Pour l`hormone de stimulation thyroïdienne

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Le dépistage néonatal
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Nshimiyimana Hugues
Nom du promoteur : Dr. Hilde Laeremans
Institut Saint Joseph : 6ème technique de qualification chimiste 2015-2016
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Table de matières
1. Remerciement
2. Introduction
3. Le test Enzyme-Linked Immunosorbant Assay (ELISA)
3.1 Le test Enzyme-Linked Immunosorbant Assay indirect
3.2 Le test Enzyme-Linked Immunosorbant Assay direct
3.2.1 Enzyme-Linked Immunosorbant Assay sandwich
2.2.2 Enzyme-Linked Immunosorbant Assay par competition
4. L’analyse de l’hormone de stimulation thyroïdienne (TSH)
4.1 Contexte de l’analyse
4.2 Principe de l’analyse
5. Analyse de l’hormone 17α hydroxy progestérone (17 OHP)
5.1 Contexte et principe de l’analyse
5.2 Principe de l’analyse
6. Analyse de la trypsine
6.1 Contexte de l’analyse
6.2 Principe de l’analyse
7. Dosage d’activité enzymatique de la biotinidase dans le sang séché
7.1 Contexte de l’analyse
7.2 Explication de l’analyse
8. Partie technique
8.1 Le maintenance de l’Autodelfia
8.2 Le découpage
8.3 Cartes non conforme
2
8.4 Dosage de l’activité de l’enzyme de biotinidase (1er jour)
8.5 Dosage de l’activité de l’enzyme de biotinidase (2ème jour)
9. Interprétation des résultats
9.1 Test ELISA
9.2 Test colorimétrique
10. Résultats
10.1 Hormone de stimulation thyroïdienne
10.1.1 Contrôle interne et externe
10.1.2 Résultats élevés et Blood Spot Possibly Missing (BSPM)
10.1.3 Calcul de concentration (courbe standard)
10.2 Hormone 17α hydroxyprogestérone
10.2.1 Contrôle interne et externe
10.2.2 Résultats élevés et Blood Spot Possibly Missing
10.2.3 Calcul de concentration (courbe standard)
10.3 Enzyme de trypsine
10.3.1 Contrôle interne et externe
10.3.2 Résultats élevés et Blood Spot Possibly Missing
10.3.3 Calcul de concentration (courbe standard)
10.4 Enzyme biotinidase
10.4.1 Contrôle interne et externe
10.4.2 Résultats élevés et Blood Spot Possibly Missing
10.4.3 Calcul de concentration (courbe standard)
11. Discussions
11.1 Hormone de stimulation thyroïdienne
3
11.2 Hormone 17αhydroxyprogestérone
11.3 Enzyme de trypsine
11.4 Enzyme biotinidase
12. Conclusion
13. Références
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1. Remerciement
Je profite par le biais de ce rapport pour exprimer mes grands remerciements à
toutes les personnes liées de près ou de loin à l’élaboration de ce travail.
Je tiens tout d’abord à remercier mes professeurs, M. Fouad, Mme. Lecruivre
et particulièrement ma titulaire Mme. Laabidi pour m’avoir formé durant ces
deux dernières années et de m’avoir donné les outils permettant d’envisager
des études supérieures sans soucis.
Un tout grand merci à ma maitre de stage Mme. Laeremans, pour m’avoir
accueilli dans son laboratoire de pédiatrie. Je tiens à lui exprimer mes sincères
remerciements pour l’intérêt qu’elle m’a portée durant la période de stage et
après dans la construction de ce rapport.
Aussi, je présente ma plus grande reconnaissance à Fatima, la personne qui m’a
suivi durant toute la période de stage. Répondant à chacune de mes questions
et en ciblant mes principales lacunes de manière constructives. Un tout grand
merci au reste du personnel pour leur gentillesse et le respect en mon égard.
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2. Introduction
Le stage de fin d’année s’est passé du 29 février au 25 mars au laboratoire de
pédiatrie à l’ULB qui se trouve à Avenue J.J. Crocq, 15 1020 Bruxelles. Ce
laboratoire de biologie clinique travaille essentiellement sur les dépistages
néonatals.
Le rapport de stage se divisera en deux parties distinctes :
-
Test Enzyme-Linked Immunosorbant Assay (ELISA)
-
Test colorimétrique
Pour le test ELISA, le laboratoire utilise l’appareil Autodelfia. L’Autodelfia est
une machine qui permet de mesurer la fluorescence de certaines hormones et
enzymes dont :
-
L’hormone de stimulation thyroïdienne (TSH).
-
L’hormone 17-hydroxy progestérone (17OHP).
-
L’enzyme de trypsine (IRT).
