Nom de l’organisme bénéficiaire : ADEREM Nom de l’unité ayant effectué les travaux : UPRES 3287, « pathologies respiratoires liées à l’environnement » Adresse de l’unité : Faculté de Médecine, 27, Bd Jean Moulin, 13385 Marseille cedex 5 Responsable des travaux : Pr Antoine MAGNAN Téléphone : 04.91.74.46.30 14 décembre 2005 Programme PRIMEQUAL 2/ PREDIT « Etude de l’influence des particules diesel sur l’activation des lymphocytes T chez l’asthmatique» Rapport final « Impact of diesel exhaust particulate matter on Allergic Asthmatic T lymphocytes» Final report Emilie MAMESSIER, Antoine MAGNAN N° de contrat ADEME N° 02 62 039 Date du contrat : 23/12/2002 Durée du contrat : Du 23/12/2002 au 23/06/2005 Nom du responsable ADEME : Christian Elichegaray Confidentialité X Non Oui durée Renforcée Ces travaux font-ils suite à d’autres travaux financés dans le cadre des programmes PRIMEQUAL/PREDIT ou PRIMEQUAL2/ PREDIT ? Non 1 Table des matières Résumé court 3 Résumé long 4 Note de synthèse 7 Introduction 7 Matériel et Méthodes 7 Patients 7 Particules diesel 8 Culture cellulaire et cytométrie de flux 8 Expectoration induite 9 Statistiques 9 Résultats 10 Marqueurs de surface 10 Production de cytokines 10 Prolifération 11 Discussion 12 Bibliographie 14 Tableaux 16 Légende des figures 18 Figures 19 Degré d’atteinte des objectifs 24 Difficultés rencontrées 24 Mots clés 24 Abréviations : 24 2 Résumé court La prévalence de l’asthme continue d’augmenter dans les pays industrialisés. Parmi les facteurs responsables du déclenchement des exacerbations, les polluants atmosphériques et notamment les particules diesel ont été incriminés. Dans cette étude, nous avons étudié l’impact des particules diesel sur l’activation des lymphocytes T, essentiels à l’inflammation de l’asthmatique. Trente-deux prélèvements ont été étudiés chez 27 asthmatiques sévères, 13 lors d’une exacerbation et 19 à distance, et 14 volontaires sains ont été inclus. L’expression des marqueurs membranaires CD69 et CD25 et la production d’IL-4 et d’IFN- par les lymphocytes T ont été étudiées en cytométrie de flux. La prolifération des lymphocytes T a été étudiée par l’incorporation du PKH 26. Les expériences ont été réalisées dans le sang, avant et après stimulation par les particules diesel. L’expression de CD69 est diminuée chez l’asthmatique sévère. L’expression de ce marqueur augmente après stimulation par les particules diesel, de façon plus importante chez l’asthmatique, notamment en exacerbation. La production de cytokines Th1 et Th2 augmente seulement chez les asthmatiques après stimulation par les particules diesel, et ce d’autant plus que les patients sont en exacerbation. L’augmentation de l’IL-4 est prédominante. La prolifération des lymphocytes T est stimulée par les particules diesel, mais cet effet est plus important chez l’asthmatique que chez le volontaire sain et maximum lors des exacerbations. En conclusion, ce travail démontre que les particules diesel agissent comme activateurs des lymphocytes T chez l’asthmatique. Cet effet est augmenté lors des exacerbations, ce qui suggère que les particules diesel augmenteraient d’autant plus les symptômes que l’asthme est déjà instable. 3 Résumé long Introduction La prévalence de l’asthme continue d’augmenter dans les pays industrialisés. Cette maladie se manifeste par l’alternance d’exacerbations et de périodes de contrôle. Dans la grande majorité des cas, un contrôle de longue durée est obtenu sous traitement. Pourtant, une petite proportion d’asthmatiques sévères présente plusieurs exacerbations par an malgré un traitement de fond lourd associant corticoïdes inhalés à forte dose et bronchodilatateurs de longue durée d’action. Les facteurs en cause dans le déclenchement de ces exacerbations sont multiples. Les polluants atmosphériques en font partie et parmi eux les particules diesel ont été incriminées. Les mécanismes par lesquels les particules diesel agissent sur l’inflammation bronchique sont mal connus. Les lymphocytes T sont les cellules responsables de la réaction inflammatoire bronchique à éosinophiles qui caractérise l’asthme. Ces données nous ont conduit à tester l’hypothèse d’une action directe des particules diesel sur les lymphocytes T des sujets asthmatiques sévères, pendant les exacerbations et en dehors de celles-ci. Matériel et méthodes Dans cette étude, nous avons voulu étudier l’impact d’une stimulation par les particules diesel sur l’activation des lymphocytes T du sang ex vivo, dans la population d’asthmatiques sévères de la cohorte ISEA (Induced Sputum in Exacerbations of Asthma) comparée à des volontaires sains. Les patients de cette cohorte sont des patients sévères qui, malgré un traitement de fond associant corticoïdes inhalés à forte dose (> 1000 µg/j d’équivalent beclometasone) et bronchodilatateurs de longue durée d’action, présentent plusieurs exacerbations par an nécessitant la mise sous corticoïdes par voie générale. Ils sont suivis tous les mois, de sorte que des prélèvements sont obtenus pendant et en dehors des exacerbations. Trente deux prélèvements de 27 asthmatiques sévères ont été inclus. Les prélèvements ont été obtenus 13 fois pendant une exacerbation et 19 fois en dehors. Quatorze volontaires sains ont été inclus. Les cellules mononucléées (PBMC) ont été isolées et cultivées en présence de faibles doses de particules diesel. Les particules utilisées sont les particules de référence du National Institute of Standard and Technology. Leur diamètre est de 120nm et leur surface spécifique de 108m²/g. Les conditions de culture optimales ont été déterminées par des courbes dose/réponse et des études de cinétique, sur l’expression de marqueurs 4 membranaires, la production de cytokines et la