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5. Mode opératoire
a) Mettre en germination 4 à 5 jours avant la séance, des petits oignons (voir photo ci-dessus).
b) Couper les racines à 1 cm de la pointe lorsqu’elles ont atteint la longueur de 1,5 cm.
c) Mettre ces pointes de racine (appelées apex) dans HCl 1 mol/L à 60°C pendant 12 minutes.
d) Rincer les apex dans l'eau de distribution.
e) Placer les apex dans du réactif de Schiff pendant minimum 15 minutes.
f) Récupérer les apex, rincer dans de l'eau puis (facultatif) dans une solution de Na2S2O5 à 5 %.
g) Déposer les apex sur une lame porte-
objet et réaliser le montage dans une
goutte d'eau.
h) Presser la lamelle couvre-objet pour écraser la préparation afin de disperser les cellules.
i) Observer d'abord à faible grossissement (voir fiche FM1), sélectionner une cellule en division
puis passer au grossissement x 400 pour observer les noyaux et les figures de mitose.
j) Réaliser un dessin d’observation (voir fiche FM2).
6. Notes pour le professeur
a) Au cours de sa vie, une cellule grandit puis se divise pour donner deux cellules filles qui lui sont
identiques. On désigne sous le terme de cycle cellulaire les différentes étapes par lesquelles passe
une cellule vivante entre deux divisions successives. Un cycle cellulaire comporte deux étapes :
l'interphase et la mitose.
b) La coloration de Feulgen a été mise au point en 1924 par le chimiste allemand Robert Feulgen
(1884-1955). Elle permet la mise en évidence des chromosomes et leur observation au microscope
photonique.
Dans un premier temps, une hydrolyse acide libère une forme aldéhydique du désoxyribose, qui est
décelée par le réactif de Schiff (fuchsine basique décolorée par le SO2).
Le squelette de l'ADN n'est pas modifié, il reste en place et il est coloré en rose rouge.
Le rinçage dans une solution de Na2S2O5 à 5 % est facultatif mais cette étape permet d’éviter
certaines colorations parasites.