Initiation à la Biologie Cellulaire

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Cap d’Agde 2016
Initiation à la Biologie Cellulaire
1
Les modèles expérimentaux pour la biologie
 Les cellules en culture
 Les animaux de laboratoire
• Cancéreuses
10 µm
Cap d’Agde 2016
Cap d’Agde 2016
• Normales
Black 6
Nude
Vérifier que les
nanoparticules ne
soient pas toxiques
Faire pousser des
tumeurs humaines
et les traiter
Début des expériences in vitro, les meilleurs candidats sont testés in vivo
2
Les voies cellulaires empruntées par les nanoparticules
Devenir des nanoparticules dans la cellule (in vitro)
Transport dans la cellule
Imagerie subcellulaire
Ciblage des cellules cancéreuses
Devenir des nanoparticules chez la souris nude (in vivo)
Cap d’Agde 2016
Trajet et barrières biologiques
Biodistribution, biocompatibilité
Accumulation dans la tumeur
3
La culture des cellules
Incubateur, enceinte humide, 5% CO2, 37°C
Cap d’Agde 2016
Cellules cultivées en flasque + milieu
4
La culture des cellules
Observation au microscope à transmission
Cap d’Agde 2016
Manipulation sous PSM
5
La cellule animale
C’est l’unité fonctionnelle du corps, de chaque organe, de chaque tissu
‐ RE: synthèse des protéines et lipides
‐ appareil de Golgi: maturation protéines et lipides venant du RE
‐ mitochondries: fournie l’ATP pour les réactions cellulaires
‐ lysosomes: dégradation des organites HS et des particules endocytées
‐ endosomes: étape avant le lysosome
‐ peroxisomes: compartiment d’enzymes spécialisées dans l’oxydation
Golgi
Réticulum
Endoplasmique
Endosome
Peroxisome
Membrane plasmique
Noyau
ADN
génome
Cap d’Agde 2016
Cytoplasme
Lysosome Mitochondrie
6
Cap d’Agde 2016
L’expression des gènes
ADN transcrit en ARN
ARN traduit en protéines
7
Les différents modes de transport membranaires
I. Transport membranaire de petites molécules
Molécules
hydrophobes
Petites
molécules
polaires
non chargées
Cap d’Agde 2016
Grosses
molécules
polaires
non chargées
O2 CO2 N2 hormones
H2O
urée
glycérol
Certaines molécules traversent la membrane plasmique (bicouche lipidique)
D’autres ont besoin de Glucose
saccharose
transporteurs: perméases ou canaux protéiques avec dans certains cas besoin d’ATP pour Ions
H+, Na+
HCO3‐, K+
Ca2+ , Cl‐
Mg2+
Milieu extracellulaire
faire traverser la molécule.
Milieu intracellulaire
8
Les différents modes d’internalisation
II. Transport de macromolécules: endocytose
Nanoparticules Milieu extracellulaire Invagination
de la membrane plasmique Noyau
Cap d’Agde 2016
ADN
génome
Vésicule dérivée de la membrane plasmique Endosome
précoce Endosome
tardif Lysosome 9
L’endocytose
Deux grands catégories d'endocytose : la phagocytose et la pinocytose.
Cap d’Agde 2016
La phagocytose : réalisée essentiellement par des cellules spécialisées comme les macrophages, les monocytes, les neutrophiles et les cellules dendritiques. La phagocytose fait intervenir des protéines particulières, les opsonines, qui vont s'adsorber sur l'élément étranger et déclencher la phagocytose (intervient essentiellement dans le système de défense de
l'organisme et entraîne la destruction de l'élément absorbé). La pinocytose : mécanisme qui existe chez toutes les cellules. Il semble
impliquer des zones particulières des membranes cellulaires. C'est la voie normale d'absorption d'éléments indispensables comme le cholestérol transporté par les LDL ou le fer transporté par les transferrines. De nombreux points restent encore inconnus mais plusieurs voies de pinocytose sont décrites et classées en fonction des protéines et des
médiateurs impliqués :
•pinocytose dépendant de la clathrine
•pinocytose indépendant de la clathrine : cette catégorie rassemble plusieurs voies:
‐ endocytose faisant intervenir la caveoline
‐ macropinocytose : endocytose dépendant d'une tyrosine kinase
‐ endocytose clathrine et caveolae indépedant
10
Culture cellulaire et traitement
Cellules cultivées dans une atmosphère humide, 37°C, 5% CO2
Ajouter les nanoparticules dans le milieu
Internalisation des nanoparticules dans les cellules
Microscopie, toxicité intrinsèque, toxicité induite,… Boîte de culture
Cap d’Agde 2016
Milieu de culture
Cellules
Nanoparticules
11
Cap d’Agde 2016
Tests in vitro avec les nanoparticules