prolifération cellulaire. Ces conditions ont été jugées optimales à 7 jours de stimulation par 8µg/ml de particules diesel. L’expression des marqueurs membranaires CD69 et CD25 et la production d’IL-4 et d’IFN- par les lymphocytes T ont été étudiées en cytométrie de flux. La prolifération des lymphocytes T a été étudiée par l’incorporation du PKH 26, un marqueur fluorescent qui s’intègre dans la membrane cellulaire et dont la décroissance de fluorescence par cellule est proportionnelle au nombre de divisions. Les comparaisons entre les groupes (volontaires sains, patients en exacerbation, patients en dehors d’une exacerbation) ont été réalisées par une analyse de variance non paramétrique. Les groupes ont été comparés entre eux par des tests de Mann et Whitney. Les variations observées pendant les exacerbations ont été comparées à celles retrouvées en dehors des exacerbations par des tests de Mann et Whitney réalisés sur ces variations. Résultats De façon inattendue, l’expression de CD69 est diminuée chez l’asthmatique sévère. L’expression de ce marqueur augmente après stimulation par les particules diesel, de façon plus importante chez l’asthmatique, notamment en exacerbation. La proportion de cellules T CD25+ augmente uniquement dans le groupe « exacerbations ». La proportion de cellules T productrices d’IL-4 et celle de cellules productrices d’IFN augmentent en réponse aux particules diesel dans les deux groupes d’asthmatiques, et de façon significativement plus importante lors des exacerbations. Ces proportions n’augmentent pas chez les volontaires sains. L’augmentation de l’IL-4 est prédominante, indiquant une activation globale orientée dans un sens Th2. La prolifération des lymphocytes T est stimulée par les particules diesel, mais cet effet est plus important chez l’asthmatique que chez le volontaire sain et maximum lors des exacerbations. Conclusions La diminution d’expression de CD69 chez les asthmatiques est surprenante mais est en accord avec certaines données récentes qui suggèrent que C69 puisse être exprimé dans les phases de résolution de l’inflammation et être plus un facteur régulateur qu’un récepteur activateur. Les autres résultats apportent des données importantes concernant l’action des particules diesel dans l’asthme : 5 Ils montrent que les particules diesel sont actives sur les cellules de malades mais pas sur celles de contrôles, ce qui rejoint les données épidémiologiques qui montrent que l’exposition aux polluants est délétère chez les asthmatiques en diminuant le seuil de déclenchement des symptômes, mais sans effet chez les non malades. Ils montrent qu’effectivement les particules diesel sont capables d’activer les lymphocytes T, qui sont les chefs d’orchestre de la réaction inflammatoire de l’asthmatique. En étant retrouvés dans un groupe d’asthmatiques sévères traités par corticoïdes inhalés à forte dose, ils montrent que même sous traitement les lymphocytes T des asthmatiques conservent une « hyperréactivité immunologique ». En montrant clairement que l’effet des particules diesel et supérieur lors des exacerbations, nos résultats suggèrent que l’asthmatique sévère est d’autant plus vulnérable vis-à-vis de tels polluants que son asthme est mal équilibré. 6 Note de synthèse: Introduction Au cours des dernières décennies, l’augmentation de la prévalence des maladies de l’atopique a été attribuée à des modifications du mode de vie, incluant l’exposition aux polluants atmosphériques (1,2). Dans les sociétés occidentales, la pollution est essentiellement attribuée à la circulation automobile, et notamment à celle induite par les particules (DEP) émises par les moteurs diesel. Les études épidémiologiques ont montré que la survenue des maladies atopiques est liée à l’exposition aux particules diesel, notamment chez les enfants (3). Les DEP sont composées d’un noyau carbonique fait d’hydrocarbures polyaromatiques qui adsorbe toutes sortes d’ions métalliques, d’hydrocarbures et de composés organiques dont la poussière et les pollens. Ainsi, plus que par toxicité propre, les DEP agissent comme vecteurs transportant des éléments toxiques et allergèniques directement déposés dans les voies aériennes (4, 5). Le rôle propre des DEP sur l’inflammation allergique reste peu clair. L’exposition aux DEP induit une activité oxydative dans les poumons, médiée par les hydrocarbures (6,7). Les chimiokines pro-inflammatoires comme l’IL-8, le GM-CSF, le TNF-, le MIP-1, et l’IL-1 sont alors produites par les cellules épithéliales bronchiques et/ou les macrophages alvéolaires (8-10). De plus, les DEP induisent l’expression de molécules d’adhésion et la formation d’un gradient de chimiokines facilitant la diapédèse (11) et l’attraction des neutrophiles, des éosinophiles et des lymphocytes (12, 13). Plus spécifiquement, les DEP induisent in vitro et in vivo la production d’IgE chez des patients sensibilisés et non sensibilisés (14). De ce point de vue, les DEP augmentent aussi la production d’IL-4 par les basophiles et d’autres cellules du système immunitaire (5, 16). En revanche l’action des DEP sur les cellules T est inconnue. Pourtant les cellules T sont les cellules principales impliquées dans la survenue de l’inflammation de type asthmatique, et notamment les cellules Th2 sont responsables de la commutation isotypique des plasmocytes vers la synthèse d’IgE. Les asthmatiques sévères représentent un sous-groupe de patients réduit mais spécialement vulnérable. Ce sont des patients qui malgré un traitement de fond lourd présentent un handicap important et un risque élevé d’exacerbations sévères. C’est le groupe de patients pour lequel de nouveaux modes de prise en charge sont vraiment nécessaires, dans le but de diminuer à la fois les