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Bioch Strct Gluc LE S2 23 24

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Licence en Education, enseignement secondaire-SVT
Semestre « S2 »
BIOCHIMIE STRUCTURALE
Pr. Mohammed RHAZI
E-mail : [email protected]
1
MOLECULES BIOLOGIQUES
 Aliments : produits dont nous nous nourrissons.
 Nutriments : produits dont nos cellules se nourrissent.
 Organisme (réactions chimiques) : aliments  nutriments
 A partir nutriments, cellules synthétisent propres Molécul. Biologiq.
 Molécules biologiques sont groupées en 3 classes :
Glucides, Lipides et Protéines
 4ème classe : A.N  matériel génétique de la cellule
«NOUS SOMMES FAITS DE CE QUE NOUS MANGEONS»
2
1
I- GLUCIDES
 Classe importante des substances naturelles.
 Représentent majeure partie de subst. organique terrestre
 Les + énergétiques des substances nutritives.
 Chaînons C (C-C) // (OH) et (CHO), (C=O), (COOH) ou (NH2).
 Largement répandus chez touts les E V.
 Structure : cellulose (Vx); chitine (invertébrés)
 Réserves énergétiques : glycogène (Ax), amidon (Vx)
 Métabolites : constitution AN, coenzymes, vitamines
 Rôle économique:
 Cellulose : milliards de tonnes / an
 Amidon, saccharose : millions de tonnes / an.
3
 Oses et Osides (DP)
Oses (simples): Aldoses (-CHO) ; Cétoses (C=O )
Osides (complexes):
 Holosides : Polymères d’oses / Liaison osidique :
(ose-O-ose)n
 Oligosides ( 2  n  10)
 Polyosides (n  10)
 Hétérosides : oses + aglycone (fraction non glucidique)
4
2
I.1. Oses (monosaccharides)




Formule brute Cn(H20)p (hydrates de C).
Caractérisés: 1 fction carbonylique (et au -) 1 fction alcool
Hydrosolubles et réducteurs (aldéhyde, Cétone)
Classés selon 2 critères :
 Nbre de C : triose, tétrose, pentose, hexose, heptose,..
 Nature de la fonction carbonylique :
 Fonction aldéhydique  ALDOSE
 Fonction cétone
 CETOSE
 Critères combinés permet de caractériser un ose:
Ex : Aldohexose : 6 C, 5 OH et 1 CHO
Majorité  chez E.V ont 5 C (pentose) ou 6 C (hexose)
5
I.1.1. Aldoses :
 Nomenclature : C-1 porte fonction aldéhyde.
 Glycéraldéhyde (+ simple) : CHO-*CHOH-CH2OH
Triose (3C), 1erose (aldoses) ayant un rôle
 1*C (asymétrique)  2 énantiomères (D et L)
1
6
3
 Aldoses dérivent du glycéraldéhyde
 Ajout d’1C (portant OH*C) entre CHO et *C (initial).
 Dernier *C  configuration (D ou L)
 Nature:  seulement isomères D
7
Classification des aldoses
8
4
I. 1. 2. Cétoses :
 Nomenclature : C-2 (Cétoses)  porte fonction cétone
 Dihydroxyacétone (+ simple): CH2OH-CO-CH2OH
Triose (3 C); 1erose (cétoses) ayant un rôle
 Pas de *C
2
9
 Ajout d’1C (portant OH *C) entre C= O et CH2OH
 Ce *C (premier ajouté)  configuration (L ou D)
 Nature :  seulement série D
10
5
Classification des cétoses
11
I.1. 3. Cyclisation des oses
I.1.3.1. Glucose (6C)
 Le + important des sucres dans la nature
 Le + stable (thermodynamiquement)  large diffusion
 Très répandu à l'état libre ou combiné.
 Principal carburant de l'organisme.
 Glycémie : [Glucose libre] dans le sang (0,80g/L).
 Réserve en glycogène (foie, muscles) ou amidon.
12
6
13
Glucose linéaire
CHO
HCOH
HOCH
1
+ H-OH
HCOH
HCOH
5
CH2OH
sur C1
Glucose cyclique
OH
HC
OH
HCOH
HOCH
HCOH
HCOH
HOCH
HCOH
HCOH
HCOH
H-OH
CH2OH
HC
CH2OH
O
O
OH
OH
HO
OH
CH2OH
Cyclisation favorisée : ROH & CHO / 1 molécule.
Cyclisation interne : liaison entre C-1 et C-5  pont osidique.
14
Conséquence : en sol. 2 G, anomères  et  , en équilibre avec forme aldéhydique ouverte
7
Mutarotation
Modification du pouvoir rotatoire d‘1solut. d'ose, accompagnant déplacement
d'équilibre entre anomères α et β si OH porté par C anomérique est libre.
 Oses n’ pas / nature sous forme linéaire.