Cette analyse se réalise sur base de sang séché de nouveaux nés sur du papier
buvard. Le découpage du sang séché se fait à l’aide de la machine qui
s’appelle, un Puncher. Les plaques sont spécifiques à chaque analyse. Le
découpage est une étape très importante qui demande une grande
concentration. En effet, l’erreur n’est pas autorisée car on ne peut pas se
tromper d’enfant, cela peut avoir de conséquences irréversibles.
Une deuxième analyse est basée sur le dosage de l’activité enzymatique de la
biotinidase. Il s’agit également d’un test dépistage néonatal. Cette analyse se
fait également sur base de sang séché. Le découpage du sang se réalise aussi à
l’aide de l’appareil Puncher dans les plaques.
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3. Le test Enzyme-Linked Immunosorbant Assay (ELISA)
Le test ELISA, test immuno enzymatique pris de l’anglais (Enzyme-Linked
Immunosorbant Assay) qu’on peut traduire (dosage immunoabsorption par
enzyme liée). C’est un test qu’on réalise en laboratoire qui a pour but de
mettre en évidence la présence d’anticorps ou d’antigènes spécifiques, propre
à la maladie qui seront marqué par une enzyme. Ce test a été découvert en
1971 par deux scientifiques suédois, Peter Perlmann et Eva Engvall1. Le principe
du test ELISA est d’utiliser les réactions antigènes et anticorps2 (complexe
immun) qui sera marqué par une enzyme qui sera au préalable lié à un
anticorps (l’anticorps secondaire) et qui marquera la fluorescence. Cette
technique présente plusieurs avantages comme :
L’utilisation d’anticorps monoclonaux3 mais pas seulement permette la
détection spécifique. En effet, l’utilisation des anticorps monoclonaux n’est pas
utilisée pour tous les types d’ELISA. Des anticorps monoclonaux sont des
anticorps qui ont été fabriqué par le même lymphocyte B. Ils présentent les
même caractéristique et peuvent reconnaitre ou pas le même épitope.
-
C’est une technique facilement réalisable.
Il existe deux types de test ELISA :
-
Le test ELISA indirect
-
Le test ELISA direct
3.1 Le test ELISA indirect
Ce test permet la détection d’anticorps. Les scientifiques utilisent
principalement cette technique pour le dépistage du syndrome
d’immunodéficience acquise (SIDA).
3.2 Le test ELISA direct
Ce test permet la détection d’antigène. Il existe deux types d’ELISA direct :
-
ELISA sandwich
-
ELISA par compétions
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3.2.1 ELISA sandwich
Il existe 5 étapes pour l’ELISA sandwich :
-
Un anticorps se trouve au fond de chaque puits.
Ajout des antigènes (pastilles de sang) qui vont se lier aux anticorps au
fond des puits. Le lavage de la plaque a pour but d’éliminer les antigènes qui ne
sont pas liés.
-
L’anticorps de détection va se lier spécifiquement à l’antigène.
L’anticorps secondaire lié à une enzyme est ajouté, il va se lier à
l’anticorps de détection.
-
Le temps d’incubation des plaques.
-
Mesure la fluorescence par la machine Autodelfia.
3.2.2 ELISA par compétition
Les scientifiques utilisent également cette technique pour détecter des
antigènes spécifiques. La technique se réalise également en plusieurs étapes :
-
Les anticorps sont fixés aux fonds de chaque puits de la plaque.
Mélange des antigènes à détecter et les antigènes qui sont marqués. Ces
deux anticorps rentrent en compétition.
Le rinçage de la plaque permet d’éliminer les antigènes non spécifiques
qui ne se sont pas fixé.
Mesure de la fluorescence. Mais contrairement au test ELISA sandwich ;
plus il y’a d’antigènes à doser qui sont retenus, plus la fluorescence et donc la
concentration sera faible. Si la fluorescence est faible, la concentration sera
élevée.
-
Le temps d’incubation des plaques est dépendant de l’analyse.
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4. L’analyse de l’hormone de stimulation thyroïdienne (TSH)
L’appareil Autodelfia permet de mesurer la fluorescence et c’est grâce à un
programme de calcul (MultiQual). La courbe de standard dans la quantité
d’hormone de stimulation thyroïdienne est connue dans le sang séché. Une
hormone est une substance chimique secrété par une glande endocrine
(exemples : le pancréas, glandes surrénales, ovaires, testicules,...). Ce sont des
molécules messagères.
Le but de cette analyse est réaliser le dépistage néonatal de l’hypothyroïdie
congénitale. L’hypothyroïdie congénitale est une anomalie de la thyroïde
(glande) qui ne produit pas ou pas en quantité suffisante d’hormone
thyroïdienne. Les sages-femmes prélèvent généralement le sang 3 jours après
la naissance du bébé qui sera ensuite analyser. L’hypothyroïdie congénitale est
responsable du crétinisme et du retard dans le développement psychomoteur
et de la croissance.
