytophilum canis Anaplasma marginale phagocytophila Ehrlichia chaffeensis ruminantium Ehrlichia canis Neorickettsia helminthoeca Cowdria ruminantium Bartonella quintana Wolbachieae Bartonellaceae Wolbachia Bartonella pipientis Bartonella bacilliformis persica Brucella melitensis bacilliformis Coxiella burnetii Wolbachia persica Anaplasma Anaplasmataceae marginale Legionella pneumophila Haemobartonella sp. Eperythrozoon sp. Bacilles à gram positif à G+C% faible 2 Cibles moléculaires • ARNr 16S • gltA, rpoB, … • Core genes Les outils • • • • • Alignement ClustalW, T-Coffee Distance matrix DNADIST, PROTDIST NJ tree NEIGHBOR, ClustalW MP tree DNAPARS, PROTPARS ML tree DNAML, PROTML, fastDNAml • Bootstraping SEQBOOT, CONSENSE • Software packages: MEGA, PHYLIP, PAUP... Quand croire les arbres? • > 2 méthodes congruentes: distance + MP + ML • Valeurs de bootstrap élévées • Comparaison du ratio de noeuds validés par des bootstraps > 90% • Comparaison des phylogénies obtenues à partir de plusieurs gènes • Concaténation de gènes Utilisation en microbiologie clinique • Description de nouveaux taxons (organisation, distance phylogénique) • Nouvelles espèces, nouveaux genres R. conorii (AF123721) 79 79 R. rickettsii (X16353) 60 R. honei (AF123724) R. africae (AF123706) 50 87 R. parkeri (AF123717) 80 95 R. sibirica (AF123722) R. slovaca (AF123723) 99 R. japonica (AF123713) R. aeschlimannii (AF123705) 100 79 R. massiliae (AF123714) 100 R. rhipicephali (AF123719) 100 R. montanensis (AF123716) 93 R. helvetica (AF123725) 100 Rickettsia sp. strain IO-1 (DQ110870) Rickettsia sp. strain AT-1 (DQ113910) R. felis (AF210695) 100 100 R. australis (AF123709) R. akari (AF123707) 100 R. typhi (L04661) R. prowazekii (AF123718) Description de nouvelles bactéries Bactéries isolées et/ou caractérisées dans l’UMR6020 et maladies découvertes ABC AB AB Utilisation en microbiologie clinique • Mise au point de nouveaux outils diagnostiques • Amorces spécifiques de clusters de bactéries R. conorii (AF123721) 79 R. rickettsii (X16353) 79 R. honei (AF123724) 60 R. africae (AF123706) 50 87 R. parkeri (AF123717) 80 95 R. sibirica (AF123722) R. slovaca (AF123723) 99 R. japonica (AF123713) R. aeschlimannii (AF123705) 100 79 R. massiliae (AF123714) 100 R. rhipicephali (AF123719) 100 R. montanensis (AF123716) 93 R. helvetica (AF123725) 100 Rickettsia sp. strain IO-1 (DQ110870) Rickettsia sp. strain AT-1 (DQ113910) R. felis (AF210695) 100 100 R. australis (AF123709) R. akari (AF123707) 100 R. typhi (L04661) R. prowazekii (AF123718) Utilisation en microbiologie clinique • Genomique: origine des genes Arsenic resistance operon 1_837 3’’ partial ATPase 1_780 tnpM 1-703 1_17 1_16 tniA 1_819 1_817 Transposition trkA trxB helper putative thioredoxin monooxygenase reductase 1_779 1_73 intI integrase dfrI 1_163 1_699 IS1999 intI integrase 1_821 blaVEB-1 1_78 1_165 aadB arsH 1_88 1_81 qacE1 sulI cmlA 1_166 1_173 arr-2 1_816 cmlA5 1_814 arsB arsC 1_103 1_748 tetA tetR 1_176 1_179 blaOXA-10 aadA1 1_813 1_812 arsR 1_107 lysR 1_183 qacE1 1_808 1_811 arsC 1_732 1_196 1_59 1_62 strA strB truncated truncatedTn5393 -like transposon 1-710 recG Transposase aac6’ Transposase dfrX ORF513 sulI 1_718 1_126 Transposase- GroEL-integrase like protein fusion protein 1_194 1_52 1_44 lspA pbrR Heavy metal Transposase detoxificationprotein ISPpu12 – like transposon uspA 1_724 1_187 1_43 1_199 qacE1 1_203 1_207 1_633 sulI orf5 IS6100 Mercury resistance operon 1_213 1_627 1_624 1_622 1_621 1_615 TnpA urf2y merE merD merA merC 1_609 1_612 merP merT 