Cinétique Enzymatique 1 BUT................................................................................................................................................. 2 2 INTRODUCTION ............................................................................................................................ 2 3 PARTIE EXPÉRIMENTALE ........................................................................................................... 4 4 MODE OPÉRATOIRE .................................................................................................................... 4 4.1 GRAPHIQUES............................................................................................................................ 6 4.1.1 4.1.2 5 Michaelis Menten .................................................................................. 6 Lineweaver Burk Plot ............................................................................ 7 CALCUL DES ERREURS EXPÉRIMENTALES............................................................................ 8 Aguilar Augusto Perrotti Luc Papaine.doc Page 1 sur 8 1 But Etude de la cinétique d'un réaction catalysée par une enzyme contenue de manière naturelle dans la papaie: la papaine 2 Introduction Une réaction catalysée par une enzyme E suit le mécanisme réactionnel suivant pour le substrat S : K2 K1 S + E ⇐------------⇒ ES ------------⇒ E + P K-1 La vitesse de formation du produit P est donnée par: V0=dIPI = K2 • lESl dt (A) L'hypothèse de l'état stationnaire pour ES conduit à dIESI = 0 et donc dt (B) K1 • lEl • lSl= ( K-1 • K2) • IESI En remplaçant B dans A : V0 = K1 K-1+K2 • K2 • IEI • lSl = K2 • lEI • lSI Km (C) La constante de Michaelis-Menten vaut : Km= K-1 + K2 et a pour unité : [M] K1 Expérimentalement seule la concentration totale en enzyme peut être Déterminée : lEtotl=IEI + lESl (D) En introduisant C dans D : l Etot l = l E l • (1+ Aguilar Augusto Perrotti Luc K1 K-1+ K2 • ISI) = I E I • (1+ ISI ) Km Papaine.doc Page 2 sur 8 La fraction libre en enzyme IE I vaut donc IE I = IEtotI • Km Km+ISI (E) La substitution de E dans C mène à l'équation: V0 = d lPl = K2 • l Etot l • ISI Dt Km+ISI (A) -La vitesse de formation du produit est proportionnelle à la concentration de l'enzyme mais elle dépend de la concentration en substrat de façon plus complexe. -Si Km<< I S I, V0= K2 • IEtotI = Vmax La vitesse est d'ordre zéro en substrat et ne dépend plus de sa concentration. Elle correspond à la vitesse maximale de la réaction enzymatique => Ce qui donne l'équation de Michaelis-Menten : V0=Vmax • I S I Km+ISI La représentation « Lineweaver-Burk plot »obtenue à partir de l'inverse de l'équation précédente correspond à une linéarisation de la relation entre Km et Vmax. 1 =1/ ( Vmax • I S I ) = Km • 1 + 1 Km+ISI Vmax ISI Vmax V0 Aguilar Augusto Perrotti Luc Papaine.doc Page 3 sur 8 A propos de la papaine C'est une protéase, une enzyme qui peut casser une liaison peptidique par hydrolyse. Elle se trouve dans la papaye et est utilisée dans nombreuses applications. (industrie de la bière, nettoyage des lentilles de contact) 3 Partie expérimentale Le substrat est la Nα-benzyl-arginine-p-nitroanilide (BAPNA), une arginine synthétique qui est une molécule plus simple qu'une protéine. Son hydrolyse va casser sa liaison amide et générer un produit de couleur jaune intense : la pnitroaniline. Puisque le substrat et le deuxième produit sont incolores, l'évolution de la réaction peut être étudiée grâce à l'absorption optique de la p-nitroaniline en fonction du temps. 