4.1 Contexte de l’analyse
L’hypothalamus qui est un organe du système nerveux possède deux rôles
importants :
-
Le contrôle des sécrétions d’hormones (système endocrinien)
-
Le contrôle de l'activité du système nerveux végétatif.
L’hypothalamus secrète une hormone, la Thyreotropin Releasing Hormone
(TRH) qui va accélérer la sécrétion de l’hormone de stimulation thyroïdienne
(TSH). Le TSH agit sur la thyroïde en régulant sa production d’hormones
thyroïdiennes T3 et T4. Ce sont ces hormones qui jouent sur la croissance et le
développement psychomoteur.
A la naissance le taux de TSH augmente durant les premiers jours puis se
stabilisent4. Si au contraire le nombre de TSH continue d’augmenter, c’est le
premier signe d’une hypothyroïdie congénitale. Il peut avoir plusieurs origines :
Une malformation durant le développement embryonnaire de la glande
thyroïdienne.
-
Un problème de la synthèse hormonale.
-
Plus rare, une absence de la thyroïde.
-
Mauvaise position de la thyroïde.
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4.2 Principe de l’analyse
Le principe de cette analyse repose sur la méthode immunologique de l’ELISAsandwich. Tout d’abord, 2 anticorps monoclonaux se dirigent contre 2
antigènes déterminants des molécules d’hormones de stimulation
thyroïdienne. Le premier anticorps qui se trouve au fond de chaque puits sur la
plaque se dirige vers la sous unité beta de l’TSH. Le deuxième anticorps qui lui
par rapport au premier anticorps est marqué par l’atome d’europium (Eu) se lie
aux deux sous unités alpha et beta pour s’assembler et former un complexe
immun stable.
Ensuite arrive l’enhancement solution qui lui, va libérer l’atome d’europium du
complexe immun et va transformer ce complexe en complexe chélate
fluorescent. Le rôle de l’Autodelfia est de mesuré la fluorescence dans chaque
puits. La fluorescence est proportionnelle à la concentration de TSH dans
l’échantillon.
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5. Analyse de l’hormone 17α hydroxyprogestérone (17 OHP)
5.1 Contexte et principe de l’analyse
L’appareil Autodelfia permet de mesurer la fluorescence et c’est grâce à un
programme de calcul (MultiQual) et la courbe standard que la quantité
l’hormone de 17 hydroxy progestérone est calculée dans le sang séché.
L’objectif de cette analyse est de réaliser de dépistage néonatal de
l’hyperplasie congénitale des surrénales (HCS). L’hyperplasie congénitale des
surrénales est une maladie d’ordre génétique qui agit sur les glandes surrénales
Ces glandes surrénales sont très importantes pour la synthèse de molécules.
Les principales causes de cette maladie sont dû à l’absence de certaine
enzymes comme :
21- hydroxylase qui est très importante dans la synthèse du cortisol. Le
cortisol est une hormone stéroïde qui est secrétée par les glandes surrénales
qui provient du cholestérol sous l’action d’andrénocorticotrophine (ACTH).
Une production déficiente de cortisol amène à la surproduction d’hormones
andrénocorticotrophine (ACTH) par l’hypophyse. L’hypophyse est une glande
endocrine. Cette glande se trouve à la base du crane dans une loge appelée
hypophysaire. Cette glande est liée à l’hypothalamus.
-
11 béta hydroxylase
-
17 hydroxylase
-
3 béta déshydrogénase
C’est à cause de ces absences, qu’il y’a une accumulation des hormones de
17OHP. En effet, lorsque l’enfant vient de naitre, les jours qui suivent, sont taux
de 17 hydroxyprogestérone diminue rapidement. Il est possible que le taux de
17OHP soit stable ou qu’il augmente dû à la surproduction d’hormones
andrénocorticotrophine (ACTH). A noter que cette maladie est responsable de
troubles de la maturation sexuel et de la croissance.
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5.2 Principe de l’analyse
Cette analyse se repose sur la méthode d’ELISA par compétions. L’antigène
17OHP présent dans le sang séché (papier buvard) entre en compétition avec
l’antigène 17OHP marqué par l’atome d’Europium pour se fixer au premier
anticorps. Maintenant, il existe deux complexes immuns stables (anticorpsantigène et anticorps-antigènes marqués), pour à la suite se lie au deuxième
anticorps.
Ensuite, la solution d’enhancement va séparer l’Europium des complexes et va
le rendre fluorescent par chélation. Contrairement à l’analyse de l’hormone
TSH, la fluorescence dans chaque puits est inversement proportionnelle au taux
de 17OHP dans l’échantillon.
