università degli studi dell`insubria université paris-sud

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UNIVERSITÀ DEGLI STUDI DELL’INSUBRIA
Dipartimento di Scienza e alta tecnologia
Corso di dottorato in Scienze Chimiche, XXVII ciclo
UNIVERSITÉ PARIS-SUD
Faculté de Pharmacie
CO-TUTORED PHD THESIS
PRESENTED BY:
LEILA VAHDATI
TITLE:
SYNTHESIS OF PEPTIDOMIMETICS CONTAINING BIFUNCTIONAL
DIKETOPIPERAZINE SCAFFOLDS AND THEIR EVALUATION AS
MODULATORS OF AMYLOID-PEPTIDE OLIGOMERIZATION
PHD SUPERVISORS:
PROFESSOR UMBERTO PIARULLI (UNIVERSITÀ DEGLI STUDI DELL’INSUBRIA)
PROFESSOR SANDRINE ONGERI (UNIVERSITÈ PARIS-SUD)
Academic Year: 2013-2014
Les protéines sont la classe la plus importante de molécules organiques présentes dans les
cellules, ce qui composent 50% ou plus de leur poids sec. Ces macromolécules sont
responsables de la plupart des fonctions complexes qui rendent la vie possible, par exemple:
la catalyse enzymatique, transport et stockage, mouvement coordonné, soutien mécanique,
protection immunitaire, génération et transmission de l'impulsion nerveux, contrôle de la
croissance, et de différenciation. Malgré la différence de fonction, toutes les protéines sont
constitués de petits blocs de construction, à savoir les acides aminés qui sont reliés ensemble
de manière covalente par des liaisons amide pour former des chaînes polypeptidiques. La
diversité dans la structure, la fonction et les propriétés générales des protéines sont tous
déterminés par la séquence d'acides aminés qui composent sa séquence primaire linéaire.
Toutefois, la séquence linéaire d'acides aminés (structure primaire) ne suffit pas à expliquer
l'activité biologique des protéines. En fait, l'activité de la protéine peut être réalisée une fois
que la séquence primaire correcte se replie dans une conformation tridimensionnelle unique et
précise. La conformation repliée obtenue est la forme thermodynamiquement la plus stable.
Les structures des protéines peuvent être classées en quatre niveaux principaux: a) la structure
primaire; b) la structure secondaire (y compris -hélix et -feuilles plissées); c) la structure
tertiaire; d) la structure quaternaire.
Les interactions protéine-protéine, qui sont fondamentales pour de nombreuses fonctions
biologiques, se produisent souvent dans des régions de protéines, qui sont organisés dans des
éléments de structure secondaire comme des segments hélicoidaux, des feuillets ou des
épingles à cheveux . En conséquence, une approche pour moduler les interactions protéineprotéine est de reproduire les segments en interaction et les utiliser comme antagonistes des
interactions. En principe, la meilleure approche serait d'utiliser des peptides courts biaisés, de
reproduire la conformation et les interactions correctes.
Le Peptide -brin est le plus simple élément peptide structurel, qui n’est normalement pas
trouvé dans des peptides isolés, mais au moins jumelé dans des structures d' hydrogène liés,
formant des feuillets  dans les protéines. L'association d'un -brin du ligand avec un brin ou
d'un feuillet dans le partenaire de liaison joue un rôle important dans les interactions
protéine-protéine (IPP) qui sont essentielles à presque tous les niveaux de l'organisation et de
la communication dans les cellules vivantes. L'approche la plus simple dans la conception de
mimétiques de -brin serait d'utiliser des peptides courts correspondant à des régions de
protéines brin/feuillet. Cependant, l'inconvénient d'utiliser des peptides courts est bien connu,
en raison de leur flexibilité conformationnelle et des profils pharmacologiques pauvres. Des
procédés pour augmenter la stabilité conformationnelle implique la limitation de la liberté du
peptide par incorporation de contraintes de conformation dans le squelette du peptide, ou à
travers différents types de cyclisations.1 Le remplacement de composants d'acides aminés
avec une grande variété de contraintes telles que des ponts disulfures, des doubles liaisons,
des N-méthyl amino-acides, des acides
D-aminés
et des cycles aromatiques ou
hétérocycliques, conduit à la préparation de peptidomimétiques conformationnellement et
métaboliquement stables ou mimétiques non peptidiques qui sont capables de mimer -brins.