exacerbations, mais aussi la consommation de corticoïdes par voie générale administrés lors de ces épisodes. C’est ainsi que dans cette étude, nous nous sommes intéressés à l’action des DEP sur les lymphocytes T, chefs d’orchestre de la réaction inflammatoire de l’asthmatique, chez l’asthmatique sévère pendant les exacerbations et en dehors de celles-ci. Matériel et méthodes. Patients Vingt-sept patients asthmatiques sévères ont été recrutés dans le cadre de la cohorte « ISEA » (Induced Sputum in Exacerbations of Asthma). Cette cohorte concerne des asthmatiques persistant sévères suivis chaque mois avec réalisation d’une prise de sang et d’une expectoration induite. L’asthme est connu depuis au moins un an, défini selon les recommandations du GINA, sur la base d’un syndrome obstructif réversible soit au moment de l’entrée dans l’étude soit antérieurement. La sévérité est également déterminée en fonction de la classification GINA, c'est-à-dire qu’ils présentent tous des « symptômes continus et une limitation de leur activité physique due à l’asthme, et des symptômes nocturnes d’asthme fréquents » (17). De plus, ces symptômes étaient présents malgré un traitement par au moins 1000 µg/j d’équivalent béclométasone et un bronchodilatateur de longue durée d’action. Enfin, ces patients avaient tous présenté au moins deux exacerbations sévères dans les 12 mois précédent leur entrée dans l’étude, nécessitant l’utilisation de corticoïdes par voie générale. Cependant, certains d’entre eux restaient avec un VEMS de base normal. Ces patients étaient ainsi tous des asthmatiques sévères non contrôlés. Les échantillons étaient considérés comme pris en dehors d’une exacerbation (NE) si une exacerbation sévère n’était survenue ni un mois avant ni un mois après le prélèvement. Ils étaient considérés comme pris lors d’une exacerbation (E) s’ils étaient prélevés pendant une exacerbation 7 sévère définie par la nécessité de traiter par une cure de corticoïdes par voie générale en raison d’une aggravation des symptômes d’asthme avec détérioration de la fonction respiratoire. Le diagnostic d’atopie était porté en cas de positivité d’au moins un test cutané pour un pneumallergène commun au sein d’une batterie de 35 extraits (Stallergènes, Antony, France). La batterie incluait notamment les extraits suivants : Dermatophagoides pteronissinus et farinae, chat, chien, blatte, alternaria, aspergillus, cladosporium et penicillium, pollens de graminées, pariétaire, bouleau, noisetier, olivier, chêne, mimosa, peuplier, acacia. Quatorze volontaires sains non atopiques et non fumeurs, présentant une fonction respiratoire normale ont été inclus comme groupe contrôle. Tous les sujets ont donné un consentement écrit. Le protocole a été approuvé par le Comité Consultatif de Protection des Personnes se prêtant à la recherche Biomédicale de Marseille 2. Particules diesel Les particules ont été obtenues auprès du National Institute of Standard and Technology. Ce Standard Reference Marterial 1650® est utilisé pour évaluer les méthodes analytiques de détermination des hydrocarbures aromatiques polycycliques des DEP (18,19). Ce matériel a été obtenu à partir de l’accumulation sur 200 heures de particules produites par différents moteurs utilisés dans différentes conditions. Le diamètre des particules utilisées était 120 nm et leur surface spécifique de 108 m²/g. Les particules ont été lavées en dichlorométhane puis resuspendues dans un tube en verre dans de l’eau déminéralisée, et soniquées selon la méthode décrite par Moller et al (20). Culture cellulaire Les cellules mononucléées du sang (PBMC) ont été préparées à partir du sang hépariné sur gradient de Ficoll. La concentration a été ajustée à 10 x 106 cellules /ml. 2 x 106 cellules ont été utilisées pour les études de prolifération. Brièvement, les cellules ont été marquées par un colorant membranaire fluorescent, le PKH 26 (2.5 µM ; Sigma, Lyon, France). Ce marqueur fluorescent s’intègre dans la membrane plasmique de sorte que l’intensité de fluorescence de chaque cellule diminue de moitié à chaque mitose. Le nombre de divisions cellulaires peut ainsi être apprécié facilement en cytométrie de flux. Ce marquage est réalisé à partir de 5.10 6 cellules. Les cellules sont resuspendues dans le tampon approprié au marquage PKH26 (107/ml). Le PKH26 2 M est ajouté pendant 5 minutes. La réaction est arrêtée par du sérum de veau foetal pur décomplémenté puis après lavage, les cellules sont mises en culture. Après 7 jours de culture, les lymphocytes T sont incubés avec un anti-CD3-PC5. Les résultats sont exprimés en pourcentage de lymphocytes T CD3+ qui se sont divisés. Des études de cinétique (24h à 10j) et dose-réponse (1 à 100 µg/ml) ont été réalisées sur des prélèvements d’asthmatiques, et ont permis de déterminer que la dose de 8µg/ml de DEP pendant 7 jours permettait d’obtenir la meilleure production de cytokines, la meilleure prolifération et offrait la meilleure sensibilité pour comparer les groupes de patients entre eux (Fig 1 A et B). Les expériences ont été réalisées en double. Les cellules ont été cultivées en milieu complet composé de RPMI 1640 (Gibco, CergyPontoise, France), supplémenté en serum de veau fœtal décomplémenté (10%), 100 U/ml de pénicilline G, 100 µg/ml de streptomycine, 100 U/ml de kanamycine, 2mM de glutamine, 1 mM de pyruvate de sodium et 5µM de 2-mercaptoéthanol. Les DEP à 8µg/ml ont été ajoutées pendant 7 jours. Une stimulation addtionnelle non spécifique a été réalisée durant les 12 dernières heures de culture dans les puits destinés à l’étude de la production de cytokines. Cytométrie de flux Chacune des expériences a été réalisée en double, sur 5.105 cellules et dans un volume final de 800l. Les cellules étaient incubées 15 minutes avec un anticorps Anti-CD3-PC5 (Dako, Trappes, France), un anti-CD69-PE (Dako) et un anti-CD25-FITC (Immunotech, Marseille, France), et fixées par du PBS 2,5% formaldéhyde. Les résultats sont exprimés en pourcentage de lymphocytes T CD3+ CD69+ et / ou CD3+CD25+. 