Maintenance et variations du matériel génétique

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Biochimie - Biologie moléculaire
Chapitre 4 :
Maintenance et variations
du matériel génétique
Professeur Joël LUNARDI
MED@TICE PCEM1 - Année 2006/2007
Faculté de Médecine de Grenoble - Tous droits réservés.
Chapitre 4. Maintenance et variations du matériel génétique
I. Mécanismes de maintenance de l’ADN
II. Variations du message génétique
I. Mécanismes de maintenance de l ’ADN
réactifs génotoxiques
accidents spontanés
erreurs de réplication
DOMMAGES
« by-pass » polymérases
détection des dommages
mutations
maladies génétiques,
cancers...
systèmes de
réparation
ADN réparé
check-point du
cycle cellulaire
apoptose
1. Altérations
physiques : chaleur, rayonnement cosmique, radioactivité, UV ...
UV
dimère cyclobutane
chimiques : -agents alkylants (EMS, diméthylnitrosamine…)
- agents pontants interbrins (psoralène, cisplatine…)
- agents intercalants
- analogues de bases (5-bromouracile, 2-aminopurine….)
physiologiques : - erreurs de réplication
- phénomène de tautomérisation
- oxydation (ion superoxyde, 8-OH guanine…)
- déamination (adénine
xanthine, cytosine
- acidification cellulaire et dépurination
uracile)
2. Correction des dommages
2.1. prévention
O2°-, H2O2, OH°
- superoxyde dismutase, catalase, peroxydases
- tampons physiologiques
acidification
- NADPH, glutathion, vit E
oxydations
2.2. mécanismes de correction
correction
immédiate
excision de
nucléotides (NER)
excision de base
(BER)
excision excision
longue
courte
TCR
ADN (gènes)
ADN total
TCR
lésions oxydatives
adduits monofonctionnels
correction des
mésappariements
lésions UV
adduits chimiques
réparation secondaire
réparation
des cassures
2.3. correction immédiate
photolyases
alkyltransférases (ex: O6-méthylguanine- DNA méthyl transférase = MGMT)
activité exonucléase des polymérases
erreurs d’incorporations
≈1/104 pb vs 1/108 pb final
arrêt de la polymérase
activité 3’-5’ exonucléase
reprise de synthèse 5’- 3’
2.4. correction secondaire
2.4.1. réparation par excision de bases (BER)
5’
3’
5’
OH
1. reconnaissance
- excision de la base par une
glycosylase spécifique: site AP
- coupure du brin d ’ADN par
AP endonucléases
3’
5’
3’
2.a - réparation « short patch » : ADN pol β,
XRCC1
2.b - réparation «long patch » : exonucléases,
ADN pol δ, PCNA, RF-C, FEN1 endonucléase
5’
3’
5’
3. DNA ligase
3’
2.4.2. réparation par excision de nucléotides (NER)
5’
1.
5’
5’
5’
phase de reconnaissance, d ’ouverture du double
brin et excision par le complexe excinucléase :
- nucléase ATP dépendante
- ≈ 16 protéines chez l’homme (XPA-XPG, ERCC1ERCC6, TFIIH…)
TFIIH : réparation liée avec la transcription
(TCR: transcription coupled repair)
5’
5’
2. synthèse réparatrice et ligation (PCDNA,
DNA pol δ et ε, ligase)
2.4.3. réparation des cassures double brin
2.4.3. réparation des cassures double brin
raboutage double-brin
Ku70, Ku80
DNA-PKcs
Nbs1, Mre11,
Rad50, XRCC4
ligase
recombinaison homologue
2.4.3. réparation des cassures double brin
raboutage double-brin
Ku70, Ku80
DNA-PKcs
Nbs1, Mre11,
Rad50, XRCC4
ligase
recombinaison homologue
2.4.4. correction des mésappariements
G
T
3’
Mut S
G
T
3’
3’
Mut L
Mut H
3’
Mut L
3’
Mut S
Mut S
3’
G
T
Mut H
3’
1. reconnaissance du mésappariement par Mut S,
Mut L et Mut H
2. coupure du brin à réparer par mut H, puis digestion
3’-5’ par exonucléase
3. synthèse du brin par DNA pol III puis ligation
Mut H
G Mut L