 2 structures cycliques anomères  et  ( : + stable, groupes en position équatoriale)
  % CHO libre  déroulement réactions aldéhydes (oxydation, réduction, formation dérivés)
15
16
8
I. 1. 3. 2. Dérivés du glucose
 Glucosamine (chitosane) : OH (C-2)  NH2
 N-acétyl-glucosamine (chitine) : OH (C-2)  NH-CO-CH3
 Acide glucuronique (mucopolysacchrides) : Oxydation OH  COOH
17
I. 1. 3. 3. Fructose
 Cétohexose important
 Vgx (fruits) ; miel (autant que glucose)  saccharose
 Ax : rare (sauf dans liquide séminal)
 Combiné : oligosides (surtout Vgx); polyosides
 Pouvoir sucrant élevé ; très soluble
 Cyclisation selon même mécanisme que glucose
 Formes cycliques  - et -D-fructofuranose
 Mutarotation : forme linéaire en équilibre avec formes
furanniques (les + stables à l'état naturel).
18
9
19
2
5
 Rarement linéaire, souvent cyclisé  Cyclisation se fait entre C-2 et C-5.
  : + prédominante, + stable (2 CH2OH du côté opposé)
 Forme ouverte  pouvoir réducteur.
  dans liquide spermatique humain  mouvement des spermatozoïdes.
20
10
I. 1. 3. 4. Autres oses
Galactose
 2ème ose après glucose
 Intervient dans composition :
 Lactose = D Gal + D Glc
 Cérébrogalactosides du cerveau
 Glycolipides et glycoprotéines
Mannose
 Très rare sous forme libre
  surtout dans les végétaux.
 Glycoprotéines chez l'homme.
21
Ribose et Désoxyribose
 Aldopentoses
 Alimentation (abats)
 Composantes importantes des AN.
 Forme biologique : furanique (1 - 4) :
forme habituelle des pentoses des AN
  structure Coenz.: NAD, NADP,..
 Ribose : par réduction de fonction
alcool IIaire C 2  Désoxyribose.
 DésoxyriboseADN grande stabilité
propre à sa fonction de conservation
de l'information génétique.
22
11
I.2. Osides
Lactose
•  dans lait Mmfs : humain (69 g/l) et vache (46 g/l).
• Son goût assez peu sucré.
• Disaccharide réducteur:  DGal(14)  ou DGlu //condensation*
•
Si non stérilisé  bactéries fermentent lactose  ac. lactique (H3C-(HCOH)-COOH)**
23
Saccharose (sucrose)
•  Vx : canne à sucre, betterave
•
Raffiné (purifié, cristallisé) = sucre ordinaire
•
Produit chimiq purifié:+ abondant /alimentation
• Disaccharide :DGlu(12)DFruf
 Non réducteur /2 fctions réductrices
Glu (C1) et Fructose (C2) engagées.
•
Hydrolysable : α Glucosidase ou βFructosidase
•
Avec lactose, les seuls diholosides  à l’état libre
24
12
Maltose
•
Intermédiaire de digestion des polyosides (amidon ou glycogène) par amylases
•
Disaccharide :  DGlu (14)  (ou )DGlu  Réducteur
•
Hydrolysé en 2 molécules de Glu par maltase (enzyme spécifique)
25
Fructose > Saccharose > Glucose > Galactose > Maltose > Lactose
Sucre
Goût sucré relatif
Fructose
120
Saccharose
100
(Norme Réf. // comparer goût sucré)
(Norme établie arbitrairement)
Glucose
70
Galactose
60
Maltose
40
Lactose
20
26
13
Amidon
• 2nd Glucide bio-synthétisé après cellulose . Synthèse-stockage/plaste.
• Contient exclusivement -D-Glucose.
• Maltose : unité de base de l'amidon
•
Natif, ss forme de granules de formes diverses (1 à 200 m).
• Granules constitués d’association 2polymères : amylose + amylopectine
• Le + important pour réserve en sucres (Glu) des Vx.
• Tissus Ax en sont dépourvus.
• Le + >> aliment/Homme : céréales (40 – 90%) ; PT (65 – 85%)
• Production annuelle dépasse 55.106 t/an
27
Composition (varie selon origine)
• Amylose :
 10-25% du natif
 250-300 Glu (1 4) sans ramification (polyoside linéaire)
 Enroulement en hélice simple (liaisons H  stabilité)
28
14
• Amylopectine*:
 75-90% (composante majeure de l’amidon)
 DP 1000 (résidu Glu)
 Ramifié : Glu (14) + ramification (16) [24 -30 (1 4)]
29
Extraction
 Trempage : milieu, T°, durée (ramollissement)
 Broyage/Tamisage
 Déprotéinisation : lavages successifs au toluène
Lugol (solut. Iodure de K iodée)
KI (2 g) + I2 (1 g) + Eau (100 g).
