Rôle de l’inhibition des HDACs classe II dans des modèles de différentiation et
de cancer
Les HDACs humains consistent en une famille de 18 membres différents groupés dans
quatre classes. Classe I (HDAC 1-3.8), classe II (HDAC4-7, 9,10 dont HDAC4, 5, 7 et 9
forment un sous-groupe dû à une organisation structurale commune, alors que HDAC6 est
membre de classe IIb), classe III, également désignée sous le nom des sirtuines (SIRT1-7)
et classe IV (HDAC11). Les classes I, II et IV partagent des caractéristiques communes,
car tous leurs membres sont zinc-dépendants et montrent quelques similitudes de
séquence, alors que dans la classe III HDACs il s’agit d’enzymes NAD+-dépendant sans
homologie aux autres HDACs. Les pan-inhibiteurs tels que SAHA, qui est actuellement
dans des essais cliniques en phase III et a été récemment approuvé pour le traitement du
lymphome à cellule T cutané, bloquent les enzymes de classes I et II, alors que le MS275
est un inhibiteur sélectif de la sous-classe I et bloque les activités de HDAC 1, 2 et
beaucoup moins efficacement HDAC 3. Des inhibiteurs sélectifs de la classe II ont été
également produits, permettant ainsi la dissection des diverses activités de HDACs.
Notamment, alors que l'induction de TRAIL semble être associée à l'inhibition des
enzymes de la classe I dans les systèmes cancéreux, d'autres fonctions cellulaires
dépendent de l'action des HDCAs classe II, comme la régulation de la différentiation,
principalement la différentiation cardiaque.
HDACis dans des systèmes de différentiation : C2C12 cellules, F9 cellules, cellules
3T3L1.
Nous avons examiné MC1568, un nouvel inhibiteur des HDACs, spécifique pour la classe
II, dans un modèle leucémique, les cellules U937, et divers systèmes de différentiation,
tels que les cellules C2C12 pour la différentiation de muscle, les cellules F9 pour la
différentiation endodermale et les cellules 3t3L1 pour la différentiation des adypocytes.
De façon intéressante, nous avons constaté que dans les cellules C2C12 l'inhibiteur des
HDAC classe 2 bloque l'action catalytique de la classe 2 de HDAC, mais stabilise
l'interraction entre le facteur transcriptionnel MEF2D et HDAC4. MEF2D est le principal
facteur transcriptionnel, responsable de la différentiation terminale de muscle, et par
conséquent l’inhibition de son activité transcriptionnel bloque la différentiation du muscle.
D'une manière semblable, dans les deux autres systèmes nous avons évalué l'inhibition de
la différentiation et nous avons trouvé que l’activité transcriptionnelle de RAR et PPARγ,
essentiels pour la différentiation des deux systèmes respectivement, a été bloqué in vitro
dans le premier cas et in vivo dans le deuxième cas. Dans le cas de la différentiation
induite par PPARγ, on a utilisé le système des cellules 3T3L1. Le traitement de ces
cellules avec Troglitazone induit la différentiation d'adypocytes, alors que la présence du
MC1568 le bloque complètement. En analysant le niveau de l'expression de PPARγ pour
RT-PCR, nous avons constaté que son niveau a été fortement diminué après traitement
avec MC1568. De façon intéressante, le traitement d'une souris exprimant stablement le
gène de la luciferase sous le contrôle de l’élément de réponse de PPAR (PPRE-Luc), a