3’
3’
chez l’homme : Mut S = MSH 2, MSH6, MSH3
Mut L = MLH 1, PMS2, GTBP
G
C
3’
2.5. « bypass » polymérases
+
les déficits des systèmes de réparation sont à l ’origine de prédispositions
aux cancers
- mutation des gènes XP et sensibilité aux UV : xeroderma pigmentosum
- déficit du NER : syndrome de Cockaine, trichiodystrophie
- déficit des systèmes de réparation des cassures: syndrome de Bloom,
syndrome de cassure de Nijmegen
- déficit des systèmes de réparation des mésappariements (gènes MLH1,
MSH2, MSH6 …) : HNPCC
- déficit des systèmes de reconnaissance:
- gène ATM & ataxie télangiectasique
- mutation du gène p53 & tumeurs multiples
- déficit du contrôle du cycle cellulaire : gènes BRCA1, BRCA2 & cancers
du sein
II. Variations de l ’ADN
1. Variants moléculaires
modifications entre 2 génomes pris au hasard chez 2 individus
non apparentés ≈ 1 variation / 1000-2000 pb
mise en défaut des systèmes de sauvegarde :
méthylation
---T-C-G-T---A-G-C-A-
modifications :
désamination
CH3
---T-C-G-T---A-G-C-A-
- substitutions
- délétions
- insertions
---T-T-G-T---A-A-C-A---T-C-G-T---A-G-C-A-
A ou G > T ou C = transversion
A > G, C > T = transition
2. Conséquence d’une variation
la modification ne change pas
le message exprimé : allèle polymorphe (polymorphisme)
gène A
gène B
la modification change le message exprimé : allèle muté (mutation)
3. Polymorphismes
3.1. Les SNPs (Single Nucleotide Polymorphisms) : variation d’1 nucléotide
(≈ 1 tous les 2000 pb ! ).
La modification peut éventuellement altérer le site de reconnaissance d’un
enzyme de restriction : polymorphisme de restriction (voir chapitre 8)
----GAATTC-------CTTAAG----
Eco RI
----GAGTTC-------CTCAAG----
Eco RI
----G
AATTC-------CTTAA
G-------GACTTC-------CTGAAG---pas de coupure (restriction)
3.2. Les polymorphismes de répétitions de type microsatellites
5’3’
5’3’
allèle 1a = 99 CA
5’ ---ATCGTCACACACA--CACACACACTGGTCA-----TAGCAGTGTGTGT--GTGTGTGTGACCAGT---5’
5’ ---ATCGTCACACACA--CACACACACACACACTGGTCA-----TAGCAGTGTGTGT--GTGTGTGTGTGTGTGACCAGT---5’
chr 1a chr 1b
allèle 1b = 102 CA
- motifs de 2, 3 ou 4 nucléotides
- nombreux ( > 50 000 dans le génome humain)
- le nombre de répétition varie suivant le microsatellite étudié
- le nombre d’allèles est généralement compris entre 2 et 10
- le nombre de répétitions ne varie généralement pas lors de la transmission
- les séquences de part et d’autre du microsatellite sont identiques pour
les différents allèles d’un microsatellite
3.3. Les polymorphismes de répétitions de type minisatellites (VNTR*)
5’3’
allèle 7a = 3 répétitions
5’3’
5’
5’
chr 7a chr 7b
5’
5’
allèle 7b = 5 répétitions
- séquences de 9 à 80 de paires de bases
- un motif central commun : --GGGCAGGAXG-- le nombre de répétition varie suivant le mini satellite étudié
- le nombre de répétitions ne varie généralement pas lors de la transmission
entre 2 générations
- concentrés au niveau des extrémités télomériques et sub-télomériques
* : Variable Number Tandem Repeats
4. Recombinaison
4.1. Recombinaison générale : modèle procaryote
A
5’
a
5’
5’
5’
5’
5’
A
a
5’
B
5’
b
5’
2 double brins (A-B et a-b) comportant
d’importantes homologies de séquence
fixation de Rec B,C,D
5’
5’
déroulement du double brin puis coupure d’1 brin et
fixation de Rec A
5’
B
b
appariement entre simples brins en raison de l’homologie
importante de séquence
A
B
a
b
A
B
a
structure en
chi de Holliday
rotation de 180° de A-B
b
A
B
b
a
coupure dans le plan oblique