TEM pour connaître l’internalisation des nanoparticules par les cellules

Microscopie à fluorescence sur cellules vivantes pour déterminer leur localisation dans la cellule

Mesure de la non toxicité des nanoparticules après 3 jours de traitement et des concentrations croissantes

Mesure de la toxicité induite dans le cas de MSN encapsulant des PS ou des drogues
12
Nanoparticules cœur magnétique
Cellules fixées et inclues en paraffine Observation en TEM de coupes faites au microtome Observation de nanoparticules internalisées Cap d’Agde 2016
Control
Nanoparticules 6 h
Cellules Hep‐G2 traitées par 50 µg.mL‐1 de nanoparticules
Rascol E et al, RSC adv, 2016
13
Cap d’Agde 2016
Nanoparticules luminescentes endocytées
14
Etude de cytotoxicité sur lignées cellulaires Nanoparticules autonomes pH sensibles pour la délivrance de médicaments
Principe
Camptothécine ou analogue 5-FU
Bouchon
Lien acido-labile
pH 7.4
Résultats
Noyaux
Survie cellulaire (%)
Cap d’Agde 2016
120
pH 5
Np
Merge
100
Np +
IP
80
60
40
Np vides
20
Np + CPT
Np +
RhoB
0
0
20
40
60
80
Concentration (µg.mL-1)
Théron C et al, RSC adv, 2015 15
Etude de cytotoxicité sur cultures primaires Nanoparticules autonomes pH sensibles pour la délivrance de médicaments
Des prélèvements de cancer du colon ont été récupérés à l’hôpital, les cellules cancéreuses ont été isolées et remises en culture. Ensuite, des colonies se sont formées et ont été traitées par 10 µg/ml de nanoparticules contenant soit un fluorophore rouge (iodure de propidium) soit des médicaments anti‐cancéreux. Une fois dans le lysosome, les bouchons des nanoparticules qui sont sensibles au pH, sautent et libèrent la drogue dans les cellules cancéreuses.
Noyaux
Lysosomes
NP
Superposition
Anti-cancéreux ou fluorophore
Bouchon
Disparition
de la colonie
de cellules
cancéreuses
10 µg/mL
Cap d’Agde 2016
Lien acido-labile
pH 7.4
pH 5
0
2
Jours
4
8
Théron C et al, RSC adv, 2015
16
Toxicité photo‐induite
Cas des MSN encapsulant des PS monophotoniques Contrôle
Contrôle irradié 650 nm, 14 J cm‐2
48 h
MSN non irradiées
MSN irradiées
Cap d’Agde 2016
Irradiation des cellules
MTT colore les cellules vivantes
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Vectorisation des nanoparticules
Cap d’Agde 2016
pour un meilleur ciblage
18
Délivrance contrôlée de médicaments
Cancers à foyers polydisperses
Besoin de chimiothérapie ciblée :
‐ augmentation de l’efficacité thérapeutique dans la zone tumorale
‐ limitation des effets secondaires
Cancer colon: nanoparticules encapsulant une drogue de référence pour cibler des foyers cancéreux par une reconnaissance ligand/récepteur (HA/CD44)
Camptothecin
5-FU
Cap
Cap d’Agde 2016
Stalk
Hyaluronic acid
CD44 receptor
19
Internalisation de nanoparticules vectorisées
• Endocytose par l’intermédiaire de récepteurs membranaires:
augmentation de l’incorporation de ligands
ex: nanoparticules vectorisées par du mannose pour la PDT des cancers Laser
Ciblage sélectif
Cellule
cancéreuse
Internalisation
Cytotoxicité
Cap d’Agde 2016
• Même principe pour des nano « Drug Delivery » contenant un cytotoxique:
‐ diffusion passive