Amidon+lugolbleue (I2 retenue/hélice
Grains extraits
d’amylose) ; disparaît à chaud // I2
libérer car hélice se détend
(poudre blanche, insoluble/eau)
Grains d’amidon
(Microscopie électronique)
30
15
Application
 Alimentaire  principal composant de farine :
Plus 50% amidons /Alimentation  confiserie, boulangerie
 Industriel : transformé/procédés physiques/chimiques/biologiques
en amidon modifié  pharmacologie, cosmétologie, plastiques
biodégradables (environnement), empesage des vêtements (cols de
chemises...), etc.…
31
Glycogène (Amidon AX) :
 Réserve  / tissus : foie, muscles Mmfs, insectes ou mollusques.
 Structure  Amylopectine, sauf plus ramifié 8-12 (1 4)
Chaînes ramifiées + courte et +compacte // amylopectine.
Longueur de chaîne latérale 10-14 Glu.
 105 Gl (foie)  PM 16 Millions (varie selon son origine)
 Organisme capable de stocker 600 g de Glycogène
 Stock principal  / foie (adulte : 200 g) et muscles (100 - 300 g).
Cerveau, gd utilisateur Glu :100 mg/min (mais réserve limitée 10-20 g)
 Soluble / eau froide (Contrairement à l'amidon).
32
16
Extraction
• Découper échantillon (foie, muscle, moules ou huîtres)
• Broyer / acide trichloroacétique* (4 %).
• Répartir broyat / tubes de centrifugation
• Centrifuger à 5000 t/mn (5 mn). Récupérer surnageant.
• Ajouter alcool (95 %) au surnageant pour précipiter glycogène
• Centrifuger à 5 000 t/mn. Récupérer le culot (glycogène).
• Dissoudre/H2O puis reprécipiter par l'alcool pour purifier.
• Glycogène isolé + goutte d’iode (lugol)  coloration spécifique
Glycogène se colore
en brun acajou
*CH3COOH + 3Cl2 → CCl3COOH + 3HCl
33
Applications
• Alimentaire : utilisées / aliments comme gélifiant (confitures),
épaississant, texturant, émulsifiant et stabilisant (produits laitiers).
Récemment, utilisées comme remplaçant de graisse ou du sucre /
aliments à basse teneur en calories
• Pharmaceutique : contribuent aux activités anti-métastasique,
immunostimulante, anti-ulcéreux, anti-néphrétique, anti-typhoïde,
anti-diarrhée, anti-cholestérol,…
• Autres applications: films biodégradables, agents d’apprêtage
pour papier textiles, Mbs d’ultrafiltration
• Marché mondial en produit plus 20000 t/an.
34
17
Cellulose
• Plus de 50 % de biomasse/Terre.
• Constituant de paroi cell Vgle.
• Ch.linéaire (non ramifiée) : -D-glucopyranose liés en C1 /C4
 liais (1 4) entre Glu : caractéristique chimique fondamentale
• PM 500 000 (3000Glu) – 5 M ( cellulose native, 30000 Glu).
• PM élevé  Insolubilité/eau : caractéristique physique principale.
 Vx produisent 50-100 Milliards de t / an.
 Coton, papier filtre = cellulose pure à 98 %.
 Source : Bois, coton, maïs, blé
35
Extraction
Isolement difficile
 Chlore /Etain, T° 20-70°C, qlques h.
 Solution NaOH (3 à 4M), sous azote
36
18
Réactivité
• Problème majeur de transformation de cellulose en dérivés est
l’accessibilité difficile aux hydroxyles du fait des associations.
 difficulté d’obtention des dérivés polysubstitués ;
0  DS  3. si DS = 3  polymère persubstitué.
• Pour DS maximum, on procède par 1 gonflement préalable de
cellulose (industrie, + part des dérivés cellulose ont DS  3).
37
Applications
• Très utilisée ss forme coton, papier sans gde transf. de sa struct.
• Nitrate de celluloses: Cellulose + ac. Nitrique (H2SO4 concentré)
 nitrate de cellulose (R-O-NO2).
* Si nitration poussée (P2O5 ou AC2O) composé explosif
* Si nitration moins intense  Celluloïd , matière plastique
utilisé en photographie et cinématographie
(son usage abandonné du fait de sa gde inflammabilité et de sa conservation difficile)
38
19
• Acétate de cellulose : obtenu//acétylation totale (AC2O + H2SO4 )
de cellulose extraite du coton/pulpe de bois  produit filé en fils
destinés au tissage (rayonne) ou extrudé en film (cellophane),
bandes magnétiques, filtres de cigarette..//industriellement le +
• Carboxymethylcellulose (CMC): traitement Cellulose/M. alcalin
par ac. chloracétique (ClCH2COOH). Attaque se fait sur OH-6
OCH2-COOH. CMC commercialisé : résines échangeuse d’ions
• Méthyl-cellulose : anti-mousse, adhésifs, gélifiants, stabilisants.