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6. Analyse de la trypsine
L’appareil Autodelfia permet de mesurer la fluorescence et c’est grâce à un
programme de calcul (MultiQual) que la quantité d’enzyme de la trypsine
immunoréactive est connue. La trypsine est une enzyme digestive provenant
du suc pancréatique. Son but premier est de digérer les protéines. Cette
analyse nous permet de réaliser le dépistage néonatal de la mucoviscidose ou
fibrose kystique.
6.1 Contexte de l’analyse
La mucoviscidose ou la fibrose kystique est une maladie génétique, héréditaire
provoquée par une anomalie des gènes CFTR (Cystic Fibrosis Transmembrane
Conductance Regulatore) sur le chromosome 7. C’est la maladie la plus
fréquente dans les pays européens. En effet, cette maladie est très rare en Asie
et en Afrique.
Elle provoque un surplus de mucus dans plusieurs organes comme :
Les poumons, anomalie dans le fonctionnement épithélium des voies
respiratoires.
-
Le pancréas.
-
Les intestins
Les glandes sudoripares. Les glandes sudoripares sont des organes
spécialisés la sécrétion de sueurs et pour certaines hormones ou phéromones.
Les phéromones sont comparables aux hormones mais celles-ci sont secrétées
par des glandes exocrines. On peut également percevoir une odeur qui se
diffuse.
En général, le gène CFTR code pour une protéine de type canal à ion (Cl-) ; mais
si il y’a une malformation du gène cela entraîne la production d’une protéine
CFTR non fonctionnelle.
Selon une étude, les nouveaux nés qui sont atteints de la mucoviscidose ou
fibrose kystique présente un nombre important taux d’enzyme de trypsine
dans le sang.
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6.2 Principe de l’analyse
Comme pour l’hormone de stimulation thyroïdienne, l’analyse se base sur la
méthode immunologique d’ELISA sandwich. En effet deux anticorps
monoclonaux se dirigent vers deux antigènes déterminant de la molécule de
trypsine.
Le premier anticorps qui lui est absorbé dans les parois de chaque puits va se
diriger contre un ite spécifique de la molécule de trypsine. Tandis que le
deuxième anticorps qui lui est présent en phase liquide et marqué par l’atome
d’europium (Eu) va se dirige vers un autre site spécifique de la molécule de
trypsine. Cet ensemble formera un complexe immun stable, jusqu’à l’arrivé de
la solution d’enhancement qui va séparer les liaisons anticorps europium et
ions europium, ce qui formera un complexe immun fluorescent.
La machine mesure la fluorescence dans chaque puits. Comme pour l’analyse
de l’hormone de stimulation thyroïdienne, la fluorescence est proportionnelle
au taux de trypsine dans l’échantillon.
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7. Dosage d’activité enzymatique de la biotinidase dans le sang séché
Cette analyse nous permet de mesurer la quantité de l’activité enzymatique de
la biotinidase à partir du sang séché sur papier buvard. L’objectif de cette
analyse est de détecter si il y’a une déficience d’activité
7.1 Contexte de l’analyse
La biotinidase est une enzyme nécessaire pour le recyclage de la biotine. La
biotine est une vitamine H. Cette enzyme permet également la libération de la
biotine liée à d’autres molécules. La biotinidase rend donc disponible la biotine
dans l’organisme.
Le fonctionnement de la biotine ressemble à un groupe prosthétique. Un
groupe prosthétique est toute molécule organique non protéique qui est liée à
une protéine dans le but de la faire réagir. Composée de quatre carboxylases, la
carboxylase est une enzyme qui va déclencher une réaction de carboxylation.
En effet, elle va fixer le dioxyde de carbone (CO2) (qui est oxydé) en carbone
organique (qui est réduit). La carboxylase assure l’introduction du CO2 dans les
molécules, notamment dans la synthèse des protéines, des sucres, et des
acides gras.
Le déficit d’activité en biotinidase est un trouble métabolique héréditaire. Si
l’enfant présente un déficit de biotinidase, le métabolisme ne va pas pouvoir
recycler la biotine. Or la biotine est très importante car si l’enfant n’en a pas en
quantité suffisante, le sang devient acide et le cerveau cesse de fonctionner
normalement et cela peut provoquer dégâts neurologiques irréversible. Il
existe néanmoins d’autres symptômes comme :
-
Conjonctivite
Alopécie, une alopécie est le mot utilisé pour décrire une perte de
cheveux. La calvitie est la forme la plus courante d’alopécie.
-
Trouble d’équilibre
-
Eruption cutanée
-
Retard développemental
Dans certains cas, ces symptômes peuvent provoquer la mort de l’individu. Il
existe cependant des traitements qui consistent à simplement avaler un
comprimé de biotine.
