La Motilité Cellulaire

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Ecole Interdisciplinaire d'échanges et de formation en biologie
Thème 2006: Le temps en biologie
La Motilité Cellulaire
Angélique Stéphanou
Equipe DynaCell, Laboratoire TIMC-IMAG, UMR CNRS 5525
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La motilité cellulaire
Plan de l'exposé
Que désigne le terme « motilité » ?
Où la motilité intervient-elle ?
Comment se déforme la cellule ?
Comment la cellule migre t'elle ?
Deux types de comportements migratoires
Comment la migration de la cellule est-elle induite ?
L'auto-organisation spatio-temporelle dans les déformations
Mécanisme à l'origine de la protrusion membranaire
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Que désigne le terme « motilité » ?
Mobilité vs Motilité: la mobilité désigne la nature d'un élément en ce qu'il fait
des mouvements tandis que la motilité insiste sur sa capacité à les produire.
Motilité Cellulaire: aptitude à effectuer des mouvements spontanés ou
réactionnels dans la cellule; l'actine, sous sa forme filamenteuse (µ-filaments) est
un acteur majeur de cette dynamique.
pseudopode
lamellipode
Visualisation en microscopie par
fluorescence de l'actine
(marquage GFP) à l'origine des
mouvements spontanées d'une
cellule de type fibroblaste
Olivier Collin, DynaCell, 2004
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Où la motilité intervient-elle ?
La motilité intervient de façon fondamentale dans de nombreux processus
physiologiques tels que:
le développement embryonnaire, où
les cellules migrent en des endroits
spécifiques pour la morphogenèse des
tissus et des organes
Migration de cellules lors d'une
expérience de cicatrisation in-vitro.
la cicatrisation, où les cellules migrent
pour restaurer un tissu endommagé
la vascularisation, où les cellules
endothéliales migrent pour former un
réseau de capillaires lors de
l'angiogenèse
l'inflammation, où les leucocytes
(globules blancs) migrent vers les sites
infectés pour détruire les bactéries
Jocelyne Clément-Lacroix, DynaCell, 2004
Mouvement réactionnel où la migration
résulte du contact entre les cellules.
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Où la motilité intervient-elle ?
La motilité intervient également dans des processus pathologiques tels que:
La vascularisation tumorale, ou
les cellules endothéliales migrent
en réponse à des facteurs de
croissance sécrétés par la tumeur,
La métastatisaton des cancers,
où les cellules tumorales se
détachent de la tumeur primaire
pour se disséminer à travers
l'organisme via le réseau sanguin.
La croissance tumorale résulte
en particulier de dérèglements de
la prolifération cellulaire et du
comportement migratoire des
cellules.
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Comment se déforme la cellule ?
Le cytosquelette: un réseau structuré formé de 3 types de filaments
Réseau d’actine
(Ø 5-7 nm)
Cellule en migration
Filaments
intermédiaires
(Ø 7-11 nm)
Microtubules (30 nm)
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Comment se déforme la cellule ?
Les propriétés du cytosquelette d'actine
Les filaments d'actine s'associent
pour former des fibres de stress
Les fibres se lient au
substrat via les
intégrines (protéines
transmenbranaires)
Olivier Collin, DynaCell, 2004
L'actine s'associe à la
myosine pour former un
complexe contractile
(actomyosine)
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Comment se déforme la cellule ?
Les protéïnes impliquées dans la dynamique de l'actine
La cellule produit deux types de protrusions, le lamellipode
et le filopode qui impliquent des facteurs moléculaires et des
mécanismes différents
Svitkina & Borisy J. Cell Sci. 1999
Borisy et col. 2000
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Comment la cellule migre t'elle ?
La migration: un processus en 3 étapes
Etape 1:
Extension du
lamellipode
Etape 2:
adhésion du
lamellipode au
substrat
Etape 3:
contraction de
la cellule et
détachement
des adhésions
à l'arrière
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Deux types de comportements migratoires
Le processus migratoire en 3 étapes s'applique dans les 2 cas
Cellules au repos
Cellules en migration
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Comment la migration de la cellule est-elle induite ?
La migration des cellules est induite par des facteurs chimiques et/ou
physiques dans le microenvironnement. Par exemple:
la chimiotaxie est induite par un gradient
de facteur chimioattractant (facteur de
croissance, etc ...)
Visualisation des forces de tension
générées par les cellules sur un
substrat en silicone
l'haptotaxie est induite par un gradient de
protéines d'adhésion fixées dans la matrice
extracellulaire (substrat)
la durotaxie est induite par un gradient de
rigidité dans la matrice extracellulaire
la mécanotaxie est induite par des forces
de tension mécanique orientées, perçues
via la matrice
Harris, Science, 1980
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L'auto-organisation spatiotemporelle dans les déformations
Intérêt de la modélisation mathématique
Les mouvements membranaires peuvent présenter des motifs spatiotemporels
récurents et périodiques, qui résultent de la coordination des processus
biochimiques et biomécaniques. La modélisation mathématique devient alors
essentielle pour tester la pertinence des différentes hypothèses pour décrire
l'origine des mouvements protrusifs qui reste aujourd'hui encore sujet à
controverse.
