transcrits érythroïdes, un profil transcriptionnel qui correspond à
celui des patients del(5q) répondeurs au lénalidomide [7]
.
L’hypothèse d’un effet d’haplo-insuffisance est confirmée chez
les patients qui ne portent ni mutation ou délétion cryptique
bi-allélique du gène, ni perte d’expression du transcrit, ce
qui exclut la possibilité d’une inactivation bi-allélique de
RPS14. Enfin, la surexpression par vecteur lentiviral de RPS14
dans les progéniteurs CD34+ de patients porteurs d’un syn-
drome 5q- restaure l’expression des transcrits érythroïdes et la
différenciation.
Le gène RPS14 code pour un composant de la sous-unité
ribosomale 40S. La biogenèse des ribosomes requiert 4 ARN
ribosomaux (ARNr), et au moins 80 protéines différentes dont
l’ARN polymérase I et des ribonucléoprotéines nucléolaires.
L’ARNr 18S, composant de la sous-unité 40S est produit à
partir d’un pré-ARNr de 30S. L’invalidation du gène RPS14
chez S. cerevisiae ou l’inhibition de RPS14 par shRNA dans
la lignée érythroïde humaine TF-1 induit une augmentation du
ratio 30S/18S et une apoptose. Chez les patients SMD avec
délétion 5q, l’augmentation du ratio 30S/18S témoignerait
donc d’une inhibition de la biogenèse des ribosomes [1]. Il
est intéressant de faire le parallèle avec les insuffisances
médullaires constitutionnelles prédisposant aux cancers, que
sont l’anémie de Blackfan-Diamond (ABD), la dyskératose
congénitale (DC), l’hypoplasie cartilagineuse (HHC) et le
syndrome de Schwachman-Diamond (SDS). Plusieurs muta-
tions de gènes impliqués dans la maturation des ARNr ont été
décrites. La DC dans sa forme récessive liée à l’X est associée
à une anomalie du gène codant la dyskérine 1 (DKC1),
protéine nucléolaire s’associant aux ribonucléoprotéines. Le
SDS et le HHC sont liés à des mutations de gènes SBDS et
RMRP codant des protéines nucléolaires à activité endonuclé-
asique. Enfin, l’érythroblastopénie constitutionnelle de
Blackfan-Diamond, dont le phénotype ressemble à celui du
syndrome 5q, est associée à des mutations hétérozygotes du
gène RPS19 situé sur le chromosome 19q13.2 dans 25 %
des cas, et plus rarement des gènes RPS24 ou RPS17 [8]. Les
anomalies de biogenèse des ribosomes contribueraient au
phénotype de ces anémies acquises et constitutionnelles.
Pourquoi existe-t-il une atteinte spécificité de la lignée
érythroïde alors que l’expression de RPS14 est ubiquitaire ?
La question n’est pas résolue mais il est possible que les
délétions mono-alléliques ne s’expriment que dans les cellules
à renouvellement rapide telles que les cellules érythroïdes (2
x10
11
nouvelles cellules par jour). Cependant, il n’est pas
exclu que la délétion mono-allélique d’autres gènes de la
région 5q32-5q33.1 puisse contribuer au phénotype du
syndrome 5q-.
Les délétions 5q- associées
aux SMD de haut risque
et aux LAM secondaires
Les anomalies 5q associées aux SMD avec excès de blastes
ou aux LAM secondaires à une chimiothérapie concernent
une région centrée sur la bande 5q31.1 dont les bornes sont
très variables. Cette région s’étend sur environ 3.7 Mb entre
le gène codant IL9 du côté centromérique et le gène codant
UBE2D2 du côté télomérique [9-12]. Environ 28 gènes ont
été identifiés dont IL9, TGFB1, TRPC7, CDC23, EGR1,
HSPA9B, CTNNA1 et UBE2D2 parmi lesquels de possibles
gènes candidats suppresseurs de tumeurs.
Plusieurs gènes de la région de délétion ont été étudiés.
EGR1 qui code pour un facteur de transcription à doigt de
zinc pourrait être un gène suppresseur de tumeur. Les souris
EGR1
+/-
développent des cancers hématopoïétiques, ce qui
suggère un effet d’haplo-insuffisance [13]. HSPA9B/
mortalin/mthsp70/GRP78 code pour une forme mitochon-
driale des protéines de choc thermique de 70 kDa très
conservée dans l’évolution et impliquée dans le transport, le
repliement et l’assemblage des protéines dans la matrice
mitochondriale. Chez le poisson zèbre, le mutant crimeson-
less (crs) de HSPA9B présente une dysplasie multilignée des
progéniteurs hématopoïétiques liée à un défaut de matura-
tion et à un excès d’apoptose [14]. De même, les mutations
perte de fonction de la HSPA9B chez la levure et chez
C. elegans induisent des anomalies morphologiques de la
mitochondrie et la mort cellulaire. En revanche, il n’a pas été
rapporté d’anomalies de l’hématopoïèse chez les souris
invalidées pour le gène UBE2D2 qui code pour une E2
ubiquitine ligase.
Selon l’équipe de Look, HSPA9B et UBE2D2 ne sont pas
inactivés dans les cellules CD34+CD38-lin
-
de patients
porteurs d’une hémopathie maligne à haut risque avec
délétion mono-allélique 5q- confirmée par FISH. En revanche,
le gène CTNNA1 qui code pour l’a-caténine a une expres-
sion diminuée de plus de 50 % dans les progéniteurs de type
LTC-IC (long term colony-iniating cell) CD34+CD38-
CD123+lin
-
des patients avec del(5q), ce qui suggère que
l’allèle résiduel est fonctionnellement inactif [2]. Dans la
lignée HL-60 del(5q), l’expression de CTNNA1 est en effet
éteinte par modifications épigénétiques (hyperméthylation
de l’ADN et déacétylation des histones) du promoteur. La
décitabine (agent déméthylant l’ADN) ou la trichostatine A
(inhibiteur d’histone déacétylase) restaure l’expression de
CTNNA1 et induit l’apoptose de cette lignée. Chez 2/3
des patients avec del(5q) étudiés, la perte d’expression
de CTNNA1 est due à une hyperméthylation de l’ADN d’une
région promotrice proche du site d’initiation de la trans-
cription. Chez un tiers des patients, l’expression de CTNNA1
persiste, ce qui témoigne soit d’un syndrome débutant
sous l’effet d’une haplo-insuffisance, soit de l’implication
d’un autre gène. CTNNA1 est donc un potentiel gène sup-
presseur de tumeur qui peut être inactivé par délétion d’un
allèle et par extinction épigénétique de la transcription de
l’autre allèle. La perte d’expression de la protéine a-caténine
perturberait l’adhésion des cellules souches clonales dans la
niche hématopoïétique favorisant l’expansion du clone
malin.
Hématologie, vol. 14, n° 2, mars-avril 2008
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