(pas toxique//homme, utilisée comme additif pharmaceutique alimentaire/laxatif
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Chitine
2ème biopolymère abondant trouvé en nature après cellulose
 Idem cellulose sauf Glu aminés ou glucosamines
 Poly [β-(1 4)-2-acétamido-2-déoxy-D-glucopyranose
40
20
Chitine en Nature
 Crustacés : exosquelette (07-36%)
 Mollusques: plumes (Céphalopode, 40%)
 Insectes : cuticule (1,4 % du Pds frais)
 Micro-organismes : > 20 % du poids
 Ver annelés : soies
 Champignons :parois cellulaires
 Algues: parois cellulaires (chlorophycées)
41
Extraction
 Carapaces : lavées, séchées , broyées
 Déminéralisation : bains acides
 Déproteination : bains alcalins
CHITINE
(DA 100%)
42
M. Rhazi & al. Polym Int 49 (2000) 337-344
21
N-désacétylation
43
• Alimentaire
– (Coagulant) séparer particules colloïdales et dispersées au
niveau des déchets alimentaires industriels.
– (Immobilisant) désacidifier extraits café, jus fruits,
épaississant et stabilisateur  conserver nourriture
Ex: CM-chitos film protecteur, prolonge durée stockage.
CasTomate : peut retarder mûrissement, survenue de couleur rouge
et texture molle de 11 jours; Retarder de 10 jours, stabilisation de sa
teneur en vit. C. Retarder pourrissement du fruit de 9 jours.
• Cosmétique (Filmogène)
 /crèmes ou lotions de soin pour peau ou cheveux
(améliorer souplesse cheveux);soin oral (dentifrice, chewing-gum)
• Agriculture (Immunologique)
Enrobage semences des céréales  meilleure résistance lors
germination  accroissement du Rdt protéique des céréales,
renforce système racinaire et favorise épaississement de tige.
 meilleurs Rdts lors de période de récolte
44
22
• Pharmaceutique (Biocompatible)
Encapsule drogues, support médicaments
• Biomédical
– (Cicatrisant) fabriquer fils de suture ou peau artificielle
 cicatrisation des brûlures et reconstitution de l’épiderme
+ rapidement et - douloureuse qu’avec produits habituels
 peau ne présente aucun risque de rejet.
– (Immunologique) stimuler cellules impliquées/défense
immunitaire vis-à-vis cellules tumorales et agents pathogènes
– (Hypocholéstérolémiant) piéger lipides  amaigrissants
(Japon, Europe et USA)
45
• Traitement des eaux et des rejets (polycationique)
Recyclage des eaux (floculant pour clarifier l'eau, réduire les odeurs).
Elimination teintes, colorants, insecticides, produits pétroliers,
Récupération des ions M  Complexation
 M. Rhazi & al. Polymer, 43(4): 1267-1276 (2002)
M. Rhazi & al. European Polymer Journal, 38(8): 1523-1530 (2002)
M. Rhazi & al. Phys. Chem. News 39 (2008) 136 - 141.
46
23
Agar-Agar (gélose):
 Algues marines (rouges)
 Polyoside cplexe D et L-Gal (13)
irrégulièrement sulfaté
 Forme des gelées pour milieux nutritifs bactériens
Alginates /algues brunes  polyuronides linéaires
(2ac. : ac. β-D-mannuronique et α-L- guluronique liés par α(1-4).
Pectines : paroi cell. ; ch. d'ac. uroniques : ac. galacturoniques (α-1,4) avec
rhamnose lié en α(1-2); arabinanes ou galactanes.
Alginates
Pectines
47
Ac. hyaluronique:
• Tissu conjonctif, humeur vitrée (corps hyalin), peau.
• Le + simple des glycosaminoglycanes.
• [Ac. glucuronique + N-acétylglucosamine]n ; ß 1-3 et ß 1-4
48
24
Chondroïtines sulfates (CS):
• Tissu conjonctif (cornée), cartilage, os et derme.
• Motifs : [Ac. β D glucuronique + N-acétyl galactosamine]n.
• Très riches en charges  en raison gpements sulfates et uronates
Dermatane sulfate (DS)
• Derme, tendon, ligament, cartilage fibreux
• Acide L-iduronique + N-acétylgalactosamine-6- sulfate
Kératane sulfate (KS)
• Cartilage, cornée
• Galactose + N-acétyl-glucosamine-6-sulfate,.
49
Héparine
• Secrétée par mastocytes
• / nbreux tissus (foie, poumon, reins, cœur, aorte).
• Motif :[Acide α D glucuronique + D Glucosamine N-Sulfate]n
•
PM 17000-20000.
• Anticoagulante : inhibe prothrombine  Thrombine.
• Activateur lipoprotéine-lipase (enz. libère AG/triglycérides//protéines sanguines)
• In-vivo, inhibiteur de la ribonucléase.
50
25
Inuline
• Polyoside permet//Vgx de constituer réserves à partir saccharose
• Résulte d’1processus de transfructosylation qui peut se formuler :
Glu - Fru + Glu - Fru → Glu - Fru - Fru + Glu
• Par élongation successive, possible d’obtenir molécules qui, pour
1reste glucose, comportent de 3 à 36 unités fructose.
• Produit cplexe obtenu en condensant à haute T° 89 % de D-Glu et
10 % de D-sorbitol, en présence de 1 % d’acide citrique.
