E. coli pks+

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Cancer colorectal et microbiote intestinal :
focus sur Escherichia coli, l’ennemi de l’intérieur?
Richard Bonnet
Microbes Infection Inflammation et Susceptibilité de l’Hôte
UMR 1071 Inserm Université d’Auvergne usc INRA 2018
Centre National de Référence
Résistance aux antibiotiques
(Lab. associé Entérobactéries)
Microbiote intestinal
• ~1kg de bactéries actives réparties sur 400m2
Duodénum
103
Jéjunum
104
Iléon
107
Côlon
1013 Bactéries /g tissus
• Répertoire génétique : ~100 x génome humain • ~1000 espèces bactériennes
Microbiote intestinal
• ~57 espèces partagées par 90% des personnes : => petit nombre d’espèces communes
=> un microbiote intestinal propre à chaque individu
• 5 phylums conservés (ratio Firmicute/Bacteroidetes ≈ 10/1):
– 60‐75% : Firmicutes (Clostridium, Lactobacillus, Eubacterium, Faecalibacterium…)
– 30‐40% : Bacteroidetes (Bacteroides, Prevotella…)
–
1‐5% : Actinobacteria
–
<1% : Proteobacteria (Enterobacteriaceae dont Escherichia coli) Microbiote et cancer colorectal
Duodénum
Jéjunum
Iléon
Côlon
x12
103
104
107
1013
† Le risque de cancer dans l’intestin
augmente avec la densité microbienne
Bactéries
/g tissus
Microbiote et cancer colorectal
Développement de tumeurs colorectales chez des animaux axéniques (GF) ou conventionnels après induction avec AOM et la bile. C. Nombre moyen de tumeurs par groupe D. Taille moyenne des tumeurs par groupe
†Le nombre et la taille des tumeurs colorectales sont moins
élevés chez des animaux prédisposés axéniques (GF) que
chez ces mêmes animaux possédant un microbiote
Reddy et al. Cancer Research 1975
Sacksteder Journal of the National Cancer Institute 1976
Vannucci et al. International Journal of Oncology 2008
Microbiote et cancer colorectal
Taxon surreprésenté au contact du CCR
ou dans les tissus sains adjacents. 1 : 6 patients (16s rDNA)
2 : 9 patients (Total DNA)
3 : 95 patients (16s rDNA)
4 : 9 patients (Total RNA)
† Une dysbiose bactérienne est associée au CCR
Castellarin et al. Genome Research 2011
Marchesi et al. PLoS ONE 2011
Kostic et al. Genome 2012
Escherichia coli
• Principale γ-protéobacterie du microbiote intestinal
– ≤1% du microbiote intestinal
– Observé dans 80-87% des CCR vs. 16-38% des tissus contrôles
• Un pathobionte majeur :
– Souches commensales :
– Souches pathogènes :
• Pathovars intestinaux : EPEC, EHEC, DAEC, EAggEC, EIEC, ETEC
• Pathovar extra-intestinal : ExPEC
Kaper et al., 2004 ; Sekirov et al., 2010 ; Köhler et Dobrindt, 2011
Escherichia coli et cancer colorectal
† Cyclomodulines : des toxines pouvant jouer un rôle dans le CCR
Chez 50‐60% des
tumeurs de patients
atteints de CCR vs.