4 Mode opératoire 5 solutions de concentrations différentes en BAPNA sont réalisées afin de réaliser un « Lineweaver-Burk plot ». Ici la relation C1 • V1 = C2 • V2 est utilisée. C1 = 0.02M et V2 = 5 [ml] Solution n° 5 [mI] (V2) de BAPNA C2 en [M] 1 0.003 2 0.005 3 0.008 4 0.012 5 0.016 V1 en [ml] de solution mère BAPNA 0.02[M] 0.75 1.25 2 3 4 L’appareil est calibré avec un blanc contenant 2.5 [ml] de solution d’enzyme tamponné à pH 6 qui permet de régler le zéro de l'absorbance à 400[nm]. La cuvette suivante contient comme le blanc plus 0.5 [ml] de solution n°1 qui sont ajoutés juste avant d'utiliser le spectromètre puisque la réaction commence dès la présence de substrat. L'absorption à 400[nm] est suivie pendant 5 minutes. Le contenu des éprouvettes est au préalable bien mélangé en les couvrant avec un parafilm de manière a obtenir un mélange homogène. L'expérience est répétée pour les solutions 2,3,4,5 ainsi que pour la solution mère de 0.02[M]. Aguilar Augusto Perrotti Luc Papaine.doc Page 4 sur 8 Résultats -Le pH de la solution de l'enzyme est égal à 6. -La température du laboratoire est de 22°C. -Le coefficient d'extinction molaire de la p-nitroaniline à 400[nm] est trouvé égale à Solution n° Conc. Conc. 1/Conc. BAPNA BAPNA BAPNA initiale M cuvette M cuvette M-1 1 2 3 4 5 Mère 0.003 0.005 0.008 0.012 0.016 0.02 5.00E-04 8.33E-04 1.33E-03 2.00E-03 2.67E-03 3.33E-03 2000 1200 750 500 375 300 Pente [A/min] 0.0102 0.0196 0.0314 0.0462 0.0577 0.0697 V0 [M/min] 1/V0 [min/M] 1/Conc. BAPNA cuvette M 1.020E-06 1.960E-06 3.140E-06 4.620E-06 5.770E-06 6.970E-06 9.804E+05 5.102E+05 3.185E+05 2.165E+05 1.733E+05 1.435E+05 2000 1200 750 500 375 300 - I BAPNA Icuvette=Vpris = 0.25 • l BAPNAIinitiale Vtotal exemple de calcul IBAPNAIcuvette pour la solution 1 : IBAPNAIcuvette= 0.5[ml] • 0.003 M = 5 • 10-4 M 3[ml] Pour chaque mesure de l'absorption en fonction du temps, la détermination de la pente permet de trouver la vitesse initiale V0 selon : pente dA => V0 = dA • 1 = pente dt dt εI εI A= ε • I • c l= 1 cm ε= 104AM-1cm-1 exemple de calcul pour la solution 1 : V0 = 0.0102 [Amin-1] / (104[AM-1cm-1] • 1[cm]) = 1.02 • 10-6 [M/min] Aguilar Augusto Perrotti Luc Papaine.doc Page 5 sur 8 4.1 Graphiques 4.1.1 Michaelis Menten Le graphique ci-dessous exprime la vitesse de réaction V0 en fonction de la concentration de substrat. Série1 Polynomial (Série1) Cinétique de Michaelis Menten 8.00E-06 y = -0.2078x2 + 0.0029x - 3E-07 R2 = 0.9995 7.00E-06 6.00E-06 V0 5.00E-06 4.00E-06 3.00E-06 2.00E-06 1.00E-06 0.00E+00 4.00E04 9.00E04 1.40E- 1.90E- 2.40E03 03 03 [BAPNA]cuvette 2.90E03 3.40E03 On devrait observer une forme plus marquée de 2ème degré ce qui n’est pas le cas dans ces concentrations. Aguilar Augusto Perrotti Luc Papaine.doc Page 6 sur 8 L'équation du graphe ci-dessous est : 1 = Km 1 + 1 V0 Vmax IBAPNAIcuvette Vmax Les points qui coupent les axes permettent de trouver les constantes de Michaelis-Menten : 4.1.2 Lineweaver Burk Plot Lineweaver Burk Plot Série1 Linéaire (Série1) 2000 y = 0.002x + 61.463 2 R = 0.9909 1/Vo 1500 1000 500 0 0.E+00 2.E+05 4.E+05 6.E+05 8.E+05 1.E+06 1.E+06 1/[BAPNA] y = 0.002x + 61.463 =0 ⇨ x=- 30269 -1/Km = -30269 ⇨ Km = 3.3 • 10-5 1/Vmax = 61.463 ⇨ Vmax = 1.63 10-2 Aguilar Augusto Perrotti Luc Papaine.doc Page 7 sur 8 5 Calcul des erreurs expérimentales L'erreur sur les concentrations dans les cuvettes provient de l'erreur commise sur la préparation des solutions initiales qui se calcule selon IBAPNA I initiale = Cmère • Vi Vf =>∆ IBAPNAI initiale = ∆ Cmère Vi + ∆ Vi Cmère + Cmère Vi (∆Vf = ∆ Vi+ ∆ Vrajouté ) Vf Vf Vf2 ou en sachant que Ln IBAPNAI initiale = Ln C mère + LnVi- LnVf ⇒% d' erreur = ∆ IBAPNAI initiale =∆C mère + ∆Vi + ∆ Vi +∆ Vrajouté IBAPNAI initiale C mère Vi Vf Ces deux démarches mathématiques donnent les mêmes valeurs pour ∆ IBAPNAI Tableau des résultats selon calcul ci-dessus : Cinitial Solution n° "+/-" Vi ∆Vi ∆ Vrajouté Vrajouté % en M en M 1 0.003 9.80E-05 2 0.005 0.008 0.012 0.016 2.10E-04 1.28E-04 1.52E-04 3.20E-04 3 4 5 [ml] 0.75 [ml] 0.02 [ml] 0.01 [ml] 4.25 1.25 0.04 0.01 3.75 2 3 4 0.02 0.02 0.04 0.01 0.01 0.01 3 2 1 d’erreur ⇨ Conc. BAPNA cuvette M 1.267% 2.000% 5.00E-04 8.33E-04 1.33E-03 2.00E-03 0.00267 ∆A = 9.8 * 10-5/(0.003)2 = 10.9 "+/-" M 9.80E-05 2.10E-04 1.28E-04 1.52E-04 3.20E-04 Aguilar Augusto Perrotti Luc ∆S S2 ∆S/S2 9.80E-05 2.10E-04 1.28E-04 1.52E-04 3.20E-04 2.50E-07 6.94E-07 1.78E-06 4.00E-06 7.11E-06 392.0 302.4 72.0 38.0 45.0 Papaine.doc 4.200% 1.600% Calcul d’erreur sur 1/[BAPNA] : ∆A = ∆S/S2 3.267% Page 8 sur 8