• PM1000, soluble/eau, utilisé/boissons comme fibre soluble/confiserie
en association avec édulcorants intenses, comme substitut de sucres.
• Hypocalorique (1 Kcal/g), se comporte comme fibre alimentaire.
• En raison de ses propriétés physiologiques, l’inuline a récemment
trouvé des débouchés dans le domaine alimentaire.
51
52
26
Glycoprotéines
• Hétéroprotéines: fraction glucidique + protéique (Lais. Covalente)
• Très répandues/nature avec fctions biologiques très variées.
•
Renferment plus de 5 % de glucides //4 groupes :
 Oses : D mannose ; D galactose
 6-désoxyhexoses : L fucose (6 désoxy L galactose)
 Glucosamine et galactosamine souvent acétylées
 Acide N-acétylneuraminique (NANA) souvent terminal qui donne
leur caractère acide aux glycoprotéines.
• Enchaînement glucidique souvent ramifié
• Liais. entre groupement réducteur Terminal (glucidique) et 1AA de Prot:
 Fction alcool d’1 AA (Ser, Thr)  liaison O-Glycosidique
 Fction amide de Gln ou Asn  liaison N-glycosidique
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• Rôle biologique des fractions glucidiques
– Interaction : cellule-cellule : contact, transfert information,…
– Influence : repliement des protéines.
– Protection : protéines contre protéases.
– Spécificité : Gpes sanguins (dépend fraction glucidique des glycoprotéines GR)
• Principales glycoprotéines
– Hormones hypophysaires : LH et FSH.
– Glycoprotéines du blanc d'œuf : ovalbumine.
– Glycoprotéines du plasma
54
27
I.3. Caractérisation des Glucides
*Oxydation par liqueur de FEHLING
Permet de mettre en évidence présence d'aldoses et de sucres réducteurs.
R-CHO + 2Cu(Tart)22– (bleu) + 5 OH–→ R-CO2– + Cu2O(s) (rouge brique) + 4Tart– + 3H2O
Ion ditartratocuivre (II)
Hydroxyde de Cu (II)
Ion cuivre oxyde aldéhyde  1ac. carboxylique + 1précipité rouge brique d'oxyde cuivreux
Acide tartrique (HOOC-CHOH-CHOH-COOH)
Solut. A : 18 g de sulfate de Cu/250 mL d'eau. Solut B : 87 g Ac. tartrique et 35 g de NaOH / 250 mL d'eau.
Réaction
Gpes Respons.
Mode opératoire
Résultats
-2 ml de solution glucidique
- 2 ml de solution de Liq Fehling ( solut. A et B)
Solut. A : 18 g sulfate de Cu /250 mL eau
Test de
Fehling
Pouvoir réducteur
oses et diosides Solut. B: 87g Ac. Tartrique+35g NaOH+250mL eau
(sauf saccharose) Mélanger lentement 2 solutions en agitant
doucement.
Oxydation par Liq.
1er  bleu clair Cu(OH)2 se forme et va se dissoudre
FEHLING (spécifique
car Cu "préfère" se complexer aux ions tartrates pour
des aldéhydes)
ion ditartratocuivre (II) : Cu(Tart)22– bleu foncé
Solut. obtenue: liq de Fehling, ne se conserve pas
longtemps, doit être fraiche
Réaction
Réaction
de Tollens
Gpes Respons.
55
Mode opératoire
Précipité
d'oxyde
cuivreux
dont Teinte
varie du
jaune au
rouge
orangé
Résultats
Pouvoir réducteur -2 ml de solution glucidique
oses et diosides - 2 ml de solution de Tollens
(sauf saccharose) Solut. Tollens : cplexe nitrate Ag /solut. ammoniac
Dépôt d’Ag sur
parois  Miroir //
«test miroir d‘Ag»
([Ag(NH3)2]+ ; NO3−)
Cétones s’oxydent
Au cours réact, ion Ag oxyde aldéhyde pour  ion pas en ac.carboxyliq
carboxylate selon réaction bilan d'oxydo-réduction : // ne réagissent pas
Propriété oxydabilité
au test de Tollens
R-CHO + 2Ag+ +3HO− → RCOO− +2Ag + 2H O
Spécifique des
Aldéhydes
qu’ont pas cétones.
(aq)
(s)
2
56
28
Réaction
Groupes chimiques
responsables
Mode opératoire
Résultats
- verser/Tube qlques gouttes de solut glucidique puis
Réaction
Réaction positive
2 ml d'une solution de Na2CO3 à 20 %
de Bosc avec sucres réducteurs - ajouter 1goutte d'o-dinitrobenzène à 1% dans l'alcool
- chauffer doucement pendant 1 minute.
Groupes chimiques
responsables
Réaction
Réaction
de Rubner
Mode opératoire
Coloration
violette
Résultats
- mettre 2 g d'acétate de plomb /Tube à essai
- ajouter 2 ml de solution concentrée glucidique
Réaction positive
- porter à ébullition jusqu'à dissolution du sel
avec sucres réducteurs
- ajouter qlques gouttes de soude puis
d'ammoniaque
Coloration
jaune
puis rouge
57
Réaction
Gpe resp
Mode opératoire
Utiliser tube à essai très propre, le nettoyer en faisant
bouillir à l’intérieur 1peu d’ac. nitrique et bioxyde de Pb.