8 Pour l’analyse de la production des cytokines au niveau unicellulaire, les cellules ont été incubées 15 minutes avec un anticorps anti-CD3-PC5, fixées 10 minutes avec du PBS 2,5% formaldéhyde puis rincées et perméabilisées 7 minutes avec du PBS, 0,1% saponine, 1% BSA. Les cellules sont ensuite incubées 15 minutes en présence d’anticorps anti-IFN--FITC (Pharmingen, Le Pont de Claix, France) et anti-IL-4-PE (Immunotech). Les résultats sont exprimés en pourcentage de lymphocytes T CD3+IFN-+ ou CD3+IL-4+. Pour chaque expérience de cytométrie de flux, des isotypes IgG contrôles ont été utilisés comme témoin interne négatif. Les marquages ont été analysés sur un cytomètre BD FACScan Becton Dickinson, Franklin Lanes, NJ, USA), à l’aide du logiciel Cell Quest Pro (Becton Dickinson). Expectoration induite Les expectorations induites ont été obtenues après nébulisation ultrasonique de sérum salé à 4.5% (Systam, Villeneuve sur Lot, France). La nébulisation a été réalisée en 3 périodes de 7 min à travers un embout buccal. Après chaque nébulisation une mesure de VEMS était réalisée pour apprécier la tolérance. On demandait aux patients de se moucher et de se rincer la bouche pour limiter la contamination salivaire, avant de cracher dans un pot stérile. Les prélèvements étaient immédiatement récupérés dans une boîte de Pétri et les portions denses d’origine bronchique triées, transférées dans un tube pré-pesé et pesées. Du Dithiotreitol (USB, Cleveland, USA) 0,1 % était ajouté dans un volume en µl trois fois égal au poids de l’expectoration en µg. Le même volume de PBS était ajouté, et la mixture filtrée. Les cellules étaient lavées, centrifugées et reprises dans 500µl. Elles étaient ensuite cytocentrifugées sur lames. Les lames étaient colorées par la méthode de May Grunwald et Giemsa et une formule cellulaire était réalisée. Statistiques Les analyses statistiques ont été réalisées avec le logiciel Statview. Les variations entre les différents groupes ont été comparées par une analyse de variance non paramétrique de KruskallWallis. Lorsque cette analyse était positive, des comparaisons entre les groupes deux à deux ont été réalisées par des tests de Mann et Whitney. Les variations intra-groupes ont été faites par des tests appariés de Wilcoxon. L’importance de l’effet des DEP a été comparée entre les groupes par des tests de Mann et Whitney réalisés sur les différences obtenues entre les résultats avec et sans stimulation. Les données sont exprimées en médianes (interquartiles). Une valeur de p < 0.05 est considérée comme significative. 9 Résultats Patients Trente deux échantillons provenant de 27 asthmatiques sévères (15 femmes, 12 hommes) d’age moyen 57 ans ont été inclus dans l’étude (Tableau I). Leur VEMS ± ES moyen était à 86,5 ± 2.9 % de la valeur théorique en dehors des périodes d’exacerbations et en moyenne de 60.6 ± 17.7 % durant les exacerbations. Une diminution du VEMS a été observée chez tous les patients pendant les exacerbations. Douze patients étaient non atopiques. Treize échantillons sanguins ont été obtenus durant une exacerbation (groupe E), et 19 en dehors d’une exacerbation (groupe NE). Cinq patients ont été étudiés en dehors et pendant une exacerbation. Conformément à ce qui est connu lors des exacerbations, une élévation des éosinophiles de l’expectoration induite était observée lors des exacerbations (E : 16 % vs NE : 4.9 %, p = 0.01, Fig 2). Le tableau I donne les données morphométriques des patients. Une réversibilité d’au moins 12% du VEMS de base était retrouvée à l’inclusion chez 11 patients. Vingt-deux patients recevaient 1600 à 2000 µg/j de beclometasone ou équivalent et 12 étaient traités par anti-leucotriènes. Les 14 volontaires sains inclus étaient tous non atopiques, non fumeurs et porteurs d’une fonction respiratoire normale. Induction des marqueurs CD69 et CD25 par les DEP Le niveau de base d’expression de CD69 était diminué chez les asthmatiques par rapport aux contrôles (p < 0.005 pour les deux groupes d’asthmatiques comparés aux contrôles), et cette différence était augmentée après stimulation par les DEP (p < 0.0001 pour les deux groupes d’asthmatiques comparés aux contrôles) (Fig 3A). La stimulation par les DEP a induit une augmentation d’expression de CD69 dans les trois groupes. (Fig 3A et tableau II). Il n’y avait pas de différence à l’état de base de l’expression de CD25 par les cellules T entre les groupes. Après exposition aux DEP, l’expression de CD25 augmentait significativement seulement chez les asthmatiques en exacerbation (Fig 3B, tableau II). L’intensité moyenne de fluorescence des marqueurs de surface variait de la même façon que les proportions de cellules positives pour ces marqueurs (non montré), à la fois pour CD69 et CD25, ce qui indique que le nombre de récepteurs par cellule varie de la même façon que le nombre de cellules exprimant ces récepteurs après stimulation par les DEP. Induction des cytokines Th1 et Th2 par les DEP. La proportion de base des cellules T produisant l’IFN- était augmentée chez les patients en exacerbation par rapport aux patients sans exacerbation et aux volontaires sains. (ANOVA de Kruskall Wallis : p = 0.0038, Fig 4A, tableau II). L’exposition aux DEP augmentait la proportion de cellules productrices d’IFN- à la fois chez les E et les NE (p < 0.005 et p < 0.05 respectivement par comparaison aux cellules non stimulées), mais pas chez les contrôles (Fig 4A, tableau II). Cet