Des motifs en épingle à cheveux dans les peptides et protéines naturelles disposent d'un
remarquable degré de diversité structurelle. La diversité peut se produire en raison de
variations dans la taille de la boucle, registre épingle à cheveux, occurrence des -renflements
dans les -brins, et bien sûr en raison de la variation de séquence. Au cours des 20 dernières
années, Nowick et ses collègues ont développé un travail conséquent dans le domaine des
mimétiques de feuillet . Leur premier document, publié en 1992, décrit un échafaudage
moléculaire de oligourée avec des liaison hydrogène intramoléculaires. Ce groupe a
également développé une série de modèles moléculaires basés sur l’acide 5-amino-2méthoxybenzoique, et ses dérivés hydrazide, d'imiter et de compléter la fonctionnalité de
liaison hydrogène de brins peptidiques et bloquer des liaison hydrogène. Le groupe 2méthoxy joue le double rôle de bloquer le groupe de donateurs H-bond et en fournissant
l'organisation par liaison hydrogène intramoléculaire au sein de ces ß-brins. En combinant
l'échafaudage moléculaire à base d'urée qui est un échafaudage rigide avec ces mimes de ßbrin, une variété de feuillets ß artificiels ont été créés, qui se replient dans des structures bien
définies dans le chloroforme et d'autres solvants organiques non concurrentiels.2
Plus récemment, le groupe de Nowick a développé des blocs de construction contenant de
l'ornithine et la soi-disant “unité Hao” pour créer un fragment composite Orn (i-PrCO-Hao)
qui peut être incorporé dans des peptides pour induire un repliement et une dimérisation dans
les solvants organiques. L'acronyme “Hao” a été conçu pour tenir compte des trois
composants par lesquels elle est formée: hydrazine, l’acide 5-amino-2-méthoxybenzoique, et
l'acide oxalique. Récemment, sur la base de ces données obtenues, ce groupe a établi des
feuillets  macrocycliques composés de deux mimétiques ornithine -tour δ-liés, un
pentapeptidique dans le brin "supérieur", l'acide aminé Hao et deux acides -aminés dans le
brin "inférieur". Hao est un mime relativement rigide de -brin tripeptidiques qui sert en tant
que modèle pour le pliage du brin supérieur et bloque le brin inférieur pour réduire au
minimum l'agrégation bord-à-bord. Ils ont décrit ce macrocycle 1 comme l'un des meilleurs
inhibiteurs synthétisés dans leurs laboratoires (Figure 1) qui supprime l'agrégation de peptide
dérivé de la protéine tau AcPHF6 à 1,0 équiv.3 La surface hydrophobe créé par les valine,
isoleucine, et les résidus de leucine aux positions R1, R3, et R7 sur ce macrocycle est
nécessaire pour l'inhibition.