Pulsation périodique spontanée
d'un fibroblaste
Déformations cellulaires simulées à
partir d'un modèle couplant des
hypothèses chimiques et mécaniques
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Mécanisme à l'origine de la protrusion membranaire
Des hypothèses contradictoires
transition sol/gel de l'actine régulée par la concentration locale de
calcium
polymérisation de l'actine au voisinage de la membrane; l'intercalation
des monomères est permise par les fluctuations browniennes de la
membrane
association de moteurs moléculaires de type myosine intéragissant avec
l'actine
pression hydrostatique interne
Réconciliation des hypothèses en prenant en compte l'état
dynamique de la cellule, c'est à dire en dissociant l'état
pulsant spontané de l'état migratoire induit par un stimulus
dans le microenvironnement.
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Résumé
La motilité cellulaire désigne l'aptitude de la cellule à effectuer des mouvements spontanés ou
réactionnels. La motilité de la cellule intervient dans de nombreux processus physiologiques tels que
l'embryogenèse, la cicatrisation, l'angiogenèse, l'inflammation ou lors de processus pathologiques tels que
la croissance tumorale et la formation de métastases.
La forme de la cellule résulte de l'organisation de trois types de filaments formant son cytosquelette:
les microfilaments d'actine, les filaments intermédiaires et les microtubules. Le réseau de microfilaments
d'actine est directement responsable des mouvements cellulaires grâce à ses propriétés de polymérisation
/ dépolymérisation et à ses propriétés contractiles en présence de myosine, autre protéïne importante de
la cellule. La cellule produit essentiellement deux types de protrusions membranaires, le lamellipode et le
filopode qui impliquent des facteurs moléculaires et des mécanismes d'association de l'actine différents.
La migration de la cellule est un processus en trois étapes finement régulées: (1) l'extension d'un
lamellipode assurant une large surface de contact avec la matrice extracellulaire; (2) l'adhésion du
lamellipode à la matrice (substrat) via les intégrines; (3) la contraction de la cellule par le complexe
d'actomyosine, accompagnée du détachement des adhésions à l'arrière de la cellule. Il existe deux types
de comportement migratoire associés à deux types cellulaires (fibroblaste et keratocyte) présentant des
morphologies différentes. Les trois phases de la migration s'appliquent dans les deux cas avec cependant
des cinétiques très différentes. La migration des cellules peut-être induite par des facteurs chimiques (cas
de la chimiotaxie et de l'haptotaxie) ou physiques (cas de la durotaxie et de la mécanotaxie) dans le
microenvironnement.
Les mouvements membranaires peuvent présenter des motifs spatiotemporels récurrents et
périodiques, qui résultent de la coordination des processus biochimiques et biomécaniques. La
modélisation mathématique devient alors essentielle pour tester la pertinence des différentes hypothèses
pour décrire l'origine des mouvements qui reste, aujourd'hui encore, sujet à controverse.
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Références (1/3)
1.
Alt W, Brosteanu O, Hinz B, Kaiser HW. 1995. Patterns of spontaneous motility in
videomicrographs of human epidermal keratinocytes. Biochem. Cell. Biol. 73(7-8): 441-59
2.
Anderson KI, Wang YL, Small JV. 1996. Coordination of protrusion and translocation of the
keratocyte involves rolling of the cell body. J. Cell Biol. 134:1209–18
3.
Beningo KA, Dembo M, Kaverina I, Small JV, Wang YL. 2001. Nascent focal adhesions are
responsible for the generation of strong propulsive forces in migrating fibroblasts. J. Cell Biol. 153:881–
88
4.
Choquet D, Felsenfeld DP, Sheetz MP. 1997. Extracellular matrix rigidity causes strengthening of
integrin-cytoskeleton linkages. Cell 88:39–48
5.
Dembo M, Oliver T, Ishihara A, Jacobson K. 1996. Imaging the traction stresses exerted by
locomoting cells with the elastic substratum method. Biophys. J. 70:2008–22
6.
Giannone G, Dubin-Thaler BJ, Dobereiner HG, Kieffer N, Bresnick AR, Sheetz MP. 2004. Periodic
lamellipodial contractions correlate with rearward actin waves. Cell 116:431–43
7.
Harris AK, Wild P, Stopak D. 1980. Silicone rubber substrata: a new wrinkle in the study of cell
locomotion. Science 208:177–79
8.