effet est illustré chez les 5 patients prélevés pendant et en dehors d’une exacerbation (Fig 4B). De plus l’exposition aux DEP augmentait la différence entre le groupe E et les deux autres groupes (ANOVA de Kruskall-Wallis : p = 0.0011, Fig 4A tableau II). L’effet des DEP était statistiquement plus grand dans le groupe E comparé aux deux autres (p = 0.01). Les pourcentages de base de cellules produisant de l’IL-4 étaient augmentés dans les deux groupes d’asthmatiques par rapport aux contrôles, mais étaient le plus élevés dans le groupe E (ANOVA de Kruskall-Wallis : p = 0.02, Fig 4C, tableau II). Dans les deux groupes d’asthmatiques les DEP ont significativement augmenté la production de cellules productrices d’IL-4 (p < 0.005 pour NE et p < 0.0005 pour E, par comparaison aux cellules non stimulées Fig 4C, tableau II). Cet effet est illustré pour les 5 patients prélevés pendant et en dehors d’une exacerbation Fig 4D. Les particules diesel n’ont pas eu d’effet sur la production d’IL-4 dans le groupe contrôle. A nouveau, et de façon plus marquée que pour l’IFN-, l’exposition aux DEP augmente la différence entre le groupe E et les deux autres groupes (ANOVA de Kruskall-Wallis : p = 0.0003, Fig 4C, tableau II). L’effet des DEP est statistiquement plus important dans le groupe E que dans les deux autres groupes (p = 0.006). Proportionnellement, les DEP ont induit plus de cellules productrices d’IL-4 que de cellules productrices d’IFN-, de sorte que le rapport IFN-/IL-4 diminuait après stimulation dans les deux 10 groupes d’asthmatiques par rapport aux résultats sans stimulation (p < 0.005 pour les deux groupes d’asthmatiques). Prolifération induite par les DEP. La prolifération de base ne différait pas entre les trois groupes. En présence de DEP, la prolifération des cellules T n’augmentait que chez les asthmatiques. La différence avec la prolifération de base était plus importante dans le groupe E. (p < 0.05 pour NE, p < 0.005 pour E par rapport aux contrôles, Fig 5A, tableau II). L’effet des DEP était significativement plus important chez les patients du groupe E (p = 0.03) et induisait une prolifération significativement plus importante chez les asthmatiques par rapport aux contrôles. (ANOVA de Kruskall-Wallis : p = 0.02, Fig 5A, tableau II). Cet effet est illustré chez les 5 patients prélevés pendant une exacerbation et à distance (Fig 5B). 11 Discussion Dans cette étude, nous avons montré que la stimulation ex vivo des lymphocytes T par des particules Diesel induit une activation chez les asthmatiques mais pas chez les sujets contrôles. En effet, les DEP ont entraîné à la fois l’expression de marqueurs de surface, la production de cytokine et la prolifération. Cet effet était statistiquement plus important chez les patients en exacerbation par rapport aux patients en dehors d’une exacerbation, pour la production de cytokines et la prolifération. Il faut remarquer que ces effets ont été obtenus après une stimulation à faible dose mais sur plusieurs jours, de façon assez proche d’une stimulation naturelle. (20-22). Bien que le mécanisme exact de l’induction de l’activation des cellules immunitaires par les DEP ne soit toujours pas connu, on a suggéré que les DEP diminuent le seuil d’activation des cellules du système immunitaire responsables des symptômes d’asthme. En effet la plupart des études ont démontré que les DEP pouvaient faciliter la survenue de maladies allergiques en induisant la production de cytokines et chimiokines par les cellules épithéliales et les macrophages alvéolaires, et aussi la production d’IgE par les cellules B (23, 24). Ici nous démontrons que les DEP agissent aussi sur les cellules T, considérées comme les cellules principales impliquées dans la genèse de l’asthme. CD69 et CD25 sont considérés comme des marqueurs précoces de l’activation T. Une expression spontanée de ces marqueurs est retrouvée lors de situations inflammatoires chroniques, à la fois in vitro et in vivo (25). Le pourcentage de cellules T exprimant CD69 est de façon inattendue plus élevé chez les volontaires sains que chez les asthmatiques, mais augmente encore après stimulation par les DEP. Chez les contrôles, l’expression de CD69 est associée à une faible prolifération et une faible production de cytokines. Une hypothèse pour cette différence entre asthmatiques et contrôles pourrait être que les corticoïdes inhalés diminuent l’expression de CD69 chez les asthmatiques. Cela est peu probable, car tous les autres marqueurs d’activation sont plus élevés chez ces malades. Il n’y a pas d’étude comparant l’effet des DEP en fonction de la présence ou non d’un traitement par corticoïdes inhalés. Cependant Nordenhall et al. (26) ont retrouvé une induction d’hyperréactivité bronchique chez des patients traités par corticoïdes inhalés. Nous suggérons plutôt que chez les contrôles, CD69 puisse être responsable d’un état de non réactivité des cellules T. En effet il a été démontré récemment que CD69 pouvait être impliqué dans des voies de régulation, notamment via la production de TGF- (27). De plus, il a été rapporté que l’expression de CD69 était diminuée lors d’une suractivation lymphocytaire T en réponse à une exposition antigénique prolongée (28). A l’inverse, les cellules T CD25+ n’étaient pas différemment représentées d’un groupe à l’autre, et n’augmentait en réponse aux DEP que dans le groupe en exacerbation. CD25 est associé à un phénotype activé lorsqu’il est exprimé à un niveau moyen, et à un phénotype régulateur lorsqu’il est fortement exprimé. L’augmentation parallèle de la production de cytokines suggère qu’il est ici un marqueur d’activation pro-inflammatoire. En effet, les DEP ont induit à la fois la production de cytokines Th1 et Th2 par les