20% des muqueuses
de patients contrôles
CLB
Helicobacter pylori
Escherichia coli
Arthur et al. 2012, Buc et al. 2013,
Les E. coli producteurs de colibactine sont génotoxiques
Phosphorylation
H2A.x ser139P
Cassures double
brin de l’ADN
colibactine
Mutations
Aberrations chromosomiques
cytoplasme
ATM
CHK2
14‐3‐3
14‐3‐3
CDC25C
CDC25C
CDK1
Noyau
CDC25C
CDK1
Bactéries pks‐
Bactéries pks+
Blocage G2/M et mégalocytes
Nougayrède et al. science 2006 ; Cuevas-Ramos et al. PNAS 2010
Les E. coli producteurs de colibactine sont promoteurs de tumeurs colorectales
Bacteries pks‐
Model de cancer colorectal IL10‐/‐ + AOM
+ Monocolonisation par E. coli pks+
Ou
+ Monocolonisation par E. coli pks‐
Bactéries pks+
pks+ pks‐
Arthur et al. science 2012
Croissance tumorale induite par E. coli pks+ dans un modèle murin de xénogreffe
E. coli pks+
E. coli pks‐
pks+
***
***
***
*
pks‐
*
*
Immuno‐marquage Ki67
11
Cougnoux et al. Gut 2014
Cellules infectées
E. coli pks+ / E. coli pks‐
Produit de sécrétion (PS) des cellules infectées à j5
prolifération cellulaire
Cellules non infectées
Prolifération cellulaire (%)
Les E. coli producteurs de colibactine stimulent
la croissance tumorale indirectement
150
**
**
+
-
+
100
50
PS pks+
PS pksSVF
-
+
-
E. coli pks+ stimulent la prolifération cellulaire
de façon indirecte en induisant la sécrétion de facteurs de croissance par les cellules infectées
pks+
pksSVF
+
-
+
+
+
-
+
+
Cougnoux et al. Gut 2014
E. coli producteurs de colibactine stimulent la croissance
tumorale via le facteur de croissance HGF
Transcription de facteur de croissance
dans les cellules infectées
Facteur de croissance impliqué dans la prolifération cellulaire
Multiplicité d’expression
HCT116
Cougnoux et al. Gut 2014
13
E. coli pks+ induit la sénescence
des cellules infectées
•
Caractéristiques des cellules infectées par les E. coli pks+ :
– Blocage du cycle cellulaire
– Mégalocytose
– Phénotype sécrétoire (HGF…)
Sénescence cellulaire :
Voie p53/p21Cip par western‐blot
pks+
pks‐
non infecté
pks‐
Marquage de l’activité β‐galactosidase
lysosomale ph6
pks+
•
p53
phospho p53
p21Cip
Rb
p21Cip
Rb
E2F1
E2F‐1
GAPDH
Sénescence
Cougnoux et al. Gut 2014
E. coli pks+ induit une accumulation de p53 SUMOylé via SENP1
SENP1
pks‐
pks+
Western‐blot SENP1
Numération des cellules sénescentes dans un contexte de SENP1 surexprimé
Cellules sénescentes (%)
Immunoprécipitation SUMO1/p53
GAPDH
Cougnoux et al. Gut 2014
Le miR‐20a‐5p régule l’expression de SENP1 et la sénescence
Liaison du microARN 20a‐5p
à l’ARNm codant SENP1
SENP1
GAPDH
Cougnoux et al. Gut 2014
miR‐20a‐5p
miR‐control
Expression de SENP1 en présence de miR‐20a‐5p
3’UTR de ARNm SENP1
luciferase
Sénescence en présence de miR‐20a‐5p
et de l’anti‐miR‐20a‐5p
L’entrée en sénescence cellulaire induite
par E. coli pks+ est régulée par c‐Myc
Expression de c‐Myc
dans les cellules infectées
Dénombrement des cellules sénescentes après transfection par des ARNi c‐Myc
Western‐blot c‐Myc et SENP1 sur
des cellules transfectées par des ARNi c‐Myc
GAPDH
Cellules sénescentes (%)
c‐MYC
pks‐
pks+
100
80
60
40
***
c‐Myc
20
SENP1
0
GAPDH
E. coli pks+ + + Cougnoux et al. Gut 2014
Les E. coli producteurs de colibactine induisent la croissance
tumorale via le phénotype sécrétoire
associée à la senescence cellulaire
Tumeurs coliques humaines colonisées par E. coli pks+ ou E. coli pks‐
Cougnoux et al. Gut 2014
Les E. coli producteurs de colibactine induisent la croissance
tumorale via le phénotype sécrétoire
associée à la senescence cellulaire
Cougnoux et al. Gut 2014
L’îlot pks de E. coli et la protéine ClbP
(travail en cours)
Le gène clbP de l’îlot pks responsable de la synthèse de colibactine
code une enzyme putative à sérine active (motif S-X-X-K)
Ö Cible pour des molécules inhibitrices ?