Rincer soigneusement à l’eau distillée.
Réduction
Pouvoir
A la pipette, verser/tube 5 ml solut de nitrate d’Ag à 2%
des sels
réducteur
et ajouter avec précaution ammoniaque dilué.
d’argents
des oses
Il apparaît précipité qui se redissout /excès de réactif.
Résultats
Après qlques mn, il
se dépose sur tube
une couche
brillante d’argent
métallique (tube sale
ne permet pas à cette
Ne pas dépasser qtité exactement nécessaire pour cette redissolut. couche d’adhérer au
verre)
Ajouter 5 ml solut. glucose à 0,2% et mettre /bain-marie.
Réaction
Gpes resp
Mode opératoire
Résultats
/Tube, verser 2 ml de réactif de Nylander (solut alcaline de
nitrate de bismuth (NO3Bi(OH)2) maintenu en solut. par sel de Seignette
(tartrate soude et potasse))
Réaction de
NYLANDER
Pouvoir  Ajouter 5-10 ml de solut. glucose 0,2 %.
réducteur
des oses Agiter et porter à ébullition. Maintenir celle-ci quelques mn.
Réact parfois préférée à LiqFehling pour détecter glucose/urine
Précipité
noir de
bismuth
métallique
libéré par
réduction
Réactif de Nylander n’est en effet réduit ni par urates, ni par créatinine.
58
29
*Formation d’osazones
Forme des cristaux d’osazone spécifique de l’ose initial.
Ex:*Galactose Galactosazone (lamelles isolées/groupées diverses manières)
*Glucose  Glucosazone (jaunes fins et allongés regroupés en pinceaux)
*Arabinose  Arabinosazone (longs filaments recourbés /enchevétrés)
*Xylose  Xylosazone (longues aiguilles de tailles inégales).
*Lactose  Lactosazone (groupés en pelotes d'aspect d'un oursin).
*Maltose  Maltosazone (lamelles regroupées en rosaces irrégulières)
 /chaud : Ac. Acétique + phénylhydrazine + oses
 osazones qui cristallisent facilement.
 Aspect cristaux identifient Oses.
 1er temps 1 phénylhydrazine réagit avec gpment
carbonyle (C1/Aldoses, C2/Cétoses) pour 
1phénylhydrazone ; puis 2 phénylhydrazines
réagissent avec C voisin  osazone cristallisé.
Réaction
Gpes respons.
Mode opératoire
5 ml solut. Glucidique
Oses et
holosides
réducteurs
Résultats
 Agiter; placer tube au bain
marie bouillant 30-60 min.
Contenu du tube devient jaune et se trouble
par apparition de cristaux pour glucosazone
qui précipite à chaud. Pour la lactosazone et
maltosazone : idem mais la précipitation ici
se fait qu'après refroidissement.
*Réactif Phénylhydrazine :
5 ml phénylhydrazine
Observation : avec pipette, prélever goutte
de solut cristallisée, la placer sur une lame,
recouvrir d’1lamelle et observer au scope :
5 ml phénylhydrazine*
Formation
d'osazones
59
•5 ml ac. éthanoïque pur
 Glucosazone: ss forme cristaux jaunes fins
et allongés souvent regroupés en pinceaux
 Galactosazone: apparait en lamelles
isolées ou groupées de diverses manières.
• 5 g chlorhydrate de
 Arabinosazone : cristallise en longs
filaments recourbés et enchevétrés
phénylhydrazine
 Xylosazone : longues aiguilles de tailles
•7 g d'acétate de Na
inégales.
•Ajouter 10ml Ac. acétique cc,  Lactosazone : cristaux groupés en pelotes
qui ont l'aspect d'un oursin.
chauffer très doucement,
 Maltosazone : forme des lamelles qui se
compléter à 100 ml et filtrer .
regroupent en rosaces irrégulières.
Réactif se conserve mal /temps
•50 ml d'eau distillée
ou
60
30
Cristaux d'osazones photographiés au microscope optique
Glucosazone (x 250)
Maltosazone (x 250)
Lactosazone (x 250)
Maltosazone (x(x
Galactosazone
250)
160)
61
*Oxydation par HNO3 (à chaud)
 Oxydation Forte : ac. Aldarique, diacides à fction carboxylique sur C1 et C6.
CHO – (CHOH)4 – CH2OH  COOH - (CHOH)4 – COOH
 Ex. : Glucose  Acide glucarique ; Galactose  Acide galactarique
 Si C1 protégé, oxydation portera sur C6  monoacide uronique .
 Cétoses : dégradés/ces conditions. Chaîne rompue au niveau de fonction cétone.