cellules T. L’induction Th2 était plus prononcée, ce qui est en accord avec le rôle connu des DEP sur la synthèse d’IgE (29). De plus en réponse aux DEP, la production d’IFN- augmentait chez les asthmatiques mais pas chez les contrôles, confirmant ainsi la participation Th1 à l’inflammation de l’asthmatique. La littérature concernant les relations entre les DEP et la production d’IFN- est controversée. Chez la souris, la production d’IL-12p40 est corrélée négativement avec l’exposition aux DEP (30), et une diminution de l’IFN- a récemment été décrite par les monocytes, les NK et les NKT après stimulation par les DEP (31, 32, 33). Inversement chez l’homme, après exposition naturelle aux poussières organiques, Muller-Sur et al. ont décrit une production d’IL-12 par les phagocytes, induisant l’activation des cellules NK et Th1 (34). Enfin, Senechal et al. ont démontré que bien que les chimiokines Th1 et Th2 pouvaient être induites par les DEP associées à une stimulation par l’allergène, l’effet résultant était chimiotactique sur les cellules Th2 mais pas Th1 (35). Notre étude ex-vivo a été réalisée chez l’homme, dans un sous-groupe de patients sévères pour lesquels les mécanismes inflammatoires en jeu sont probablement différents de ceux retrouvés chez des asthmatiques moins sévères. L’activation Th1 pourrait être plus importante dans ce groupe de patients, comme cela a été suggéré par le passé (36). Par ailleurs, certaines des exacerbations étudiées pourraient être d’origine infectieuse et accroître l’activation Th1. Néanmoins l’IFN- peut participer directement à la pathogenèse des exacerbations (36). Cela est en accord avec l’augmentation de base de production d’IFN- retrouvé chez ces asthmatiques sévères par rapport aux contrôles. 12 En stimulant l’activation de base des lymphocytes T des asthmatiques, les DEP pourraient augmenter l’hyperréactivité bronchique (26) et par conséquent déclencher des symptômes d’asthme. De plus, elles pourraient agir comme des adjuvants lorsqu’elles sont associées à d’autres facteurs déclenchants les symptômes comme les infections ou les allergènes (37). Considérés ensemble, les effets des DEP sur les lymphocytes T des asthmatiques mais pas des volontaires sains, suggèrent que les asthmatiques sont à risque d’accroître leurs symptômes lorsqu’ils sont exposés aux DEP, d’autant plus qu’ils sont mal contrôlés. 13 Références 1 Crater SE, Platts-Mills TA. « Searching for the cause of the increase in asthma. » Curr Opin Pediatr. 1998.10:594-9. 2 von Mutius E, Martinez FD, Fritzsch C, Nicolai T, Roell G, Thiemann HH. « Prevalence of asthma and atopy in two areas of West and East Germany. » Am J Respir Crit Care Med. 1994.149 :358-64. 3 van Vliet P, Knape M, de Hartog J, Janssen N, Harssema H, Brunekreef B. « Motor vehicle exhaust and chronic respiratory symptoms in children living near freeways. » Environ Res. 1997.7:122-32. 4 Schroeder WH, Dobson M, Kane DM, Johnson ND. « Toxic trace elements associated with airborne particulate matter: a review. » JAPCA. 1987.37:1267-85. 5 Knox RB, Suphioglu C, Taylor P, Desai R, Watson HC, Peng JL, Bursill LA. « Major grass pollen allergen Lol p 1 binds to diesel exhaust particles: implications for asthma and air pollution. »Clin Exp Allergy. 1997.27:246-51. 6 Casillas AM, Hiura T, Li N, Nel AE. « Enhancement of allergic inflammation by diesel exhaust particles: permissive role of reactive oxygen species. » Ann Allergy Asthma Immunol. 1999.83:6249. 7 Whitekus MJ, Li N, Zhang M, Wang M, Horwitz MA, Nelson SK, Horwitz LD, Brechun N, Diaz-Sanchez D, Nel AE. « Thiol antioxidants inhibit the adjuvant effects of aerosolized diesel exhaust particles in a murine model for ovalbumin sensitization. » J Immunol. 2002.1:2560-7. 8 Amakawa K, Terashima T, Matsuzaki T, Matsumaru A, Sagai M, Yamaguchi K. « Suppressive effects of diesel exhaust particles on cytokine release from human and murine alveolar macrophages. » Exp Lung Res. 2003. 29:149-64. 9 Inoue KI, Takano H, Yanagisawa R, Ichinose T, Shimada A, Yoshikawa T. « Pulmonary exposure to diesel exhaust particles induces airway inflammation and cytokine expression in NC/Nga mice. » Arch Toxicol. 2005. 12 10 10 Steerenberg PA, Dormans JA, van Doorn CC, Middendorp S, Vos JG, van Loveren H. « A pollen model in the rat for testing adjuvant activity of air pollution components. » Inhal Toxicol. 1999. 11:1109-22. 11 Seagrave J, Knall C, McDonald JD, Mauderly JL. « Diesel particulate material binds and concentrates a proinflammatory cytokine that causes neutrophil migration. » Inhal Toxicol. 2004.16 Suppl 1:93-8. 12 Baulig A, Sourdeval M, Meyer M, Marano F, Baeza-Squiban A. « Biological effects of atmospheric particles on human bronchial epithelial cells. Comparison with diesel exhaust particles. » Toxicol In Vitro. 2003. 17:567-73. 13 Stenfors N, Nordenhall C, Salvi SS, Mudway I, Soderberg M, Blomberg A, Helleday R, Levin JO, Holgate ST, Kelly FJ, Frew AJ, Sandstrom T. « Different airway inflammatory responses in asthmatic and healthy humans exposed to diesel. » Eur Respir J. 2004. 23:82-6. 14 Takenaka H, Zhang K, Diaz-Sanchez D, Tsien A, Saxon A. « Enhanced human IgE production results from exposure to the aromatic hydrocarbons from diesel exhaust: direct effects on B-cell IgE production. » J Allergy Clin Immunol. 1995. 95:103-15. 15 Devouassoux G, Saxon A, Metcalfe DD, Prussin C, Colomb MG, Brambilla C, Diaz-Sanchez D. « Chemical constituents of diesel exhaust particles induce IL-4 production and histamine release by human basophils. » J Allergy Clin Immunol. 2002.109:847-53. 16 Wang M, Saxon A, Diaz-Sanchez D. « Early IL-4 production driving Th2 differentiation in a human in vivo allergic model is mast cell derived. » Clin Immunol. 1999.90:47-54. 