Figure 1. La structure générique de peptide macrocyclique
Leur étude démontre que les surfaces hydrophobes entre les couches de feuillet  sont
importantes dans l'inhibition de l'agrégation amyloide. Ils suggèrent que ce principe est
applicable à de plus grandes protéines amyloides telles que la protéine tau entière ou des
peptides -amyloides . Ils ont également montré la bonne activité inhibitrice de ces feuillets 
dans l'agrégation de la protéine amyloide dans la maladie d'Alzheimer.4
La formation de peptides et de protéines agrégats par l'interaction de feuillets a de plus en
plus attiré l'attention car il se produit dans de nombreuses maladies humaines généralisées,
telles que la sclérose latérale amyotrophique (SLA), la maladie d'Alzheimer (AD), la maladie
de Parkinson (PD), les maladies à prions et la maladie de Huntington (HD). Beaucoup de
maladies d'agrégation de protéines affectent le système nerveux; parmi celle-ci l'une des plus
difficile est AD. La maladie d'Alzheimer est la forme la plus courante de démence qui
provoque la perte de la mémoire chez les personnes âgées. En 2013, il y avait 35 millions de
personnes souffrant de AD à travers le monde, un chiffre qui devrait doubler d'ici 2050.5 Les
caractéristiques neuropathologiques de cette maladie sont la perte neuronale dans des régions
liées à la mémoire, un appauvrissement en neurotransmetteur et l'altération synaptique qui se
trouvent dans les cerveaux des patients atteints de AD. Au cours des deux dernières
décennies, le rôle de l'agrégation des protéines dans les maladies neurodégénératives a été
largement étudiée, ce qui suggère que le mauvais repliement des protéines et l'agrégation sont
une des principales causes du dysfonction neuronal et de la mort dans ces types de maladies.6
Microscopiquement, les résultats les plus courantes sont dépôts de protéines, dont les plaques
neuritiques séniles (PNS) et les dégénérescences neurofibrillaires (DNF). L'accumulation
extracellulaire d'agrégats insolubles de la protéine β-amyloide (A) conduit à la formation de
plaques séniles, alors que NFT sont intracellulaires et sont composés de filaments hélicoidaux
appariés de la protéine tau hyperphosphorylée. Les fibres amyloides sont auto-assemblées, ce
sont des protéines filamenteuses ou des agrégats peptidiques avec des structures moléculaires
β-croisées, ce qui signifie qu'ils sont riches en feuillets β, dans lesquels les β-brins sont
approximativement perpendiculaires à l'axe des fibrilles longues et les liaisons entre brins
d'hydrogène s’étendent parallèlement à l'axe des fibrilles. L’architecture β-croisée fournit une
très grande stabilité aux fibrilles, car il permet la formation d'un réseau continu de liaisons
hydrogène.7 Les peptides A (39-43 acides aminés de longueur) sont dérivés du clivage
protéolytique de la protéine précurseur amyloide (PPA) par des enzymes appelées sécrétases.
Comme la conversion de protéines de leurs états solubles à la forme amyloide implique la
formation de contacts intermoléculaires, la stabilité thermodynamique de l'état amyloide est
plus favorisée à des concentrations plus élevées.8 Les espèces produites principalement sont
A40. Des traces de A42 sont également formées dans un rapport d'environ 99 à 1. A42 a
une propension élevée de β-brin et ainsi une plus grande tendance à s’agréger et est donc plus
toxique pour les neurones que A40. La séquence de A (1-42) contient six résidus chargés
négativement (D1, E3, D7, E11, E22, D23) et trois résidus chargés positivement (R5, K16,
K28), donnant une charge nette de -3. Les trois résidus His (H6, H13, H14) ont un PKa proche
du pH physiologique. Il existe une importance particulière pour la région hydrophobe
flanquée par des résidus positivement et négativement chargées, à savoir KLVFFAE (A 1623), et à la position de K28 (Figure 2).