62
31
*Oxydation par Br2 en solution aqueuse
 Oxydation Douce, Br2 (ou I2) en milieu faiblement alcalin et à froid oxyde
spécifiquement fction aldéhyde des aldoses et transforme aldose en ac. aldonique
selon mécanisme : R – CHO + Br2+ 2NaOH R – COOH + 2Br- + 2Na+ + H2O
 Ex: Glu Ac.gluconique; Man Ac.mannonique; Gal Ac. Galactonique
 Cétoses ne sont pas oxydés dans ces conditions (oxydation douce).
 À chaud et en milieu alcalin, Cétoses s'isomérisent en Aldoses : Tautomérisation
63
*Oxydation par l’Iode en solution aqueuse
• Cas des aldoses
Aldose  acide aldonique
Ex: D-Glu  Ac. D-gluconique (oxydation en C1)
R – CHO + I2 + 2NaOH

R – COOH + 2I- + 2Na+ + H2O
• Cas des cétoses : groupement cétone n’est pas oxydé par l’iode.
64
32
*Oxydation périodique (IO4H) :
• La + importante réaction d’oxydation de fonctions alcools IIaires
• Détermination structures d’oses: HIO4  pyrannose ou furannose
 Ose à 6C // 5HIO4  5 coupures.
 Fonction «alcool IIaire» CHOH  H – COOH (Ac. Formique)
Fonction «aldéhyde» CHO
 H – COOH (Ac. Formique)
 Fonction «alcool Iaire» CH2OH  H – CHO (aldéhyde formique (méthanal))
 Fonction «cétone» C=O
 CO2
 Furane ou purane précisée par étude des produits formés (Aldéhyde Formique, Ac. Formique)
et détermination du nbre de molécule d’ac. périodique consommée.
65
*Réduction
 Oses se réduisent en polyols par voie enzy. (hydrogénation catalytique) ou
chimique soit par action d'1borohydrure alcalin tel que LiBH4 ou NaBH4.
 Polyalcools (ou polyols) obtenus par réduction de fction aldéhyde en alcool.
Ex: Glu Glucitol (Sorbitol) ; Gal Galactitol (Dulcitol) ; Man Mannitol
 Cétoses: obtenir 2 polyalcools épimères car Réduction du C= O  1*C.
Ex. : Fructose  50 % Sorbitol + 50 % Mannitol
 Aldéhydes sont des composés très réducteurs.
Aldéhyd. réagissent + vite que cétoses (car carbonyle cétoses le + encombré est le - électrophile)
66
33
*Méthylation
• Permet de fixer CH3 sur OH  (R-O-CH3).
• Par iodure de méthyle (ICH3) et l’oxyde d’argent (Ag2O) / (Purdie),
ou sulfate de diméthyle (CH3)2SO4 en M. alcalin (NaOH) /(Haworth)
• Peut être :
* ménagée : 1 seul OH méthylé,
* totale = perméthylation : tous OH libres méthylés
R – OH + ICH3 R – OCH3 + H + + I –
• Permet détermination :
° structure des cycles (pyranose ou furanose).
° enchaînement des oses/oside
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*Réaction d'addition
Fonction en C-1 (C-2) peut fixer groupement alcool ou amine :
• Si alcool  liaison O-osidique, bloquant libre rotation d'OH autour
du C-anomérique et donc blocage de configuration  ou .
Elle fixe les oses dans leur conformation α ou β.
In vivo, cette réaction d'addition s'effectue entre 2oses ou 1ose et
fonction alcool d’1 AA (Ser ou Thr).
68
34
• Si amine  liaison N-osidique.
In vivo, cette réaction entre 1 ose et fonction amine d‘Asn, ou entre
1ose et fonction amine du radical de Lys.
69
70
35
*Réaction d'estérification
• Idem au schéma classique d‘1 réaction d'estérification entre
1acide et 1alcool : acide + alcool → ester + eau
• Esters monophosphoriques : 1P + fonction alcool Iaire.
Ex: -D-glucose-6-phodphate (C(6) -O-PO3H2 )
• Esters monophosphoriques cycliques: 1P + 2OH d’ose
Ex: Adénosine 3’-5’-Monophosphate (AMPc) : régulat.Glucid., act. hormonale.
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 Esters diphosphoriques : Ex: Fructose-1-6-diphosphate
 Esters triphosphoriques : Ex : ATP
 Esters phosphoriques: 1P + 2 fonctions alcool portées par 2
oses   base de l’édifice des AN
72
36
Réaction
Gpes respons
Mode opératoire
Résultats
Consiste à mélanger substance à tester
avec réactif de Molish, l’α-naphtol.
Apparition d'anneau
2 ml de solut.glucidique
violet
à la surface de
2-3gouttes réactif Molisch (solut. Alcoolique α-naphtol 1 % )
Couler long de paroi du tube 2ml d'ac sulfurique cc. séparation de 2liquid
en même temps qu‘1
Réaction
Réaction
coloration
de Molisch
Tous glucides (Mono-, di- et polysaccharides)
verte/phase  due à
générale
réagissent normalement //cette réaction.
action d'ac sulfurique
(test
α- caractérisatio
sur le phénol.
n Glucides Cas aussi AN et glycoprotéine car hydrolysés en
naphtol )
Monosach. par Ac. minéraux forts
Si réaction +; addition
d’ac. Sulfurique
Pentoses déshydratés en furfural,
hexoses déshydratés en 5-hydroxyméthylfurfural.
coloration rouge
Aldéhydes : se condenser avec 2molécules naphtol violacée.