17 Global Strategy for asthma management and prevention. NIH publication No 02-3659 issued January 1995 (updated 2002). www.ginasthma.org 18 Bamford HA, Bezabeh DZ, Schantz S, Wise SA, Baker JE. « Determination and comparison of nitrated-polycyclic aromatic hydrocarbons measured in air and diesel particulate reference materials. » Chemosphere. 2003.50:575-87. 19 Bezabeh DZ, Bamford HA, Schantz MM, Wise SA. « Determination of nitrated polycyclic aromatic hydrocarbons in diesel particulate-related standard reference materials by using gas 14 chromatography/mass spectrometry with negative ion chemical ionization. » Anal Bioanal Chem. 2003.375:381-8. 20 Moller W, Hofer T, Ziesenis A, Karg E, Heyder J. “Ultrafine particles cause cytoskeletal dysfunctions in macrophages.” Toxicol Appl Pharmacol. 2002;182:197-207. 21 Kristovich R, Knight DA, Long JF, Williams MV, Dutta PK, Waldman WJ. « Macrophagemediated endothelial inflammatory responses to air borne particulates: impact of particulate physicochemical properties. » Chem Res Toxicol. 2004.17:1303-12. 22 Devalia JL, Bayram H, Abdelaziz MM, Sapsford RJ, Davies RJ. « Differences between cytokine release from bronchial epithelial cells of asthmatic patients and non-asthmatic subjects: effect of exposure to diesel exhaust particles. » Int Arch Allergy Immunol. 1999.118:437-9. 23 Takano H, Yoshikawa T, Ichinose T, Miyabara Y, Imaoka K, Sagai M. « Diesel exhaust particles enhance antigen-induced airway inflammation and local cytokine expression in mice. » Am J Respir Crit Care Med. 1997.156:36-42. 24 Hiramatsu K, Azuma A, Kudoh S, Desaki M, Takizawa H, Sugawara I. « Inhalation of diesel exhaust for three months affects major cytokine expression and induces bronchus-associated lymphoid tissue formation in murine lungs.» Exp Lung Res. 2003. 29:607-22. 25 Sancho D, Yanez-Mo M, Tejedor R, Sanchez-Madrid F. « Activation of peripheral blood T cells by interaction and migration through endothelium: role of lymphocyte function antigen1/intercellular adhesion molecule-1 and interleukin-15. » Blood. 1999;93:886-96. 26 Nordenhall C, Pourazar J, Ledin MC, Levin JO, Sandstrom T, Adelroth E. « Diesel exhaust enhances airway responsiveness in asthmatic subjects. » Eur Respir J. 2001. 17:909-15. 27 Sancho D, Gomez M, Sanchez-Madrid F. « CD69 is an immunoregulatory molecule induced following activation ». Trends Immunol. 2005;26:136-40. 28 Ishikawa S, Akakura S, Abe M, Terashima K, Chijiiwa K, Nishimura H, Hirose S, Shirai T. «A subset of CD4+ T cells expressing early activation antigen CD69 in murine lupus: possible abnormal regulatory role for cytokine imbalance. » J Immunol. 1998;161:1267-73. 29 van Zijverden M, van der Pijl A, Bol M, van Pinxteren FA, de Haar C, Penninks AH, van Loveren H, Pieters R. « Diesel exhaust, carbon black, and silica particles display distinct Th1/Th2 modulating activity. » Toxicol Appl Pharmacol. 2000.168:131-9. 30 Nilsen AM, Hagemann R, Eikas H, Egeberg K, Norkov T, Sundan A. « Reduction of IL-12 p40 production in activated monocytes after exposure to diesel exhaust particles. » Int Arch Allergy Immunol. 2003.131:201-8. 31 Finkelman FD, Yang M, Orekhova T, Clyne E, Bernstein J, Whitekus M, Diaz-Sanchez D, Morris SC. « Diesel exhaust particles suppress in vivo IFN-gamma production by inhibiting cytokine effects on NK and NKT cells. » J Immunol. 2004.172:3808-13. 32 Ohtani T, Nakagawa S, Kurosawa M, Mizuashi M, Ozawa M, Aiba S. « Cellular basis of the role of diesel exhaust particles in inducing Th2-dominant response. » J Immunol. 2005.174:2412-9. 33 Fahy O, Senechal S, Pene J, Scherpereel A, Lassalle P, Tonnel AB, Yssel H, Wallaert B, Tsicopoulos A. « Diesel exposure favors Th2 cell recruitment by mononuclear cells and alveolar macrophages from allergic patients by differentially regulating macrophage-derived chemokine and IFN-gamma-induced protein-10 production. » J Immunol. 2002.168:5912-9. 34 Muller-Suur C, Larsson K, Grunewald J. « Organic dust-induced interleukin-12 production activates T- and natural killer cells. » Eur Respir J. 2002.20:686-90. 35 Senechal S, de Nadai P, Ralainirina N, Scherpereel A, Vorng H, Lassalle P, Tonnel AB, Tsicopoulos A, Wallaert B. « Effect of diesel on chemokines and chemokine receptors involved in helper T cell type 1/type 2 recruitment in patients with asthma. » Am J Respir Crit Care Med. 2003.168:215-21. 36 Boniface S, Koscher V, Mamessier E, El Biaze M, Dupuy P, Lorec AM, Guillot C, Badier M, Bongrand P, Vervloet D, Magnan A. «Assessment of T lymphocyte cytokine production in induced sputum from asthmatics: a flow cytometry study ». Clin Exp Allergy. 2003;33:1238-43. 37 Hao M, Comier S, Wang M, Lee JJ, Nel A. « Diesel exhaust particles exert acute effects on airway inflammation and function in murine allergen provocation models.» J Allergy Clin Immunol. 2003.112:905-14. 15 Age Patient (years) 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 55 65 64 24 64 43 39 57 58 55 57 63 65 44 59 68 59 50 73 43 62 61 70 46 65 45 57 Sexe Poids (Kg) Taille (cm) F F F F M F M F F F M F F F M F M F M M F M F M M F M 68 85 60 93 90 98 73 76 92 65 96 67 58 65 82 70 82 123 64 55 80 66 78 82 80 96 90 165 155 157 183 165 180 160 174 182 159 158 152 157 166 175 160 158 160 150 162 175 180 160 168 177 160 180 VEMS (% predite) NE 90 100 63 93 71 67 88 93 100 100 97 100 87 100 88 77 100 71 100 79 93 75 76 100 100 61 81 VEMS VEMS ICS reversibilité à (% predite) l’inclusion dose E (µg/d) (%) 59 0 2000 81 8.2 1600 37 0 1600 72 6.4 2000 34 20 2000 41 7.4 2000 50 0 2000 78 39.7 1600 84 17.1 1600 64 32.8 1600 42 3.6 2000 96 6.1 1600 49 23.7 1600 83 19.1 2000 65 2.6 1600 51 2.6 2000 87 29.3 1200 41 23.1 1200 78 0 1200 42 30.4 2000 56 1.6 2000 63 0 1000 37 0 1600 76 