Figure 2. Amyloid β peptide (1-42)
Les peptides A sont produits en tant que monomères solubles et subissent l'oligomérisation
et la formation de fibrilles amyloides via un processus peu élucidé. Plusieurs études ont
proposé que A monomère en solution existe dans un équilibre entre une conformation αhélicoidale et en feuillet β et à partir de ce mélange seulement le conformère en feuillet β peut
accueillir la formation de bas poids moléculaire. Cependant, les propriétés fonctionnelles des
Aß peptides ne sont pas été totalement clarifiées à ce jour, bien que de nombreuses études
suggèrent que les peptides ont un certain nombre de propriétés neurotrophiques et
neurotoxiques. Il est suggéré que Aß soluble joue un rôle important dans la croissance
neuronale, la survie et la modulation synaptique, tandis que les oligomères et fibrilles ont des
propriétés toxiques.9
Mimer des -brins pour empêcher la formation de en feuillet β représente une nouvelle
stratégie thérapeutique vers la prévention ou le traitement de maladies associées à des
structures en feuillet β et, en particulier, AD, dans lequel le processus d'agrégation des
protéines implique une transition de la structure secondaire de non ordonnée/α-hélice à une
conformation riche en feuillet β, conduisant à la formation de fibres. Dans ce cas, la
conception de médicament consiste en l'étude des interactions protéine-protéine associées à
cette maladie, suivie par la conception de petites molécules qui peuvent imiter ou se lier à
l'une des protéines en interaction impliquées dans cette maladie. Il y a deux stratégies
possibles pour le traitement AD: inhibition de la formation d'oligomères ou de rediriger la
cascade d'agrégation vers des espèces hors voie avec une toxicité réduite (fibrilles).10,11
Récemment, notre groupe a développé des ligands potentiels de β-amyloide qui pourraient
moduler l'agrégation de β-peptides impliqués dans AD. Une nouvelle classe de dérivés de
glycopeptides, sur la base de deux dipeptides hydrophobes (Ala-Val et Val-Leu) liés à un
échafaudage D-glucopyranosyl hydrophile par des segments aminoalkyle et carboxyéthyle en
positions C1 et C6, respectivement ont été conçus pour lier la séquence hydrophobe de
peptide ß-amyloide KLVFF (Aβ16-20) (Figure 3). Ces composés sont censés établir des
interactions hydrophobes avec le peptide A, tandis que l'échafaudage de glycoside est censé
perturber le réseau régulier de liaisons hydrogène entre les brins , et par conséquent,
perturber l'interaction avec d'autres peptides A agissant comme élément casseur de
feuillet , et empêchant par conséquent l'oligomérisation. Parmi ces molécules, le composé 2
possède une bonne activité inhibitrice, évaluée par le test ThT, en augmentant la phase de
latence de A1-40 aux ratios composé: A1-40 de 1:1 et 0.1:1 respectivement.12 Des
pharmacomodulations ont permis la découverte de molécules capables soit de stabiliser le
peptide monomère ou d'accélérer l'agrégation de A1-42, afin de prévenir la présence de
petits oligomères toxiques.13 Cette série glycopeptides n'a pas montré de conformation
favorisée en solution sans la présence de peptides A.
Figure 3. Le conception peptidomimétique à base de sucre
Ayant ces résultats, nous avons décidé de suivre une autre stratégie en utilisant des mimes d’
d’épingle à cheveux β. Sur la base des quelques données publiées récemment sur des mimes
d’épingle à cheveux β, en particulier sur les structures macrocycliques de Nowick,14 comme
inhibiteurs de l'agrégation des protéines, nous avons supposé que la pré-structuration des
molécules peptidomimétiques pourrait augmenter leur affinité pour les peptides A et donc
augmenter leur activité inhibitrice de l'agrégation. Notre conception vers des mimes d’
d’épingle à cheveux β stables, qui pourraient interagir et éventuellement agir en tant que
ligand de feuillet β, et inhibiteur de l'agrégation, implique un assemblage d’un échafaudage
bifonctionnel dicétopipérazine (DKP-1), un brin peptidomimétique pour stabiliser la
formation de feuillets β et enfin une séquence peptidique convenable pour la liaison à la
protéine cible (Figure 4(.
Figure 4. La structure générale de β-épingle à cheveux
DKPest un échafaud dérivé de l'acide L-aspartique et (S)-2,3- acide diaminopropionique,
portant les fonctionnalités amino et acide carboxylique dans une relation cis qui est capable de
stabiliser les structures en épingle à cheveux lorsqu'il est introduit entre deux séquences
peptidiques. Par rapport au travail précédent dans notre groupe, le choix de remplacer l'une
des séquences peptidiques par un brin peptidomimétique était destiné à accroître la stabilité
métabolique de la molécule vis-à-vis de son utilisation potentielle dans des essais biologiques
comme inhibiteur de l'agrégation d'amyloide.