‐ libération activable par la lumière, l’hyperthermie, pH…
20
Traitement de lignées cellulaires par des MSN
MSN
120
Monophotonique
MSN-man
100
14 J cm‐2
Living cells (%)
*
80
*
60
40
20
*
Cap d’Agde 2016
Biphotonique
0
MSN (24 h)
-
-
+
+
-
-
+
+
Irradiation
-
+
-
+
-
+
-
+
Zone contrôle Zone irradiée
1. Brevet mondial, PCT/Fr2009/001090 CNRS, 2008
2. Brevet D, et al. Chem Commun, 2009
0.24 J cm‐2
3. Brevet européen, N° EP 09 306 238.8, CNRS, 2009
21
Nanoparticules pour l’imagerie
noyaux
MSN-FITC
MSN-man-FITC
Cap d’Agde 2016
MSN-man-FITC +
excès de mannose
lysosomes
MSN-FITC
superposition
% coloc.
29%
77%
35%
Marquage des
membranes
cellulaires
Hocine O et al, Int J Pharm, 2010 22
Un exemple de nanoparticules
vectorisées pour le traitement Cap d’Agde 2016
du cancer de la prostate
23
Ciblage du cancer de la prostate
 Identification de cibles moléculaires ex: lectines surexprimées par des cellules cancéreuses
 Synthèse de ligands avec une forte affinité pour le récepteur identifié 5
Unité liant le M6P
Unité liant le M6P
M
M
M
M
M
10
M
1
Unité liant l'IGF-II
N
 Développement de nanoparticules pour le traitement et l’imagerie leurs propriétés seront fonction du cancer à traiter 15
Milieu Extracellulaire
Milieu Intracellulaire
 Greffage des ligands synthétiques sur les nanoparticules Cap d’Agde 2016
 Tests biologiques, in vitro sur lignées cancéreuses puis ex vivo sur cultures primaires.
24
Surexpression du RM6P dans les cancers de la prostate •
Marquage immunohistochimique du RM6P
•
84% des cancers de la prostate
surexpriment le RM6P
Tissus
cancéreux
Normal
Cancer
16
31
22
100
Tissus
hyperplasique
31
% de cellules marquées
0-10
10-30
30-60
60-100
•
Spécificité du marquage du tissu cancéreux
Cap d’Agde 2016
+ RM6P libre
Surexpression du RM6P
comme diagnostic du cancer
de la prostate. Etude réalisée sur 126 cas. Brevet CNRS 2015
25
Synthèse de molécules permettant de cibler le RM6P
 Analogues du Mannose 6‐phosphate: M6C
‐ Molécules synthétiques avec une meilleure affinité pour le RM6P que le M6P
‐ Les analogues ont une plus grande stabilité plasmatique
 Couplage des AMFA sur les nanoparticules
Cap d’Agde 2016
 MSN‐M6C pour la thérapie photodynamique (PDT)
Brevet n° EP 09305647, 03/07/2009 et licence NanoMedSyn
26
Efficacité des MSN‐M6C sur le cancer de la prostate
 Etablissement de la culture primaire à partir des biopsies, traitement Laser
Laser
Control
No laser
MSN-M6C
Living primary cells (%)
par 20 µg/ml de nanoparticules et irradiation à 650 nm, 10 min (6,5 120
J/cm²) 100
70% de mort cellulaire
80
60
40
*
20
0
Control
MSN
MSN-M6C
 Lignées cellulaires LNCaP traitées avec 20 µg/ml de MSN‐M6C, irradiées (3x1.57 sec) par un laser multiphotons à 760 nm
Living LNCaP cells (%)
Cap d’Agde 2016
120
100
60% de mort cellulaire
80
*
60
• ↑ résolution 3D
• ↑ pénétration tissulaire
*
40
• ↓ photo-dommages
20
0
Control
MSN
MSN-M6C
Vaillant O et al, Angewandte 2015
27
Réaliser des preuves de concept Cap d’Agde 2016
sur des modèles animaux
28
Tester le potentiel anticancéreux des nanoparticules in vivo
 Faire pousser des tumeurs sous‐cutanées sur souris nude: 