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7.2 Explication de l’analyse
Le principe de cette analyse repose sur un test colorimétrique de différentes
solutions. Voir le point (7.4 et 7.5)
8. Taches
8.1 Le maintenance de l’Autodelfia
Le travail consistait à la maintenance de l’appareil Autodelfia qui nécessite
plusieurs étapes :
-
Déchargement des plaques dans l’Autodelfia.
-
Retirer les embouts (Tips), les réservoirs de dilution et en remettre.
-
Vider le réservoir poubelle.
Remplir le réservoir Wash avec de l’eau déminéralisée et la solution
Wash concentrate. Important de savoir qu’une bouteille de solution Wash
(250mL) correspond pour un volume de 6L d’eau déminéralisée. L’utilité de
cette solution est de nettoyer les puits, enlever les antigènes et anticorps qui
ne se sont pas liés.
Remplir le réservoir Rince uniquement avec de l’eau déminéralisée. La
solution rince est lui utilisée dans le but d’éviter que la solution Wash se
cristallise et bloque l’aguille.
-
Mettre la solution enhancement.
Effectuer le test du laveur, c’est un test réalisé tous les jours avant de
lancer la machine. Ce test permet d’être sûr que la machine remplisse et aspire
bien chaque puits et que les températures et pressions sont bons.
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8.2 Le découpage
Le découpage du sang séché des nouveaux nés sur papier buvard à l’aide de
l’appareil Puncher est une étape qui demande une grande concentration. Pour
la découpe, il y’a un ordre exact et il est très important d’avoir des feuilles avec
l’information sur le découpage qui permettent de savoir l’emplacement des
contrôles et standards :
Pour mesurer la quantité d’hormone de TSH, commencé par découper
les cartes néerlandophones ensuite découper les cartes contrôles. Et pour finir
terminer par les cartes francophones. Suivre les listes de travailles.
En ce qui concerne l’analyse d’hormones 17 OHP, commencé également
par découper les cartes néerlandophones, puis les cartes contrôles et pour finir
certaines des cartes francophones. Suivre les listes de travailles
Pour mesurer la quantité d’enzyme de trypsine, commencé directement
par les cartes contrôles et après des cartes francophones. Suivre les listes de
travailles
Pour toutes les analyses faites par l’Autodelfia, ne pas oublier
d’incorporer les standards et les contrôles, les contrôles sont des pastilles de
sang qui nous permet de voir si l’analyse a bien été effectuée.
-
Pas oublier d’incorporer les cartes à refaire s’il y en a.
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8.3 Cartes non conforme
Une carte conforme est une carte dans lequel le sang prélevé par la sagefemme s’est correctement étalé sur tous les cercles du papier buvard.
Malheureusement, il est possible de trouver des cartes non conformes et cela
pour plusieurs raisons :
-
Surchargement de sang sur le papier buvard.
A l’inverse, il est possible qu’il n’y ait pas suffisamment de sang sur le
papier buvard, le sang n’est pas bien transverse
Après la découpe de tous les échantillons de sang sur les différentes plaques :
-
Déposer les plaques les unes après les autres selon l’ordre indiqué.
Effectuer toutes les étapes (remplir les réservoirs de rinces, de Wash
avec un volume demandé, …).
A la suite de cela, le lancement de la machine Autodelfia peut se faire :
L’Autodelfia réalisera les deux tests ELISA direct, le test ELISA sandwich
pour l’analyse des hormones de stimulation thyroïdienne et pour les enzymes
de trypsines. Le test ELISA par compétition pour l’analyse des hormones 17
hydroxyprogestérone.
L’Autodelfia mesurera la fluorescence dans chaque puits de toutes les
plaques. A l’aide d’un programme de calculs (MultiQual) et des échantillons
standards, l’ordinateur pourra calculer la concentration des hormones ou
enzymes.
A la fin de toutes les analyses les feuilles avec tous les résultats sortiront
de l’imprimante et pourront être interpréter.
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8.4 Dosage de l’activité de l’enzyme de biotinidase (1er jour)
L’explication de cette analyse se divise en deux jours.
Le premier jour, le plus gros du travail reste le découpage des échantillons de
sang séché. Pour le découpage, il existe deux dispositions de plaques :
1. Plaque 30-60 : Les 30 premières cartes de sangs occupent les puits A1
à C6. Tandis que les 60 suivantes occupent les puits D1 à H12.
2. Plaque 60-30 : les 60 premières cartes de sang occupent les puits A1 à
E12. Tandis que les 30 suivantes occupent les puits F1 à H6.
Dans la première plaque, l’ajout des standards se met aux puits C7, C8, C9.