Killich T, Plath PJ, Hass EC, Xiang W, Bultmann H, Rensing L, Vicker MG. 1994. Cell movement
and shape are non-random and determined by intracellular, oscillatory rotating waves in Dictyostelium
amoebae. Biosystems. 33(2):75-87
9.
Lauffenburger DA, Horwitz AF. 1996. Cell migration: a physically integrated molecular process.
Cell 84:359–69
15
Références (2/3)
10. Lee J, Leonard M, Oliver T, Ishihara A, Jacobson K. 1994. Traction forces generated by
locomoting keratocytes. J. Cell Biol. 127:1957–64
11. Li S, Guan JL, Chien S. 2005. Biochemistry and biomechanics of cell motility. Annu. Rev.
Biomed. Eng. 7:105-50
12. Lo CM, Wang HB, Dembo M, Wang YL. 2000. Cell movement is guided by the rigidity of the
substrate. Biophys. J. 79:144–52
13. Loisel TP, Boujemaa R, Pantaloni D, Carlier MF. 1999. Reconstitution of actinbased motility of
Listeria and Shigella using pure proteins. Nature 401:613–16
14. Marcy Y, Prost J, Carlier MF, Sykes C. 2004. Forces generated during actin based propulsion: a
direct measurement by micromanipulation. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 101:5992–97
15.
Mogilner A, Oster G. 1996. Cell motility driven by actin polymerization. Biophys. J. 71:3030–45
16.
Mogilner A, Rubinstein B. 2005. The physics of filopodial protrusion. Biophys. J. 89(2):782-95
17.
Mogilner A. 2006. On the edge: modeling protrusion. Curr. Opin. Cell Biol. 18(1):32-9
18. Pelham RJ Jr, Wang Y. 1997. Cell locomotion and focal adhesions are regulated by substrate
flexibility. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 94:13661–65
19. Pelham RJ Jr, Wang Y. 1999. High resolution detection of mechanical forces exerted by
locomoting fibroblasts on the substrate. Mol. Biol. Cell 10:935–45
20.
Petit V, Thiery JP. 2000. Focal adhesions: structure and dynamics. Biol. Cell 92:477–94
16
Références (3/3)
21. Pollard TD, Borisy GG. 2003. Cellular motility driven by assembly and disassembly of actin
filaments. Cell 112:453–65
22. Raucher D, Sheetz MP. 2000. Cell spreading and lamellipodial extension rate is regulated by
membrane tension. J. Cell Biol. 148:127–36
23. Schwartz M, Schaller M, Ginsberg M. 1995. Integrins: emerging paradigms of signal transduction.
Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 11:549–99
24. Sheetz MP, Felsenfeld DP, Galbraith CG. 1998. Cell migration: regulation of force on extracellularmatrix-integrin complexes. Trends Cell Biol. 8:51–54
25. Sheetz MP, Felsenfeld D, Galbraith CG, Choquet D. 1999. Cell migration as a fivestep cycle.
Biochem. Soc. Symp. 65:233–43
26. Small JV, Rottner K, Kaverina I, Anderson KI. 1998. Assembling an actin cytoskeleton for cell
attachment and movement. Biochim. Biophys. Acta 1404(3):271–81
27. Stéphanou A, Tracqui P. 2002. Cytomechanics of cell deformations and migration: from models to
experiments. C.R. Biol. 325(4):295-308
28. Stéphanou A, Chaplain MAJ, Tracqui P. 2004. A mathematical model of large membrane
deformations of isolated fibroblasts. Bull. Math. Biol. 66:1119-54
29. Verkhovsky AB, Svitkina TM, Borisy GG. 1995. Myosin II filament assemblies in the active lamella
of fibroblasts: their morphogenesis and role in the formation of actin filament bundles. J. Cell Biol.
131:989–1002.
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Glossaire
Actine – protéïne du cytosquelette cellulaire (G-actine sous sa forme globulaire et F-actine sous
sa forme polymérisée) responsable des mouvements de la cellule.
Actomyosine – complexe contractile formé par l'association de myosine (type II) et de
filaments d'actine.
Cytosquelette – réseau de filaments protéïques de 3 types distincts (microfilaments d'actine,
filaments intermédiaires et microtubules) responsable du maintien et de la forme de la cellule.
Filopode – protrusion membranaire résultant de l'association de quelques filaments d'actine
orientés parallèlement.
Intégrine – protéïne transmembranaire liée au cytosquelette d'actine et impliquée dans
l'adhésion cellulaire.
Lamellipode – protrusion membranaire de très faible épaisseur et présentant une large surface
de contact avec le substrat. Le cytosquelette d'actine est organisé en un réseau dense dans le
lamellipode.
Matrice extracellulaire – substrat contenant des protéïnes d'adhésion sur lequel la cellule
peut adhérer et migrer
Motilité – aptitude de la cellule à effectuer des mouvements spontanés ou réactionnels.
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