 1composé de couleur violette
73
Réaction de Molisch
Ex: réaction du glucose
74
37
Réaction
Réaction
de
Séliwanoff
Gpes resp
Mode opératoire
-2 ml de solution glucidique
- 2 ml d'acide chlorhydrique concentré
- 2 ml solut. alcoolique de résorcinol à 1%
Réaction - porter au bain-marie 5 mn, laisser refroidir.
positive
A chaud/M. acide, cétoses se déshydratent + rapidement qu’aldoses
avec
cétoses Test nommé d'après Theodor Seliwanoff le chimiste qui l’a conçu.
et
Hydrolyse acide Polysacc  sucres simples + dérivés furfuraliques
aldoses
Furfural réagit ensuite avec résorcinolcouleur rouge cerise foncée
Résultats
Coloration
rouge
Aldoses peuvent réagir légèrement pour  couleur rose pâle.
Saccharose donne résultat + /ce test car  fructose et glucose.
Réaction ou test de Seliwanoff
75
Réaction
Réaction
de Bial
Gpes resp
Mode opératoire
-2 ml de solution glucidique
- 2 ml de réactif de Bial (solut. d'orcinol à 0,2 % /HCl concentré)
- porter au bain-marie bouillant
Réaction - ajouter gouttes de chlorure ferrique à 1 %
des
Réactif de Bial (orcinol + HCl + chlorure ferrique)
pentoses
 En milieu acide, pentoses se déshydratent pour former furfural.
Résultats
Coloration
verte
Furfural se condense avec orcinol développant coloration verte
1précipité peut se former si concentration est suffisante.
Test de Bial
76
38
Réaction
Réaction
de Berg
Gpes resp
Mode opératoire
Réaction
Réaction
de Ekhert
Réaction
Résultats
mettre pointe de spatule de sucre solide/un tube à essai
Réaction  ajouter 10 ml d'eau de brome fraiche
chauffer 15 minutes au bain-marie
des
aldoses.  porter à ébullition pour chasser l'excès de brome
ajouter gouttes solut. perchlorure de fer + 2 gouttes HCl concentré
Mode opératoire
Coloration
jaune
Résultats (coloration)
-rouge foncé avec le levulose
mettre 1spatule de sucre/coupelle porcelaine
- jaune avec l'arabinose
ajouter qlques gouttes de potasse 2N
-jaune clair avec glucose, maltose, xylose
ajouter ensuite qlques pastilles potasse
-jaune citron avec le lactose .
Gpes respons
Mode opératoire
Résultats
Dans un tube à essai, verser à la pipette 2 ml d’une solution
Réactif de
Réaction de d’arabinose ou de pentose et un égal volume de la solution
Wheeler et caractérisation chlorhydrique de phloroglucinol. Chauffer jusqu’à apparition
Tollens
des pentoses d’une coloration rouge violacé. Constater que la réaction est
négative avec une solution de glucose à 1%
Réaction
Groupes responsables
Réaction
de Betti
Réaction positive
avec les pentoses
Réaction Gpes resp.
Mode opératoire
-dissoudre une petite spatulée d'alpha naphtol
dans 2 ml d'acide sulfurique concentré ,
-ajouter très peu de sucre solide et agiter .
Mode opératoire
Coloration
rouge
violacé
Résultats
Coloration
bleue
77
Résultats
- des ml solut (empois d'amidon, glycogène)
-2 à 3 gouttes de réactif iodo-ioduré
Solut. de Lugol (solut. iodure de potassium
iodée ou eau iodée):1 solution de diiode (I2)
-bleue//amidon
Polyosides et d’iodure de potassium (KI) /eau
Réaction
(glycogène, // médecin français Jean Lugol.
à l'eau
-brun acajou/glycogène
amidon, Iodure K (2g)+Iode métalloïde
iodée
cellulose) I (1g)+Eau(100ml)
2
-bleue//cellulose
Formule prescrite sous le nom de « lugol »
à 1 % ; formule officielle de la pharmacopée
française est : «soluté iodo-ioduré fort
dit de Lugol». Elle comporte 1 % d’iode et
2 % de KI.
78
39
• Propriétés physiques :
Hydrophiles, solides cristallisés, saveur ± sucrée, très solubles/eau
peu solubles /alcool, insolubles /solvants organiques
• Propriétés chimiques :
Les plus réactifs: /aldoses (C1 puis C6) ; /Cétoses (C2).
• Sucre + liqueur de Fehling  rouge (reducteur)
• Aldose + iode  
• Cétose + iode  
• HIO4  pyrannose ou furannose
• Osazone : cristaux dépend du sucre
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40
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