Dans la deuxième plaque, l’ajout des standards se met aux puits H7, H8, H9. Le
choix du standard se porte sur les patients connus sans déficience en
biotinidase. Le choix de ce standard s’est décidé car il est considéré comme
ayant 100% d’activité enzymatique de biotinidase et ce standard n’a pas la
pathologie de la déficience en vitamine B12 (acidurie propionique-acidurie
méthyl malonique). Il existe 3 types de standard :
-
Le standard 100%, celui décrit
-
Le standard 50%, le même mais après avoir subi une dilution.
-
Le standard 0%
Après avoir découper tous les échantillons de sang et ajouter les standards.
Ensuite ajouter 50µL de solution tampon phosphate dans chaque puits. Il faut
recouvrir ces plaques de papier filtre puis les placer dans une centrifugeuse. La
centrifugeuse permet d’éliminer les protéines du mélange réactionnel dans le
but d’éviter les effets d’hémoglobines.
A la suite de cela, placer les plaques dans l’incubateur à 37 degrés Celsius
durant 16-20 heures. Le temps d’incubation joue un rôle important dans le
développement des couleurs. Important que la température de l’incubateur
soit égale à 37 degrés, cette température doit correspondre à la température
du corps humain. Durant le temps d’incubation la biotinidase recycle la biotine.
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8.5 Dosage de l’activité de l’enzyme de biotinidase (2ème jour)
Le deuxième jour, réaliser le test colorimétrique :
-
Avant tout, préparer la solution de nitrite de sodium (NaNO2).
-
Ressortir les plaques de l’incubateur.
Ajouter 50 µL d’acide trichloracétique (TCA), dans chaque puits, ensuite
attendre 10 minutes. L’ajout du TCA permet de stopper, d’arrêter toute
réaction enzymatique.
Prendre une nouvelle plaque, noter les coordonnées de la plaque
contenant les échantillons.
Transférer 50µL du surnageant de chaque dans l’autre plaque. Pour le
puits standard 50 (C8 ouH8) prélevez 25µL pour réaliser la dilution.
Ajouter 50µL de la solution préparée, nitrite de sodium dans chaque
puits et attendre 3 minutes. Cette solution permet le développement de la
coloration.
Ajouter 50µL de sulfamate d’ammonium (H6N2O3S) dans chaque puits,
attendre 3 minutes. Cette solution permet également le développement de la
coloration.
Pour finir, ajoutez 50µL de N-1-naphtylethylènediamine dihydrochloride
dans chaque puits et attendre 10 minutes. C’est cette solution qui marquera la
coloration pourpre caractéristique de la présence d’activité de biotinidase
dans chaque puits.
Attendre 10 minutes et placer la plaque dans le colorimètre. Le
colorimètre mesurera la coloration dans chaque puits et grâce à un programme
de calcul et la courbe d’étalonnage, le pourcentage d’activité enzymatique de
biotinidase dans chaque puits est calculé. Plus il y’aura présence d’activité en
biotinidase, plus la couleur dans le puits sera foncée.
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9. Interprétation des résultats
9.1 Test ELISA
Les interprétations des résultats sont différentes selon l’hormone et enzyme
recherché.
Pour l’hormone de stimulation thyroïdienne (1er dosage) :
Si la concentration de TSH est inférieure à 15µU/ml, le résultat est
négatif. Pas d’action à entreprendre.
Si la concentration de TSH est entre 15 et 25 µU/ml, le résultat est
douteux. Refaire trois fois dans la même série.
Si la concentration de TSH est égale ou supérieure à 25 µU/ml, le résultat
est positif. Informer le responsable du laboratoire et refaire trois fois dans la
même série.
Pour l’hormone de stimulation thyroïdienne (carte de contrôle) :
Si les trois résultats sont de nouveaux positifs. Informer le chef de
laboratoire.
Si les résultats ne sont pas tous positifs, il s’agit toujours d’un résultat
douteux. La décision est prise par la responsable du laboratoire.
Pour l’hormone de stimulation thyroïdienne (carte de contrôle, 2ème dosage) :
Si le résultat de la concentration de TSH est inférieur à 10µU/ml , le
résultat est négatif, ne rien faire.
Si la concentration de TSH est supérieure ou égale à 10 µU/ml, le résultat
est positif. Informer le chef de laboratoire et refaire trois fois.
Pour l’hormone 17 hydroxyprogestérone
Cela est différent pour l’hormone 17 OHP, cela dépend du nombre de semaine
la mère était enceinte et du poids du bébé à la naissance.
Le résultat est positifs si :
Si le nouveau-né est né avant 33 semaines de gestation et que ça valeur
(concentration) est supérieure ou égale à 200nmol/L
Si le nouveau-né est né entre 33.1 et 35 semaines et que sa valeur est
supérieure ou égale à 105nmol/L
21
Si l’enfant est né entre 35.1 et 36 semaines et que sa valeur est
supérieure ou égale à 55nmol/L
Si l’enfant est né après 36.1 semaine de gestation et que sa valeur est
supérieure ou égale à 25nmol/L.