2.9 1000 78 0 2000 50 36.2 2000 57 2.6 2000 MK Atopie + + + + + + + + + + + + + Tableau I. Caractéristiques des patients. M = Masculin ; F = Féminin ; NE = pas d’exacerbation ; E = Exacerbation ; ICS = Corticoïdes inhalés; MK = montelukast ; O = Oui ; N = Non 16 O N O O O N O N N O N N O O O N N N N N N O N N O O N Tableau II. Impact des DEP sur l’activation des cellules T. Les cellules ont été cultivées pendant 7 jours sans (Cf = 0 µg/ml) ou avec (Cf = 8 µg/ml) DEP. Les resultats sont exprimés en médiane (interquartile). Des comparaisons appariées entre cellules exposées et non exposées ont été réalisées. NS = non significatif. DEP 0 µg/ml DEP 8 µg/ml p CD3+CD69+ Controles n = 14 9.38 16.98 19 15.73 p = 0.005 Pas d’ Exacerbation n = 19 5 5.5 6.6 2.38 p < 0.05 Exacerbation n = 13 3.75 3.50 6 3.50 p = 0.0001 CD3+CD25+ Controles n = 14 3.95 3 4.80 2.9 NS Pas d’ Exacerbation n = 19 5 4.75 5.8 2.75 NS Exacerbation n = 13 4 2.38 5.95 5.5 p = 0.005 CD3+IFN- + Controles n = 14 7.77 7.00 9.65 5.60 NS Pas d’ Exacerbation n = 19 9.1 8.00 11.5 9.25 p < 0.05 Exacerbation n = 13 20 11.0 23.2 11.8 p 0.005 CD3+IL-4+ Controles n = 14 1.87 1.5 2.48 1.6 NS Pas d’ Exacerbation n = 19 2.75 1.85 3.55 2.87 p 0.005 Exacerbation n = 13 3.45 1.88 8 6.43 p 0.005 Prolifération Controles n = 14 2.5 4.05 2.5 5.62 NS Pas d’ Exacerbation n = 19 4.15 10.1 6.85 8.5 p < 0.05 Exacerbation n = 13 3.25 2.70 4.8 6.5 p 0.005 17 Légendes des figures Figure 1. Cinétique et effet dose réponse de la stimulation par les DEP. A. Effet dose-réponse de la stimulation par les DEP sur l‘expression de CD69, la production d’IFN- et la prolifération des lymphocytes T. Les cellules T ont été stimulées par des doses croissantes de DEP pendant 7 jours. Données d’un sujet asthmatique. La dose de 8µg/ml donne la meilleure réponse. B. Cinétique de la stimulation par les DEP sur l’expression de CD69, CD25, la production d’IFN- et d’ IL4 et la prolifération. Les expériences ont été réalisées chez 5 patients par condition de culture en moyenne avec 8µg/ml de DEP. La stimulation de 7 jours donne le meilleur compromis pour tous les paramètres étudiés (flèche). Figure 2. Eosinophilie de l’expectoration induite. Les cellules de l’expectoration induite ont été recueilles pendant (E) et en dehors des exacerbations (NE), et une formule cellulaire a été réalisée après cytocentrifugation des cellules et coloration de May-Grunwald-Giemsa. Figure 3. Induction par les DEP de l’expression de CD69 et CD25 sur les cellules T.. Les pourcentages de cellules T exprimant CD69 (A) ou CD25 (B) ont été déterminés après 7 jours deculture sans (- = 0 µg/ml) ou avec ( + = 8µg/ml) DEP.C = contrôles; NE = Pas d’ exacerbation; E = Exacerbation. Resultats exprimés en médiane [Interquartile]. **: p < 0.005 ; ***: p < 0.0005. Figure 4. Induction par les DEP de la production d’IFN- et d’IL-4 par les lymphocytes T. Les pourcentages de cellules CD3+ IFN-+ (A, B) et CD3+IL-4 (C, D) ont été mesurée après 7 jours de culture sans ( - = 0 µg/ml) ou avec ( + = 8µg/ml) DEP. B, D: données individuelles obtenues chez 5 patients sampled prélevés pendant et en dehors d’une exacerbation. Resultats exprimés en médiane [Interquartile]. C = contrôles; NE = Pas d’ exacerbation; E = Exacerbation. *: p < 0.05; **: p < 0.005; ***: p < 0.0005. Figure 5. Prolifération des cellules T induite par les DEP. Les cellules ont été marquées par le PKH26 et cultivées pendant 7 jours sans ( - = 0 µg/ml) ou avec ( + = 8µg/ml) DEP. (A) Les résultats ont été compares en fonction de l’exposition aux DEP. (B) : données individuelles obtenues chez 5 patients sampled prélevés pendant et en dehors d’une exacerbation. Resultats exprimés en médiane [Interquartile]. C = contrôles; NE = Pas d’ exacerbation; E = Exacerbation. *: p < 0.05; **: p < 0.005; ***: p < 0.0005. 18 0 µg/ml 5 µg/ml 8 µg/ml 10 µg/ml A B 12.00 CD3-PC5 13 % 26% 29% 22.5 % 10.00 8.00 IFN--PC5 CD69 -PE 9% 11% 6.00 14% 11.6% 4.00 2.00 0.00 CD3-PC5 CD3-PC5 1 14% 14% 22% 2 3 4 5 6 7 8 9 10 Days 18% CD69 CD25 IL-4 Proliferation IFN- PKH26 Figure 1 19 Figure 2 P = 0.001 % IS eosinophils 80 70 60 50 40 30 20 10 0 NE E 20 Figure 3 A ** 35 30 25 20 15 10 5 0 C NE 0 g/ml CD3+CD25+ cells *** % of CD3+CD25+ T cells ** % of CD3+CD69+ T cells B CD3+CD69+ cells *** E C NE 8 g/ml E 18 16 14 12 10 8 6 4 2 0 C NE 0 g/ml E C NE E 8 g/ml 21 Figure 4 *** *** % of CD3+IFN-+ 40 *** ** 35 B % of CD3+IFN-+ A 30 25 20 15 10 5 NE E C 0 g/ml NE 20 15 10 8 g/ml *** ** 14 E * E (-) E(+) NE (-) NE (+) E (-) E(+) 14 12 10 * 8 NE (-) NE (+) D *** % of CD3+IL-4+ % of CD3+IL-4+ 25 0 C 6 4 12 10 8 6 4 2 2 0 30 5 0 C 35 0 C NE 0 g/ml E C NE E 8 g/ml 22 Figure 5 B 25 22.5 20 17.5 15 12.5 10 7.5 5 2.5 0 CD3+ T cells division (%) CD3+ T cells division (%) A 14 12 10 8 6 4 2 0 C NE 0 g/ml E C NE 8 g/ml E NE (-) NE (+) E (-) E(+) 23 Degré d’atteinte des objectifs : Les objectifs fixés par le protocole ont été atteints. Conformément à notre hypothèse, nous avons montré que les particules diesel étaient capables d’activer les cellules T des sujets asthmatiques. Un article est en révision pour allergy. Difficultés rencontrées : Les difficultés ont résidé essentiellement en la mise au point des protocoles de stimulation. Plusieurs mois ont été perdus en raison de l’arrêt de la commercialisation des particules diesel utilisées dans ce travail. Ces difficultés ont pu être surmontées, et l’étude a pu être menée à son terme. Mots clés : Lymphocyte T ; balance TH1/TH2 ; asthme ; allergie ; particules diesel ; pollution Key words : T lymphocytes ; TH1/TH2 balance ; asthma ; allergy ; diesel exhaust particles ; pollution Abréviations : IL Interleukine IFN Interféron PBMC Cellules mononucléées du sang périphérique DEP Particules diesel ES Erreur standard 24