Comme brin peptidomimétique, nous avons décidé d'intégrer dans notre séquence le 5-amino2-methoxybenzhydrazide, qui est une partie des mimes de -brin (unité "Hao") reportés par
Nowick et ses collègues. L'introduction de 5-amino-2-methoxybenzhydrazide dans les mimes
-brin s’est avérée extrêmement efficace pour la formation de feuillets β intermoléculaires
avec les parties terminales des protéases du HIV-1 et l'inhibition de leur dimérisation, ainsi
que pour augmenter la stabilité métabolique par rapport aux protéases. Enfin, comme pour la
séquence peptidique, quatre résidus Gly-Val-Val-Ile ont été introduits. Le séquence GVVI a
été choisie parce que c’est la séquence 38-41 de Aβ-1-42 et il a été montré comme
interagissant avec l'autre séquence hydrophobe 16-19 (KLVF) dans la structure des
protofilaments de Aβ-1-42 par RMN à l'état solide, et dans les oligomères solubles du βpeptide amyloide.
Par ailleurs, en vue d'augmenter l'affinité de cette série de mimes d’épingle à cheveux pour
A1-42, nous avons fourni à ces molécules la possibilité d’engager également des interactions
électrostatiques avec A1-42. A cet effet, le résidu N-terminal a été déprotégé dans toutes les
molécules finales en vue de promouvoir des interactions ioniques avec des résidus acides
d'A1-42. En effet, plusieurs études expérimentales et computationnelle sur A1-42 ont
montré que, en plus des interactions hydrophobes comportant en particulier la séquence 16-21
(KLVFFA), la formation d'un pont salin entre les acides aminés Asp23 et Lys28 pourrait
stabiliser un coude impliquant les résidus 24-28.15 Une interaction avec Glu22 pourrait
également être promue et bénéfique pour l'activité des molécules, comme suggéré par le
travail de T. Schrader.15b Notre groupe a précédemment observé que les interactions ioniques
améliorent l'activité inhibitrice des glycopeptides.
La synthèse de divers dérivés de l'hydrazide 5-amino-2-méthoxybenzoique contenant
l'acétamide et le trifluoroacétamide a été réalisée, et les β-brins préparés ont ensuite été liés à
deux échafaudages dicétopipérazines de configuration cis ou trans. La préparation de bras
peptidiques suivie de la synthèse peptidique en solution stratégie Boc conduisant à la
formation de séquences de tétrapeptide GVVI et KLVF. Les critères étudiés qui peuvent
influencer l'activité sur l’oligomérisation précoce et la fibrillation ont été:
1. La structure en épingle à cheveux β: cis contre trans -DKP; la présence de deux bras liés à
l'échafaudage par rapport à un seul bras; l'effet du tétrapeptide isolé et les bras
peptidomimétiques
2. La séquence peptidique: GVVI (C- résidus de séquence terminale 38-41, séquence
complémentaire dans les fibrilles) par rapport KLVF (résidus 16-19, séquence hydrophobe
centrale)
3. Le Groupement CH3 par rapport CF3 dans la partie C-terminale des molecules
4. La possibilité de former des interactions électrostatiques: le clivage de la partie N-terminale
des molécules; différence entre résidu Lys contre un résidu Val dans le bras
peptidomimétique.
L'un des composés intéressants, 4 qui contient le bras Val-peptidomimétique et la séquence
peptidique GVVI a en outre été étudiée par analyse conformationnelle RMN confirmant la
structure en épingle à cheveux. L'évaluation biologique de ce composé a été suivie en utilisant
un essai de fluorescence à la ThT, démontrant que cette épingle à cheveux retarde la cinétique
d'agrégation en augmentant la phase de latence par un facteur de 2.5. Afin de confirmer la
capacité de ce composé à moduler la cinétique d'agrégation, des analyses par microscopie
électronique à transmission (MET) ont également été réalisées et les résultats obtenus sont en
accord avec les données ThT. D'autre part, l'épingle à cheveux 5 composé de bras Valpeptidomimétique fluoré et la séquence KLVF comme bras peptidique (Figure 5) montre un
effet significatif sur la cinétique d'agrégation A1-42. Il peut effectivement retarder la
cinétique de oligomérisation confirmée par un essai de fluorescence à la ThT, ainsi que par
des analyses de TEM et CE. Donc, en conclusion, les mimes d’épingles à cheveux préparés
avec la séquence GVVI ou la séquence KLVF sont capables de retarder la cinétique
d'agrégation et nous pouvons les considérer comme des modulateurs de l'agrégation Aß1-42.