Le résultat est également positifs si :
Si le nouveau-né pèse à sa naissance moins de 2100 g et si sa valeur est
supérieure à 105nmol/L.
Si le nouveau-né pèse à sa naissance entre 2101 et 2500 g et si sa valeur
est supérieure à 55nmol/L.
Si le nouveau-né pèse à sa naissance entre 2501 et 2700 g et si sa valeur
est supérieure à 25nmol/L
Si le nouveau-né pèse à sa naissance plus de 2700 g et si sa valeur est
supérieure à 25 nmol/L.
Pour l’enzyme de trypsine (1er dosage) :
Si la concentration d’IRT est inférieure à 70ng/ml, le résultat est négatif.
Rien à faire.
Si la concentration d’IRT est supérieure ou égale à 70ng/ml, le résultat
est positif. Informer le chef de laboratoire et refaire 1 fois.
Pour l’enzyme de trypsine (2ème dosage) :
Si la concentration est toujours positive. Informer le responsable de
laboratoire.
Si la concentration change et devient négative. Le résultat devient
douteux et la décision revient au responsable de laboratoire.
Pour l’enzyme de trypsine (carte de contrôle, 2ème dosage) :
Si le résultat de la concentration est inférieure 60ng/ml, le résultat est
négatif. Ne rien faire.
Si le résultat de la concentration est supérieur ou égale à 60ng/ml, le
résultat est positif. Informer le chef de laboratoire et refaire 1 fois
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9.2 Test colorimétrique
Il existe 3 types de patients :
Si le patient possède un pourcentage inférieur à 3%, il est positif, il est
nécessaire d’avertir le responsable de laboratoire et refaire le test 3 fois.
Si le patient possède un pourcentage égal ou entre 3 et 30%, il entre les
deux. C’est pourquoi il est nécessaire de refaire 3 fois ce test et d’avertir le chef
du laboratoire.
Si le patient possède un pourcentage égal ou supérieur à 30%, le patient
est négatif donc en bonne santé. Inutile d’avertir le chef de laboratoire.
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10. Résultats
Avant de détailler les résultats, il est important de faire la description de
chaque page. (Voir annexes)
Page 1 : La page 1 est consacrée aux concentrations des échantillons standards.
Page 2 : Sur la page 2, présence de la courbe standard. En fonction des
fluorescences et des concentrations de ses échantillons standards. « Iterations
» veut dire le nombre de fois que le programme de calcul a pris pour réaliser la
courbe. Ensuite, il y’a la liste du jour qui montre la concentration d’hormones
ou d’enzymes de chaque patients. Regarder la colonne « PAT ». A la fin de la
liste du jour, il y’a le point « samples » qui montre si les valeurs des échantillons
contrôles basses et moyennes sont comprises dans les valeurs cibles. Pour finir
il y’a différent graphiques consacrés aux échantillons contrôles.
10.1 Hormone de stimulation thyroïdienne
10.1.1 Contrôles internes et externes
Les concentrations des échantillons contrôles (Médium) sont beaucoup plus
élevés que leurs valeurs cibles 25, 73, 169. Cela dépend du lot, ce n’est pas
toujours le cas. Pour les échantillons standards, les concentrations sont
bonnes. (Voir Annexe 1)
10.1.2 Résultats élevés et Blood Spot Possibly Missing (BSPM).
Les résultats élevés se trouvent dans les échantillons 64,89, et 141. Ce jour-là,
pas de résultats blood spot possibly missing (BSPM) pour cette analyse. Si les
résultats sont BSPM cela veut dire que la tache de sang est peut être
manquante.
10.1.3 Calcul de concentrations (Courbe standard)
Pour le calcul de la concentration d’hormone de TSH, il est nécessaire d’avoir
les échantillons standards de TSH. Les échantillons standards sont des pastilles
de sang séché sur papier buvard avec des concentrations connues et
différentes. Dans le graphique, l’axe des ordonnées sera l’axe de la
fluorescence et l’axe des abscisses sera l’axe de la concentration dont l’unité
sera µU/mL.
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10.2 Hormone 17α hydroxyprogestérone
10.2.1 Contrôles internes et externes
Les concentrations des échantillons contrôles sont comprises dans les valeurs
cibles. Pour les échantillons standards, les concentrations sont bonnes.
10.2.2 Résultats élevés et Blood spot possibly missing (BSPM).
Les résultats élevés se trouvent dans les échantillons 10 ,11 ,96 ,98 ,137 ,140
,156 ,189 ,190 ,191 et 217. Les résultats BSPM se trouvent dans les échantillons
56, 59, 140, 161, 162 et 186. Ces résultats sont uniquement valables pour cette
journée. Les résultats changent tous les jours. (Voir annexes 2).
