Concanavaline A

S. I. I.T.U. B.
Protéines
Concanavaline A
PROPRIETES PHYSICOCHIMIQUES
La concanavaline A (con A) est une protéine de la famille des lectines. Ces dernières
sont des protéines capables de se fixer sur des glucides et ce, de façon très spécifique.
Normalement, la lectine se lie sur un monosaccharide spécifique ou une gamme très
restreinte de monosaccharides très structuralement très similaires. Ces glucides
peuvent cependant être intégrés dans des oligosaccharides, des glycoprotéines ou des
glycolipides, en autant évidemment que le (les) monosaccharide(s) en question est
(sont) accessible(s) au site de liaison de la lectine. Les lectines sont abondamment
produites par les plantes légumineuses (pois, fèves, haricots, arachides, etc.). Mais on
en a aussi découvert chez des invertébrés marins et des microorganismes. Les plus
connues sont la phytohémaglutinine (pois vert), l'hémagglutinine (arachide) et la
concanavaline A (haricot sabre).
La concanavaline A (Con A) est produite par le haricot sabre (Canavalia ensiformis)
où elle s'accumule dans le fruit (fève). La con A est spécifique pour le D-mannose et
par extension le D-glucose, deux hexoses ne différant que par la disposition de
l'alcool sur le carbone 2. D’autres monosaccharides comme le fructose ou galactose
ne possèdent pas cette structure ne peuvent pas lier la con A.
Elle est composée de sous-unités
fortement glycosylées de 26.5 kDa.
Chaque sous-unité comprend 237
sous unités et lie deux atomes
métalliques, un Ca 2+ et un métal de
transition (généralement du Mn2+). Le
pI est de l'ordre de 4.5-5.5. Sa
structure tertiaire a été élucidée et est
bien connue (1). De même on connait
bien ses interactions avec les métaux
qui la composent de même qu'avec les
bases moléculaires de son affinité
pour le mannose et le glucose (Loris
et al, 1998).
Comme la très grande majorité des
lectines, la con A est un homotétramère (a4), ici de 106 kDa. Encore ici sa structure
est bien connue. Puisque le tétramère a quatre sous-unités identiques, chacune peut
lier un mannose ou un glucose. Un tétramère de con A pourra donc lier en même
temps quatre structures possédant un de ses deux hexoses spécifiques. C'est la base
même de ses capacités d'agglutination.

L'assemblage des sous-unités est affecté par le pH. A pH 7, les tétramères sont formés
préférentiellement alors que les pH plus acides (pH 4.5 à 5.6) favorisent la formation
de dimères seulement. Chaque sous-unité a un poids moléculaire de 26.5 KDa.
METHODE EXPERIMENTALES
Isolement et purification
La principale technique pour purifier la con A est justement basée sur sa principale
propriété biologique, son affinité pour le mannose et le glucose. Il suffit donc de la
mettre en présence d'une résine ayant la capacité de lier la con A, Cette résine devrait
donc avoir des groupements mannosyles ou glycosyles (ou l'équivalent structural).
C'est le principe même d'une chromatographie d'affinité (voir Siitub: chromatographie
d'affinité)
Justement une résine comme le Sephadex™ est un polymère de dextran (un polymère
linéaire de glucose) dont les fibres sont réticulées à l'épichlorohydrine. Dans le
Sephadex™, la partie de la molécule de glucose sur laquelle se fixe la con A est
accessible. Donc en mettant de la con A en présence de Sephadex, la protéine se liera
dessus mais non pas les autres protéines. Lorsqu'on a lavé la colonne de ces protéines
non liées, on peut récupérer la con A en la détachant en faisant percoler sur la résine
une solution contenant du glucose (ou du mannose). Cette dernière molécule pourra se
lier sur les sites de la con A, ces sites étant saturés, ils ne pourront plus se lier au
Sephadex, s'en détacheront et élueront hors du gel.
D'autres techniques doivent aussi être employés pour se débarrasser d'autres protéines
ou d'autres molécules: précipitation différentielle, dialyse, etc.
Typiquement dans la technique classique, on commence par broyer des fèves de
haricots sabres (Canavalia ensiformis, "jack beans"). Par centrifugation, on se
débarrasse des particules trop grosses. Le surnageant de cette centrifugation est alors
soumis à une précipitation différentielle au sulfate d'ammonium. La fraction soluble
entre 30 et 80% de saturation de sulfate d'ammonium, contenant la con A, est alors
dialysée pour éliminer ce sel. Le rétentat est ensuite l'objet d'une chromatographie
d'affinité telle que décrite précédemment. La con A est éluée du complexe con A-
dextran avec du glucose. Ce dernier est éliminé par une autre dialyse. La solution
résultante, très diluée en con A est alors lyophilisée pour enlever l'eau et on obtient
finalement une poudre de con A pratiquement pure.
Agglutination
Tel que mentionné précédemment, la con A peut se fixer en même temps sur un à
quatre mannose, ou structure contenant un de ces sucres: oligosaccharide, glyco-
protéines, glycolipides. Evidemment les cellules ayant à leur surface, de façon
accessible, une telle glycoprotéine, glycolipide ou oligosaccharides, pourront se lier à
la con A.
La concanavaline A peut causer une agglutination des globules rouges ou d'autres
cellules. A cause de leur forme et leur couleur, les globules rouges se prêtent