La présence d'une amine libre à N-terminaison de l'épingle à cheveux a augmenté de manière
significative l'activité de toutes les molécules contre l'agrégation de Aß1-42, par rapport à
l'activité des composés protégés suggérant que des interactions ioniques sont susceptibles
d'être mises en place entre le groupe amino terminal et les résidus acides du peptide amyloide
(probablement asp 23 qui est crucial pour la structure en épingle à cheveux de Aß).
Figure 5. La structure d'épingles à cheveux avec une activité inhibitrice prometteuse
Le DKP2 (la configuration trans) a été généralement utilisé dans notre groupe comme un
échafaudage avec la possibilité de construire une structure étendue. La synthèse de la seconde
série de molécules conçue contenant trans DKP comme des analogues de l'épingle à cheveux,
a été réalisée révélant des résultats biologiques importants. Fait intéressant, la combinaison de
DKP2, le brin Val-peptidomimétique fluoré, et la séquence GVVI, le composé 6, accélère la
cinétique de l'agrégation de A1-42, conduisant à la formation de fibres qui sont
morphologiquement différentes des fibres formées par A confirmés par ThT essai ainsi que
ainsi que l'analyse de TEM et CE. De manière surprenante, par modification de l'acide aminé
de bras peptidomimétique de la valine à la lysine, nous avons obtenu un composé plus
puissant qui retardent la cinétique d'agrégation à un rapport 01:10 de A1-42: composé 7
(Figure 6).
Figure 6. Composés contenant DKP trans avec une activité intéressante
D'après les résultats obtenus, nous pouvons penser que la présence de groupe CF3 a un rôle
important dans la liaison et la modulation de la cinétique d'agrégation de -42.
En résumé, des résultats prometteurs ont été obtenus avec les deux échafaudages DKP (cis /
trans), différents bras peptidomimétiques dérivés des motifs Nowick avec deux séquences
différentes de tétrapeptides. Les résultats de l'essai de fluorescence ThT ont confirmé
l'importance de la molécule entière pour moduler les cinétiques d'agrégation de Aß1-42. Les
évaluation par CE ont confirmé que les molécules 4, 5, et 6 sont capables de moduler aussi
considérablement le procédé d'oligomérisation précoce. Les évaluations cellulaires, sur l'effet
de la toxicité Aß1-42 sur cellules de neuroblastome humain, de quelques molécules
représentatives et prometteuses sont en cours.
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5
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7
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Ravaux, S. Ongeri, J. Med. Chem., 2006, 49, 4657.; b) A. Vidu, L. Dufau, L. Bannwarth, JL Soulier,
S. Sicsic, U. Piarulli, M. Reboud- Ravaux, S. Ongeri, ChemMedChem., 2010, 5, 1899.
13
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Ongeri, Eur. J. Med. Chem., 2014, 86, 752-758. b) J. Kaffy, D. Brinet, KF Fera, C. Bernardi, N.
Tonali, JL Soulier, L. Khemtémourian, I. Correia, O. Lequin, M. Taverna, B. Crousse, S. Ongeri,
manuscrit en préparation.
14
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15 a) MD Smith, L. Cruz, J. Phys. Chem., 2013, 117, 14907-14915. b) K. Hochdörffer, J.-März
Berberich, L. Nagel- Steger, M. Epple, W. Meyer-Zaika, AHC Horn, H. Sticht, S. Sinha, G. Bitan, T.
Schrader, J. Am. Chem. Soc., 2011, 133, 4348-4358.
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