coupure dans le plan horizontal
B
a
B
A
A
b
a
b
ADN recombiné (a-B et A-b )
échange partiel d’une partie de simple brin
b. Recombinaison lors de la prophase meïotique chez l’homme
chr 1 paternel
« crossing-over » par
recombinaison entre
deux chromatides
(2 chromatides sœurs)
chr 1 maternel
(2 chromatides sœurs)
divisions méïotiques I et II
formation de
4 gamètes
gamètes
recombinés
≈ 60 recombinaisons / meïose pour les 2n chromosomes
existence de « points chauds » de recombinaison
distance génétique : f (nb de recombinaisons vs nb de méïoses)
c. Recombinaison équilibrée
1
5’ --CATCTATGCGTACAAGTCTCCTA---GTAGATACGCATGTTCAGAGGAT-- 5’
1b
5’ --CATCTATGCGTACAAGTCTCCTA---GTAGATACGCATGTTCAGAGGAT--5’
x
5’ --CATCTATGCGTACAAGTCTCCTA---GTAGATACGCATGTTCAGAGGAT-- 5’
5’ --CATCTATGCGTACAAGTCTCCTA---GTAGATACGCATGTTCAGAGGAT-- 5’
la quantité de matériel échangé entre 1 et 1b est la même
d. Recombinaison non-équilibrée
1
2
5’ --CATCTATGCGTACAAGTCTCCTA------------------CATCTATGCGTACAAGTCTCCTA-----GTAGATACGCATGTTCAGAGGAT------------------GTAGATACGCATGTTCAGAGGAT- 5’
1b
2b
5’ --CATCTATGCGTACAAGTCTCCTA---------------- --CATCTATGCGTACAAGTCTCCTA-----GTAGATACGCATGTTCAGAGGAT---------------- --GTAGATACGCATGTTCAGAGGAT- 5’
Recombinaison entre la séquence répétée 2 et 1b ’
5’ --CATCTATGCGTACAAGTCTCCTA------------------CATCTATGCGTACAAGTCTCCTA---------CATCTATGCGTACAAGTCTCCTA-----GTAGATACGCATGTTCAGAGGAT------------------GTAGATACGCATGTTCAGAGGAT---------GTAGATACGCATGTTCAGAGGAT- 5’
5’ --CATCTATGCGTACAAGTCTCCTA-------------------------------GTAGATACGCATGTTCAGAGGAT------------------------------ 5’
+
Une recombinaison illégitime non équilibrée au niveau du gène du récepteur des LDL
est à l’origine de certaines formes d’hypercholestérolémie familiale :
1
8 9
18
présence de séquences alu dans introns 1 et 8
1 2
18
si recombinaison entre la séquence alu de l’intron 8 et celle de l’intron 1:
1
8 9
18
x
1 2
1
18
8 2
18
Récepteur des
LDL anormal
19
18
+
une recombinaison spécialisée est à l’origine de la grande diversité des immunoglobulines
nombreux antigènes
nécessité de nombreux anticorps
région de reconnaissance
de l ’antigène
nombre de gènes ?
partie variable: V
partie de jonction: J
partie constante: C
chaîne légère
chaîne lourde
exemple des chaînes légères de type k
300 gènes V
5 gènes J
1 gène C
réarrangement somatique dans les
lymphocytes par recombinaison
ADN du lymphocyte 1
chaîne k n° 1
ADN du lymphocyte 1018
chaîne k n° 1018
300 x 5 x 1 = 1500 combinaisons possibles…
4. Transposition
éléments mobiles de contrôle chez le maïs
transposons procaryotes et résistance aux antibiotiques
transposons des cellules eucaryotes
- éléments P
- transposons d’ADN, rétrotransposons
< 2000 pb
a. Transposition d’ADN
séquences cibles à répétition directe
éléments IS :
séquences inversées
transposase
5’--TACGTACATCG-----ATGCATGTAGC----
5’--ATCGCATGCAT-----TAGCGTACGTA----
transposase gènes additionnels
éléments Tn
IS
région centrale
IS
transposons composites
N gènes
type de transposition
conservative
réplicative
b. Rétrotransposition
rétrotransposon
réverse
transcription
transcription
ADNc
réintégration
ARN
copie de rétrotransposon
LTR
gag
pol
env
LTR
Éléments répétés de type LTR
gag ?
pol
poly A
LINE
poly A
SINE
+
L’activation et la rétrotransposition d’une séquence de type rétrotransposon
peut être à l’origine de mutations lorsque l’insertion se fait dans un gène
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