Développement et Plasticité du Système Nerveux Licence de Psychologie UE Libre 2ème année – S3UE4 ● ● ● Important : Ce document est destiné aux étudiants en Psychologie qui suivent l’unité d’enseignement libre S46 UE5 à l’Université de Rouen. Il sert de support illustré au cours de V. Roy mais ne dispense en aucun cas de la présence aux enseignements. Une version PDF est téléchargeable sur mon site d’enseignement ou vous trouverez également des annales des examens ainsi que des liens connexes au cours : http://psychobiologierouen.free.fr Pour me contacter : [email protected] ou bien Bâtiment Principal des Sciences 5ème étage Ce document a été réalisé à partir d’illustrations trouvées sur Internet ou dans les ouvrages cités cidessous. Si toutefois vous estimez qu’une illustration ne devrait pas y figurer car protégée par des droits de copyright merci de me prévenir afin que je la remplace. This document was made of some illustrations found on Internet or in the books that are cited below. If you estimate that an illustration should not be used here since it is protected by copyrights just tell me and I will replace it. ● ● Development of the Nervous System : Sanes, D.H. ; Reh, T.A. ; Harris, W. A. (2nd édition, 2006), Editions Elsevier Neurosciences : Purves, D. ; Augustine G.J., 2e éd., Editeur : De Boeck (2003). ● ● Psychobiologie : Rosenzweig, Mark R. ; Leiman, Arnold L. ; Breedlove, S. Marc, Editeur : De Boeck université (1998) ● ● ● ● BU Sciences Mont-Saint-Aignan Salle Fresnel CD 612.8 NEU BU Lettres Salle de lecture 159.9 ROS BU Sciences Mont-Saint-Aignan Salle Fresnel 612.821 ROS Cerveau et comportement : Kolb, B. & Whishaw, I., Editeur : De Boeck (2002), 1ère Edition Psychophysiologie (Tome 1) : Caston, J, Editeur : Ellipses (1993)BU Sciences Mont-Saint-Aignan Salle Fresnel 612.8 CAS CHAPITRE 1 : Les débuts du développement cérébral ● Environ 100 milliards de Neurones dans un cerveau humain adulte. ● 200 à 300 milliards de cellules gliales ● Jusqu'à 1000 / 10 000 connexions par neurone ● 100 billions de synapses dans le cerveau (1014) ● 250 000 neurones / minutes à l'apogée du développement cérébral ● Le cerveau est certainement l'objet le plus complexe de l'univers... 1.1 Les grandes phases du développement cérébral ● 6 phases ● Neurogénèse ● Migration cellulaire ● Différenciation ● Synaptogénèse ● Mort neuronale ● Réarrangement synaptique ● Le timing de ces différents processus n'est pas linéaire et se poursuit bien après la naissance pour certaines phases Evolution du nombre de synapses au cours de la vie Évolution de la densité synaptique avec l'âge ● Le développement de l’organisme et particulièrement du cerveau dépend de la réalisation d’un programme génétique, en interaction avec des facteurs de l’environnement – Environnement utérin – Environnement cellulaire – Monde extérieur Terminologie ● Embryon : Jusqu’à 8 semaines après la fécondation Jusqu’à 10 semaines après l’aménorrhée ● Fœtus : A partir de 9 semaines après la fécondation A partir de 11 semaines après l’aménorrhée ● Stade Carnegie n°23 - 56ème Jour Taille de l’embryon = 23 / 32 mm 1.2 Formation initiale du SN Spermatozoïde (n = 23 chr.) + Ovule (n = 23 chr.) ▼ 1 cellule œuf (2n = 46 chromosomes) ZYGOTE ▼ Puis divisions par mitoses 1 cellule mère donne 2 cellules filles identiques du point de vue génétique Cellule oeuf 1ère division par mitose à 12h 3ème jour = Stade Blastula (Blastocyte) 1.2.1 Processus de Gastrulation : Mouvements morphogénétiques (invagination) des cellules et des tissus afin de former un embryon avec des « feuillets » distincts 1.2.1 La Gastrulation ● ● Formation d’un embryon à trois feuillets : – Feuillet externe = ectoderme – Feuillet intermédiaire = mésoderme – Feuillet interne = endoderme Ce stade est atteint à l’âge d’1 semaine pour un embryon humain Résumé des stades d'évolution 1.2.1 La Gastrulation ● ● La gastrulation permet de déterminer un axe antéropostérieur Elle permet aussi la formation de la corde dorsale (ébauche de la future moelle épinière) 1.2.2 La Neurulation Stade de formation du futur système nerveux (18ème jour) On observera : ● Formation du tube neural (ébauche du SN) ● Mouvements morphogénétiques ● Activité mitotique intense ● Début de différenciation de certaines cellules nerveuses ● ● ● Le tissu à l’origine du SN est l’ectoderme Il se différencie en Neuroectoderme sous l’influence de la chorde qui libère des signaux inducteurs (molécules) Les cellules de l’ectoderme deviennent des cellules précurseurs neurales (ce ne sont pas encore des neurones) Neurulation : 20ème jour ● ● Epaississement de l’ectoderme en position centrale (au dessus de la corde) qui permet la formation de la plaque neurale Mouvements morphogénétiques : les rebords de la plaque (crêtes neurales) et le fond (plancher neural) forment la gouttière neurale Neurulation : 20ème jour ● Apparition d’une polarité en fonction de la proximité ou non des cellules ectodermiques vis-à-vis de la chorde – Evolutions différentes pour les régions proches et celles éloignées – Production de leurs propres facteurs d’induction - - + Neurulation : 22ème jour ● Les crêtes neurales se rejoignent : Apparition du Tube Neural ● A l’avant l’ectoderme se développe en Plis Neuraux ● Le Tube Neural permettra la formation de la moelle épinière et les Plis Neuraux du cerveau Neurulation : 24ème jour ● Poursuite du développement : mouvements morphogénétiques, mitoses et différenciation des cellules précurseurs neurales sous l’influence de facteurs d’induction Neurulation : 24ème jour ● ● Selon leur éloignement vis à vis de la chorde les cellules auront un devenir particulier. De plus les cellules auront un devenir spécifique selon l'emplacement de migration (cf. induction neurogène) 1.3 Formation des grandes parties de l’encéphale ● Morphogenèse et apparition de différentes régions dans le Système Nerveux – Prosencéphale – Mésencéphale – Rhombencéphale – Environ 28 jours – La lumière du tube neural est conservée et permettra la formation des ventricules cérébraux 1.3 Formation des grandes parties de l’encéphale ● Télencéphale ● Diencéphale ● Mésencéphale ● Métencéphale ● Myélencéphale ● Environ 44 jours Système nerveux complet : 56 jours environ Embryologie comparée 1.4 L'induction neurogène ● ● ● ● Transformation des cellules de l’ectoderme en cellules précurseurs neurales, puis des cellules précurseurs neurales en neurones, sous l’influence de molécules appelés des facteurs d’induction. Ces facteurs d’induction sont fabriqués par des cellules, par exemple celles de la chorde dorsale, à partir d'un programme génétique. Les facteurs d'induction sont ensuite capables de moduler l’expression du programme génétique d'autres cellules dont ils vont orienter le développement. Ces cellules pourront à leur tour produire des facteurs d'induction. 1.4 L'induction neurogène CELLULE de l'ectoderme NOYAU CELLULE Récepteurs membranaires ADN : programme génétique (ex: chorde dorsale) Induction Neurogène Modification de l'expression génétique de la cellule. Facteur d'induction Signal d'Induction Neurogène Production de protéines nécessaires à la transformation de la cellule ectodermique en précurseur neural Facteur d'induction Production de molécules servant de signaux d'induction à d'autres cellules Fabrication ADN ● ● ● Il existe un très grand nombre de facteurs d’induction. – Facteur de transcription (TF) – Facteur de croissance des fibroblastes (FGF) – Facteur de croissance transformant (TGF) Leur production est initiée au niveau de la corde puis ensuite dans de très nombreuses structures (influence spatiale) Apparitions différentes au cours du temps (influence temporelle) 1.4 L'induction neurogène ● ● L’induction neurogène peut se faire spatialement (en fonction des localisations où s’expriment les facteurs d’induction) mais aussi de façon temporelle (en fonction de la période à laquelle ils s'expriment au cours du développement). Cela donne lieu à des cascades génétiques très complexes. Gène 1 Gène 2 Gène 4 Gène 7 Gène 3 Gène 5 Gène 8 Gène 6 ● Les gènes Homéobox (drosophile) ou Hox (homme) permettent la « segmentation » de l’organisme au cours du développement – ● Neuromères (unités de développement) Chaque neuromère pourra ensuite évoluer avec ses propres caractéristiques Complexité du développement cérébral ► Possibilité de Malformations congénitales ● Causes environnementales – ● Agents tératogènes, qui se substituent à un facteur