Cap d’Agde 2016

injection sous la peau des cellules cancéreuses (1 mois)
Injection intraveineuse d’une solution contenant les nanoparticules Passage des barrières biologiques (foie, rate,…)
Opsonisation (captées par les cellules immunitaires présentes dans la circulation sanguine et dans les organes)
Si nanoparticules recouvertes de PEG :
les cellules immunitaires ne les voient pas comme un corps étranger elles les assimilent au « soi » et les laissent passer 50 nm < nanoparticules < 350 nm: accumulation zone tumorale
29
Nano‐objets pour la PDT des cancers focalisés
Laser
Principe:
Ciblage sélectif
Internalisation
Cytotoxicité
Cellule de
cancer du sein
Laser
Ciblage multiple:
Tissu sain
h
• EPR
• Ligand/ Récepteur
Si
Y
Si
• Laser
Si
Si
1O
2
Cap d’Agde 2016
1O
Si
2
Cellule cancéreuse
Zone tumorale
30
MSN‐mannose pour la thérapie biphotonique in vivo
Fluorescence (unité arbitraire)
Internalisation cellulaire des MSN-man
HCT-116
120
Tumeur
souscutanée
HCT-116
MDA-MB-231
100
MCF-7
Fibroblastes
80
Xenogreffes
60
40
20
Injection iv MSN-man, 16 mg/kg
excitation 2 photons, 9 mn, 760 nm
0
0
10
20
30
40
MSN-FITC-man (µg/mL)
Traitement
Cap d’Agde 2016
Sérum physiologique
MSN-man
MSN-man + Laser
Nombre de Poids tumeurs
souris/groupe (grammes)
Souris avec
métastases
hépatiques
Souris avec
métastases
coliques
3
1,39 ± 0,49
3
2
4
1,33 ± 0,72
2
2
4
0,40 ± 0,28
0
0
Première évidence de PDT 2 photons in vivo utilisant des nanoparticules
Gary-Bobo M et al, Angewandte 2011
31
Nanoparticules de polymères de coordination Eu/Gd
Propriétés de photoluminescence (Europium)
Nuclei
Np
Lysosomes
Chelebaeva E et al, Nanoscale 2011
Merge
Europium:
lexc: 340‐370 nm
lem: 610 nm
Capan-1
Hoechst 33258:
lexc: 352 nm
lem: 461 nm
HCT116
HUVEC
Lysotracker red:
lexc: 577 nm
lem: 590 nm
Cap d’Agde 2016
Fibroblasts
Propriétés magnétiques pour l’IRM (Gd)
‐ agent de contraste ‐ complexe non toxique Gd
Perrier M et al, Nanoscale 2015
32
Autre modèle pour les études in vivo: le zebrafish
Embryon de zebrafish
Injection intramusculaire de 20 nl de PMON‐2PS (50 µg/mL)
Injection dans le cytoplasme au stade 1 cellule (1 nl)
PMONs
Cap d’Agde 2016
Control
Embryon de zebrafish GFP
33
Exemple d’étude avec des nanoparticules de silice + or
 Abstract:
Cap d’Agde 2016
A two‐photon photosensitizer with four triethoxysilyl groups is synthesized through the click reaction. This photosensitizer allows the design of bridged silsesquioxane (BS) nanoparticles through a sol–gel process; moreover, gold core BS shells or BS nanoparticles decorated with gold nanospheres are synthesized. An enhancement of the two‐photon properties is noted with gold and the nanoparticles are efficient for two‐photon imaging and two‐photon photodynamic therapy of cancer cells. Croissant J et al, Small 2015
Croissant J et al, Frontiers in
molecular biosciences 2016
34
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