L’îlot pks de E. coli et la protéine ClbP
(travail en cours)
Dubois et al. JBC 2011, Cougnoux et al. J Mol Biol 2012
Charges de surface et activité peptidase de ClbP
ClbP
Composés NRP (zwittermicin)
Activité peptidase
ClbP : une peptidase à sérine active
Dubois J Biol Chem 2011, Cougnoux J Mol Biol 2012
Rôle des enzymes ClbP‐like
Système de protection de la cellule
à deux composants, ClbP + efflux :
Ö Maturation de la colibactine
à distance du cytoplasme
Dubois J Biol Chem 2011, Cougnoux J Mol Biol 2012
Criblage in silico : sélection de 2 composés
Construction d’une base de données : Sigma, Boron Molecular, ...
≈500 molécules
Composés
Efficacité de fixation du ligand prédite par docking
(Kcal/mol/atome lourd)
1
‐0,90
2
‐0,88
Contrôle négatif
‐
Les composés présentent une activité
inhibitrice nanomolaire
Compound ID
ClbP
Ki
(µM)
ZmaM
ΔG (Kcal/mol)
Ki
(µM)
FmtA‐like
ΔG (Kcal/mol)
Ki
(µM)
ΔG (Kcal/mol)
1
0.240
‐9.02
4.560
‐7.28
>1000
> ‐4.09
2
0.360
‐8.78
1.430
‐7.96
966.0
‐ 4.11
3
>1000
> ‐4.09
>1000
> ‐4.09
0.530
‐8.55
Les composés se fixent dans le site actif de ClbP
ClbP en complexe avec le composé 1 / ClbP en complexe avec le composé 2
Superposition des complexes de ClbP avec les composés 1 et 2
Les composés bloquent l’activité
génotoxique des E. coli pks+
Détection de l’activité génotoxique des E. coli producteur de colibactine par immunomarquage anti histone γH2A.x en présence d’inhibiteur
Les composés bloquent l’activité génotoxique
des E. coli pks+ dans le modèle d’anse ligaturée
Analyse de l’inhibition de l’activité
génotoxique des E. coli producteur de colibactine par immunomarquage et western blot anti histone γH2A.x
† Les 2 composés (2mM) abolissent l’action génotoxique des bactéries
Le ciblage de ClbP abolie l’activité protumorale
du E. coli pks génotoxique
Analyse de l’inhibition de l’activité stimulatrice de la croissance tumorale des E. coli producteurs de colibactine en xénogreffe
pks+
pks‐
pks/cpd1
pks/cpd2
**
† Les 2 composés (2mM) abolissent l’action stimulatrice de la croissance tumorale
Le ciblage de ClbP abolie l’activité
protumorale de E. coli pks+ au niveau intestinal
Analyse de l’inhibition de l’activité pro‐tumorale
des E. coli producteurs de colibactine dans un modèle murin de cancer colique
Conclusions
•
Les bactéries productrices de colibactine pourrait jouer un rôle dans
le développement du CCR via
– Les mutations et aberrations chromosomiques induites
– Le phénotype sécrétoire associé à la sénescence cellulaire
•
Le phénotype sécrétoire des cellules infectées par les E. coli pks+
stimule la migration/invasion cellulaire => métastases?
•
E. coli producteurs de colibactine et autres cancers?
•
ClbP pourrait être une cible intéressante pour prévenir les actions
délétères des bactéries producteurs de colibactine
Microbes Infection Inflammation et Susceptibilité de l’Hôte
UMR 1071 Inserm Université d’Auvergne usc INRA 2018
A. Darfeuille‐Michaud, Bacterio. IUT
N. Barnich
E. Billard
M. Bonnet
H. Nguyen
M. Bringer
A. Sivignon
A. DeVallée
C. Chevarin
E. Vazeille
R. Bonnet, Bactério. UFR Médecine
G. Dalmasso
J. Delmas
F. Robin
A. Cougnoux, Doctorant
L. Gibold, Doctorant
R. Beyrouthy, Doctorant
D. Pezet, Chir. digestive UFR Médecine
E. Buc
P. Sauvanet
G. Bommelaer, Gastro. UFR Médecine
M. André, Méd. Interne, UFR Médecine
V. Livrelli, Parasito., UFR Pharmacie
Pathogénie moléculaire et cellulaire des infections à E. coli
CPTP, INSERM UMR 1043 / CNRS UMR 5282, Université Toulouse III
Eric Oswald
Gabriel Cuevas
Dipartimento di Scienze della Vita Universita Degli Studi Di Modena E Reggio Emilia, Italia
Fabio PRATI
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