
Méthode  
Nous avons analysés 72 souches d'entérobactéries isolées dans notre laboratoire entre 2010 et 2012. 
Les phénotypes de résistance BLSE sont caractérisés par la synergie entre les disques AMC et ATM, FEP, 
CAZ ou CXM et le test des doubles disques avec acide clavulanique (a.clav). Une CMI à l’ERT  >1mg/l ou 
le  test  de  Hodge  modifié  positif  identifient  un  phénotype  carbapénèmase  (carbase)  possible.  Parmi 
nos 5 carbases, deux sont des souches de référence (CQE). La synergie (>4mm) entre les disques de 
FOX avec et sans oxacilline (FOC) ou un MASTDISCS ID (MAST Diagnostic, France) positif identifie les 
souches AmpC. Les bactéries présentant des résistances inexpliquées ou de phénotype hyperOXY sont 
classées  dans  le groupe  «négatif». L’ADN  est  extrait  sur  NucliSENS  EasyMag (Biomérieux,  Suisse).  La 
mise  en  évidence  des  gènes  de  BLSE  (CTX-M,  TEM,  SHV),  AmpC  plasmidiques  (CMY-1/MOX,  CMY-
2/FOX, DHA,  ACC, ACT/MIR)  et carbapénèmases  (KPC, NDM,  OXA-48,  VIM,  IMP)  est  réalisée avec le 
test CT103. 
 
 
 
 
 
 
 
 
  
 
 
Evaluation d’une technique de puce à ADN permettant la détection rapide et 
la caractérisation moléculaire des gènes de résistances des entérobactéries 
Luce Bertaiola, Marie-Lise Tritten, Hans H. Siegrist et Reto Lienhard 
ADMED Microbiologie, La Chaux-de-Fonds, Suisse 
Fig.1: Nombre d’espèces incluses dans l’étude 
Fig.2: Pourcentage des gènes BLSE caractérisés 
génétiquement par le test CT103 
0 
2 
4 
6 
8 
10 
12 
14 
16 
18 
20 
Fig.3: Répartition des gènes BLSE caractérisés par le test CT103 chez E. coli 
et K. pneumoniae 
Tableau  1:  Tableau  comparatif  montrant  les  résultats 
obtenus  par  caractérisation  phénotypique  et  par 
caractérisation génotypique (CT103) 
Résultats  
Le  CT103  a  caractérisé  génétiquement  91%  des  souches  de  manière  concordante  avec  nos 
observations phénotypiques. Parmi les 72 souches, 4 présentent 2 types de résistance différents qui 
ont  été  correctement  identifiés  par  le  test.  Sur  50  phénotypes  BLSE,  tous  sont  génétiquement 
identifiés. Les gènes prédominant  sont CTX-M1 (39%), CTX-M15-like (33%) et CTX-M9 (21%).  CT103  
confirme  5  souches  AmpC  parmi  les  11  suspectés  et  4  entérobactéries  du  groupe  carbapénémase 
parmi les 5 profils suspectés. Toutes les souches hyperOXY sont génétiquement caractérisées négatives 
par le test.  
Discussion 
La  plupart  des  entérobactéries  isolées  présentant  un  profil  de  résistance  inclus  dans  le  kit  ont  pu  être  confirmées.  La  présence  de  souches  ERT  non 
sensibles (Enterobacter spp et Hafnia spp) peuvent présenter un test de Hodge modifié positif et nécessite un test de confirmation décisif. 
Six souches suspectées AmpC et une carbapénémase sont rendues négatives par le CT103 (Table 2). Il pourrait s’agir d’AmpC chromosomiques ou AmpC 
plasmidiques  non  inclus  dans  le  panel  du CT103.  Le  CT103 n’a  détecté  aucun  génotype  de  résistance  non  suspecté  ou  non  identifié  avec  les  critères 
phénotypiques. Ce test nous a permis de détecter la première souche OXA-48 (K. pneumoniae) au sein du laboratoire. 
AmpC plasmidique non inclus dans CT103? 
AmpC chromosomique, Case Hyp. 
AmpC chromosomique, Case Hyp. 
AmpC chrom., Case Hyp.+ carbase chromosomique ? 
Objectif 
Evaluer l’utilité de la technique d’amplification et d’hybridation sur puce à ADN « Check-MDR CT103 » 
(CT103) (Check-Points, Wageningen, Pays-Bas) dans un laboratoire régional non universitaire. 
Tableau 2: Tableau comparatif montrant les caractéristiques phénotypiques des 7 souches rendues négatives par le CT103 
 
Abréviations: Case Hyp.: Céphalosporinase hyperproduite, FOX=cefoxitine, FOC= FOX+oxacilline, IPM= imipénème, CRO= ceftriaxone, ERT= ertapénème, Expert SIR= système 
expert du SIRSCAN (i2a, France)  
Conclusion 
1)  Nous  observons  une  très  bonne  concordance  entre  les  profils  phénotypiques  établis  et  les  génotypes  révélés  par  le  CT103.  Ce  test  représente  une 
méthode précise, utile et efficace pour le suivi épidémiologique des souches. 
2) Au sein de notre laboratoire, cette méthode permet l’identification et la confirmation rapide (dans les 2-3 jours) des carbapénémases plasmidiques. 
3) L’EUCAST 2012 ne recommandant pas l’identification des AmpC ou BLSE, un test incluant les gènes de carbapénèmases seulement suffirait au besoin du  
laboratoire .