d’induction ● Acide rétinoïque (dérivé de la vitamine A) ● Alcool (rtsp://wwwvideo.univ-rouen.fr/sav/gonzalez.rm) ● Acide valproïque (anti-épileptique) ● Thalidomide (sédatif / antiémétique) Causes génétiques – Tout type d’anomalie génétique qui perturbe l’expression d’un gène ● Délétion ● Réplication ● Trisomie CELLULE de l'ectoderme SYSTEME SANGUIN Substances toxiques (Alcool, Nicotine...) NOYAU Perturbation de l'induction neurogène ADN : programme génétique CELLULE Récepteurs membranaires Induction Neurogène (ex: chorde dorsale) Facteur d'induction Fabrication ADN Mutation Génétique Production de protéines nécessaires à la transformation de la cellule ectodermique en précurseur neural Facteur d'induction Développement Altéré ! Production de molécules servant de signaux d'induction à d'autres cellules Spina Bifida – Défaut de fermeture du tube neural ● ● ● ● – Paralysie variable Troubles sensitifs Incontinence Éventuellement retard mental Causes génétiques et / ou environnementales Spina Bifida : implication des gènes de développement PAX Anencéphalie – Défaut de fermeture du tube neural dans sa partie antérieure ● ● – Absence partielle ou total d’encéphale Prosencéphale absent Causes génétiques et / ou environnementales Hydrocéphalie – Lumière du tube neural rétrécie, taille des ventricules augmentée, compression du cortex – Causes génétiques : Lié au chromosome X Syndrome de Wardenburg ● ● ● – Surdité Spina Bifida Anomalie cranio-faciales Causes génétiques : Lié à une mutation du gène PAX3 (certain facteur de transcription ne sont pas produits) Aniridie ● ● – Absence d’iris Retard mental léger Causes génétiques : Liée à une mutation du gène PAX6 Syndrome d'alcoolisation fœtale (SAF) rtsp://wwwvideo.univ-rouen.fr/sav/gonzalez.rm Control Alcool O’Leary-Moore et al. Research & Health, in press Dysmorphie crânio-faciale ● Retard de croissance ● Malformations congénitales ● Atteintes neurocomportementales ● Troubles moteurs ● Troubles des apprentissages ● Troubles de l'attention / hyperactivité ● Suite de l'induction neurogène ● ● ● 50ème jours : l’activité mitotique se poursuit Précurseurs neuraux au niveau de la zone ventriculaire (zone qui entoure la lumière du tube neurale) 250 000 nouveaux neurones / min ● Divisions standard et divisions asymétriques : un premier pas vers la différenciation neuronale Précurseur Neural Précurseur Neural ● ● Précurseur Neural Précurseur Neural Précurseur Neural Neuroblaste ou Glioblaste Un Neuroblaste ou un Glioblaste issu d’une division asymétrique ne pourra plus se diviser (en principe…) Par contre il va pouvoir migrer (1.5) puis se différencier (1.6) 1.5 La migration des Neurones ● La migration des neuroblastes commence peu après la neurogénèse et coïncide avec la différenciation neuronale ● ● La migration des neurones se fait sur de courtes (quelques mm) ou de très longues distances (plusieurs cm) Avec la distance le nombre de milieux embryonnaires à traverser augmente considérablement – Glie Radiale ● – Régions cérébrales structurées en couches Matrice Extracellulaire ● Futures régions du SNP Migration sur Glie Radiaire Développement normal et pathologique de la structure en couche de la rétine (alternance de couches neuronales ou dendritiques). ● ● ● A : Aspect normal B : Délétion au niveau du gène cyclineD1 qui contrôle (en partie) la prolifération cellulaire C : Délétion du gène p27Kip qui sert de régulateur négatif à la prolifération Souris Reeler : Défaut de migration des cellules corticales au cours du développement ● Déplacement d’un neurone sur la glie radiale par des modifications de la forme de son corps cellulaire et de ses prolongements L’injection de Thymidine radioactive * permet de repérer l’âge des couches cellulaires (la Thymidine est « absorbée » par les précurseurs neuraux pour fabriquer de l’ADN avant une nouvelle mitose). 1.6 Différenciation neuronale ● ● Grande diversité de neurones et de cellules gliales La division asymétrique est liée à un facteur transformant : – basic Fibroblast Growth Factor (bFGF) Hypothèse du lignage cellulaire Hypothèse des interactions cellulaires Différenciation de cellules précurseurs en fonction du / des facteurs d’induction auquel(s) elles sont exposées.