particulièrement bien à l'observation de l'agglutination. La con A peut se lier à
potentiellement quatre cellules et les maintenir à proximité une de l'autre tout en les
empêchant de se compacter une sur l'autre comme dans une sédimentation simple.
Figure: Globules rouges agglutinés par une protéine ayant cinq site de liaisons.
Remarque: la con A n'a que quatre sites de liaison; ces illustrations ne sont que des exemples
d'agglutination.
On dit alors que les cellules sont agglutinées. Cette procédure consiste simplement
à mettre dans les puits d’une plaquette des globules rouges et en présence ou
non de glucose ou de manose. Après quelque temps, le sucre ayra agglutiner les
cellules tandis qu’en absence de sucre, les globules auront simplement
sédimenter dans le fonds du puits de la plaquette.
Cette agglutination donne un aspect typique facile à distinguer d'une sédimentation.
Figure: Expérience d'agglutination de globules rouges. Entre
autres dans les puits supérieurs gauches, ceux de la colonne de
droite et de la rangée inférieure, on remarque une
sédimentation simple des globules (taches rouges foncées,
denses, bien compactes). Entre autres dans les puits centraux,
on peut observer une agglutination typique (taches roses,
diffuses, larges)
Cette réaction d'agglutination peut évidemment être inhibée, en tout ou en partie, par
des sucres libres. comme le glucose, qui lieraient ses sites de liaison sur la con A.
D'autres conditions physicochimiques (pH, force ionique, etc.) inhibant l'affinité de la
con A pour ses sucres, perturberaient évidemment l'agglutination.

Isolement et purification de la con A
Un usage fréquent de la con A (et des lectines en général) est la purification de
protéines. Cet emploi est toujours basé sur leur affinité pour les sucres. Ainsi, on peut
créer des colonnes d'affinité ou on a fixé de façon covalente de la con A. En faisant
circuler un extrait cellulaire dans cette colonne d'affinité, les protéines contenant un
groupement glycolyses contenant du mannose ou du glucose, s'adsorberont sur la
colonne. Les autres protéines passeront tout droit. Pour récupérer ces protéines liées à
la colonne, on n'a qu'à éluer avec une solution contenant du mannose ou de glucose.
Ces derniers compétioneront avec la protéines adsorbées, celles-ci élueront alors et
pourront être récupérées facilement.
Autres
Il existe de nombreuses autres applications expérimentales comme le marquage des
protéines de surface des cellules, l'inhibition de protéines ou d'enzymes glycosylées,
etc.