10.2.3 Calcul de concentration (courbe standard)
Pour le calcul de la concentration des hormones de 17 OHP, il est nécessaire
d’avoir les standards 17 OHP, ce sont des pastilles de sang séché sur papier
buvard dont on connaît la concentration. Elles sont importantes car elles vont
représenter la courbe dans le graphique et l’axe des ordonnées sera l’axe de la
fluorescence et l’axe des abscisses sera l’axe de la concentration dont l’unité
sera nmol/L.
10.3 Enzyme de trypsine
10.3.1 Les contrôles internes et externes
Les concentrations des échantillons contrôles sont comprises dans les valeurs
cibles. Pour les échantillons standards, les concentrations sont bonnes. (Voir
annexe 3).
10.3.2 Résultats élevés et Blood spot possibly missing (BSPM)
Ce jour-là, il n’y avait pas de résultat élevé ni de BSPM.
10.3.3 Calcul de concentration
Pour le calcul de la concentration d’hormone IRT, il est nécessaire d’avoir la
fluorescence et d’avoir les standards IRT. Elles sont importantes car elles vont
représenter la courbe. Dans le graphique, l’axe des ordonnées sera l’axe de la
fluorescence et l’axe des abscisses sera l’axe de la concentration dont l’unité
sera ng/mL.
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10.4 Enzyme de biotinidase
La feuilles des résultats se présente différemment que les autres. En effet, il n’y
a que les échantillons standards qui sont utilisés. Le graphuique est lui aussi
différent, sur l’axe des ordonnées il y a la coloration et sur l’axe des abscisses
les concentrations.
10.4.1 Contrôles des standards
Les échantillons standards sont bien réalisés car les concentrations sont
bonnes.
10.4.2 Le graphique
La courbe du graphique touche bien les points des échantillons standards. (Voir
annexe 4)
11. Discussions
11.1 Hormone de stimulation thyroïdienne
Lors de cette journée, les concentrations des échantillons contrôles étaient très
élevées. Cela a dû être possible à cause d’un mauvais découpage et ou d’un
mauvais choix de carte de contrôle. La courbe standard ne passe pas par tous
les points. Le graphique a dû être refait cinq fois (ITERATIONS). Un peu plus de
concentration et de rigueur pour obtenir meilleur résultats. De manière
générale, les résultats étaient différents chaque jour, ce qui est normal vu que
ce sont des échantillons provenant de nouveaux nés différents.
11.2 Hormone 17α hydroxyprogestérone
Lors de cette journée, les concentrations des échantillons contrôles sont
comprises dans les valeurs cibles. En ce qui concerne la courbe standard, les
passe bien par tous les points standards. La courbe est décroissante ce qui est
normal. La courbe a été refaite quatre fois (ITERATIONS) avant la version finale.
Dans cette analyse, il y a présence de blood spot possibly missing. Cela est
surement dû à un mauvais découpage ou la carte n’était pas conforme. Etre
plus assidu au travail. De manière général, les résultats n’étaient jamais les
mêmes.
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11.3 Enzyme de trypsine
Lors de cette journée, les concentrations des échantillons contrôles sont
comprises dans les valeurs cibles. Tandis que sur la courbe standard, seul un
point n’est pas touché par la courbe. La courbe a été refaite deux fois
(ITERATIONS). Ce jour-là, il n’y avait pas de résultats élevés ni de BSPM.
Présence de C.D.C (Center of Disease Control). Lors du stage, l’utilisation des
C.D.C ne se faisait que le lundi. Les C.D.C sont spécifiques selon le type de
d’hormones ou d’enzymes analysés. Il existe également différents types de
C.D.C mais celui utilisé était le (QC C.D.C) contrôle externe. Comme
précédemment, de manière général les résultats n’étaient jamais les mêmes.
11.4 Enzyme de biotinidase
Les valeurs des échantillons sont bonnes. Le graphique est correct. De manière
générale, il a fallu plusieurs jours de manipulation pour obtenir des aussi bons
résultats. Il faut être précis, rapide et méthodique pour réaliser ce test.
12. Conclusion
Les dépistages néonatals sont très importants. En effet, ces tests peuvent
prévenir des maladies à laquelle les nouveaux nés sont atteints. Cela permet un
suivi et un traitement le plus rapidement possible pour la bonne santé du bébé.
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13. Reference
1. http://www.technobio.fr/article-18589062.html
2. http://www.technobio.fr/article-18589062.html
3. http://www.technobio.fr/article-18589062.html
4. Perez-Martin A. (2006) : Physiologie de la glande thyroïdienne. Cours du
département de Physiologie, Nîmes.
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