1_244 merR 1_598 1_562 1_555 InsB (Tn1) IS15 IS26 1_314 1_318 1_528 Transposase Résolvase IS15 tetA tetR 1_588 1_275 pecM TnpA 1_277 1_319 1_522 1_326 1_516 IS26 aphA1 IS26 tnpM 1_513 1_569 ybjA cat 1_285 InsA (Tn1) IS1 - like transposon truncatedTn1721 - like transposon truncated Tn21 - like transposon 1_287 1_258 1_339 1_341 1_343 1_344 1_348 1_352 intI aac3 intégrase orfX orfX orfX’ aadDA1 qacE1 1_356 1_360 sulI orf5 1_365 Pseudomonassp. Pseudomonas sp. 1_366 Résolvase 1_467 trbI 1_465 1_376 1_377 lspA pbrR Heavymetal detoxificationprotein 1_386 Transposase ISPpu12-like -like transposon 1_442 sulI 1_434 5’-partial ’-partial ATPase Best Blast match with Salmonella sp. sp. E. coli Other bacteria Utilisation en microbiologie clinique • Prédiction de la sensibilité aux antibiotiques R. conorii (AF123721) 79 79 R. rickettsii (X16353) 60 R. honei (AF123724) R. africae (AF123706) 50 87 R. parkeri (AF123717) 80 95 R. sibirica (AF123722) R. slovaca (AF123723) 99 R. japonica (AF123713) R. aeschlimannii (AF123705) 100 79 R. massiliae (AF123714) 100 R. rhipicephali (AF123719) 100 Résistance À la rifampicine R. montanensis (AF123716) 93 R. helvetica (AF123725) 100 Rickettsia sp. strain IO-1 (DQ110870) Rickettsia sp. strain AT-1 (DQ113910) R. felis (AF210695) 100 100 R. australis (AF123709) R. akari (AF123707) 100 R. typhi (L04661) R. prowazekii (AF123718) Sensibilité aux macrolides Limites - Problèmes • Pas d`outil integre • Difficultés d’alignement, surtout en cas de séquences répétées => vérification manuelle • Difficulté de réaliser des analyses phylogéniques sur de grands nombres de séquences et/ou des séquences de grande taille, surtout si bootstraping Besoins en phylogénie • Ideal = outil omnipotent • Alignement fiable => analyses multiples => arbre Besoins en phylogénie • Outils d’alignement performants • Serveurs pouvant analyser rapidement des nombres élévés de séquences (> 100) de grande taille (> 4000 bp), notamment en ML Besoins en phylogénie • Outils permettant d’identifier dans un alignement à partir d’un arbre des séquences spécifiques d’un taxon ou d’un cluster A F B H I G C D E 90 Shigella 99 Escherichia Salmonella 75 Klebsiella 100 Number of genomes Number of species Serratia 88 84 Yersinia 100 Proteobacteria 60 44 Proteobacteria 18 16 Proteobacteria 30 25 Proteobacteria 5 5 Proteobacteria 6 4 Chlorobi 1 1 Chlamydiae 10 6 Spirochaetes 6 5 Cyanobacteria 11 8 Deferribacteres 0 0 Fibrobacteres 0 0 Chloroflexi 2 2 Bacteroidetes 4 3 Fusobacteria 1 1 Firmicutes 67 45 Actinobacteria 19 16 Nitrospira Nitrospirae 0 0 Acidobacter Acidobacteria 0 0 Verrucomicrobia 0 0 Planctomycetes 1 1 Dictyoglomi 0 0 Deinococcus-Thermus 2 1 Aquificae 1 1 Thermotoga 1 1 Vibrio Haemophilus 87 Acinetobacter Pseudomonas 64 100 Legionella 54 Stenotrophomonas 100 Minibacterium Neisseria 71 82 Bordetella 100 Burkholderia 58 Ralstonia 81 Rickettsia 86 7 Ehrlichia Brucella 99 Sphingomonas 94 Desulfovibrio 13 Campylobacter 26 Helicobacter 100 Wolinella 100 4 Et la phylogénomique ? Chlorobium Proteobacteria Pelobacter 21 Chlamydia 100 Parachlamydia Leptospira 22 Borrelia 66 Treponema 100 16 Anabaena 99 100 Prochlorococcus 39 Deferribacterales Fibrobacter 9 Dehalococcoides Bacteroides 22 Porphyromonas 100 9 Fusobacterium Mycoplasma 39 100 51 63 Streptococcus Enterococcus Lactobacillus Listeria 100 Bacillus 94 87 Staphylococcus Tropheryma Propionibacterium 100 Corynebacterium 42 Nocardia 99 87 43 Mycobacterium Verrucomicrobium 63 18 Rhodopirulella Dictyoglomus 29 Thermus 99 Aquifex 63 91 0.05 Thermotoga