Mueller et al. Journal of Experimental & Clinical Cancer Research 2011, 30:42
http://www.jeccr.com/content/30/1/42
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Le FWGE exerce non seulement une activité antitumorale en
monothérapie sur des lignées cellulaires tumorales humaines et
les xénogreffes de tumeurs humaines mais certaines données
suggèrent une interaction synergique avec le 5-FU ou la dacar-
bazin (DTIC) dans un nombre limité de lignées cellulaires [2, 6].
En plus des données précliniques, il existe déjà quelques
études cliniques publiées qui confirment les effets bénéfiques du
FWGE dans la thérapie du cancer humain. Les données les plus
impressionnantes ont été générées dans un essai aléatoire de
phase II réalisé par Demidov et al. Ils ont trouvé, lors de la com-
binaison de la DTIC et du FWGE, un gain significatif de survie
sans progression et survie globale par rapport à l'application de
la DTIC seule chez les patients atteints de mélanome [12]. Une
étude menée par Jakab et al. chez des patients atteints de cancer
colorectal a permis d'observer un meilleur taux de survie et une
réduction de la formation de métastases lors de la combinaison
de la chimiothérapie et du FWGE en comparaison avec l'emploi
du groupe chimiothérapie seul. Dans une analyse multivariée de
cette étude, seuls le stade de la tumeur et le traitement du FWGE
étaient des prédicteurs importants de la survie [13].
Toutefois, ces données doivent être interprétées avec prudence
car l'étude avait une conception non aléatoire et les groupes de
patients n'étaient pas équilibrés [1, 13]. De même importance,
plusieurs études, notamment celles mentionnées ci-dessus, ont
suggéré une amélioration de la qualité de vie grâce à un traite-
ment associé avec le FWGE [14].
Dans l'ensemble, les données précliniques restreintes ainsi
que les données cliniques disponibles attribuent au FWGE, en
tant qu'aliment pour des patients cancéreux, non seulement des
profils d'activité prometteurs, mais aussi les propriétés d'un
agent anticancéreux potentiel.
Dans cette vaste étude in vitro, nous avions pour but
d'analyser l'activité d'agent unique du FWGE ainsi que son
interaction avec les médicaments comme le 5-FU, l'oxaliplatine
ou bien l'irinotécan couramment utilisés sur un large panel des
lignées cellulaires tumorales des différentes entités tumorales.
Ces données ont une valeur potentielle pour diriger plus en avant
le développement du FWGE vers différents types de cancer et pour
aider à sélectionner des partenaires de médicament potentiels
pour le futur développement des combinaisons de chimiothérapie
avec le FWGE.
Matériels et méthodes
Médicaments et produits chimiques
Le FWGE a été un don généreux de Biropharma Kft,
Kunfehértó, H-6413, Hongrie. Le FWGE a été conservé à 4 °C
sous forme de poudre sèche jusqu'à son utilisation. Pour l'expéri-
mentation, le FWGE a été préparé frais dans de l'eau stérile
à une concentration finale de 100 mg/ml. Ensuite, la solution
a été centrifugée à 150 g pour éliminer les éléments insolubles.
Le 5-FU, l'irinotécan, l'oxaliplatine et le test à la sulforhodamine
B ont été achetés chez Sigma Chemical Company, en
Allemagne. Le RPMI 1640 et la pénicilline/streptomycine ont
été obtenus de PAA, Pasching, Autriche. SVF a été acheté chez
Biochrom AG, Berlin, Allemagne.
Lignées cellulaires et culture
Les lignées cellulaires cancéreuses suivantes ont été utilisées
pour l'expérimentation: cancer du testicule (H12.1, 2102EP,
1411HP, 1777NRpmet), cancer du co
^lon (HCT-8, HCT-15,
HCT-116, HT-29, DLD-1, SW480, COLO205, COLO320DM),
CPNPC (A549, A427, H322, H358), cancer de la tête et du cou
(FADU, A253), carcinome épidermoïde du col de l'utérus
(A431), adénocarcinome mammaire (MCF-7, BT474), adéno-
carcinome ovarien (A2780), cancer de l'estomac (M2), cancer
anaplasique de la thyroïde (8505C, SW1736), cancer papillaire
de la thyroïde (BCPAP), cancer folliculaire de la thyroïde
(FTC133), mélanome (518A2), hépatome (HepG2), glioblas-
tome (U87MG), neuroblastome (SHSY5Y, la SIMA). Toutes les
lignées de cellules ont été cultivées en monocouches d'un max-
imum de 80% de confluence dans un milieu de RPMI 1640
complété avec 10% de FBS et 1% de pénicilline / streptomycine
à 37 °C, 5% de CO2et de l'air humidifié.
Expériences d'inhibition de croissance
Pour évaluer les effets antiprolifératifs, le test à la sulforho-
damine B (SRB) a été utilisé comme décrit précédemment [15].
En bref, les cellules ont été ensemencées dans les plaques 96
puits à une densité spécifique pour garantir la croissance expo-
nentielle pendant toute la durée de l'essai. Les nombres des
cellules ont été préalablement déterminés par la cinétique de
croissance cellulaire. Après 24 h, les cellules à croissance expo-
nentielle ont été exposées en série à des dilutions de chaque
médicament pris soit individuellement, soit en association de
façon continue pour les temps indiqués. Pour étudier l'influence
de l'ajout des médicaments, le médicament A a été administré 24
h après l'ensemencement et suivi par le médicament B 24 h plus
tard ou inversement. Les plaques de contro
^le traitées avec un
seul médicament à la fois ont été manipulées en parallèle. Après
120 h, la durée totale de l'essai, les milieux ont été retirés et les
cellules ont été fixées à l'aide du TCA à 10% et traitées confor-
mément au protocole du test SRB publié [15]. L'absorbance a
été mesurée à 570 nm à l'aide d'un lecteur de plaque 96 puits.
(Rainbow, SLT, Allemagne).
Électrophorèse d'ADN sur gel
Les cellules flottantes après un traitement médicamenteux avec
une CI90 de FWGE pendant 48 h ont été utilisées pour détecter
l'apoptose par électrophorèse d'ADN sur gel. Après avoir lavé
les cellules deux fois avec du PBS, elles ont été lysées dans un
tampon de lyse (100 mM TRIS-HCl (pH 8,0), 20 mM EDTA,
SDS 0,8%). Suivant le traitement par RNaseA pendant 2 h à 37 °C
et par protéinase K (Roche Molecular Biochemicals) pendant
une nuit à 50 °C, les lysats ont été mélangés avec le tampon de
chargement d'ADN. La séparation des fragments d'ADN s'est
faite sur un gel d'agarose 1,5% suivi par une coloration au
bromure d'éthidium puis un rinçage à l'eau distillée. Les échelles
d'ADN ont été visualisées sous lumière UV et documentées sur
un Instrument BioDocAnalyse (Biometra).