Grenoble Institut des Neurosciences Accueil > Recherche > Plateformes technologiques > Plateforme PIC-GIN Les équipements de la plateforme PIC-GIN Les microscopes simples d'utilisation Pour un simple contrôle, ou une acquisition d'image... Le Nikon Eclipse TS100 Microscope de contrôle pour vérifier les échantillons avant toute utilisation d'un système plus performant. Vidéomicroscopes Les microscopes champs large sont dédiés au suivi du développement de cellules fluorescentes ou non, sur de courtes ou longues durées. Pour limiter la dégradation des échantillons observés lors de l'acquisition, un compromis doit être trouvé en favorisant des temps d'exposition courts et les changements d'illumination rapides. Certains microscopes à champs large sont équipés d'un système de régulation de température et/ou de CO2 garantissant la survie des échantillons sur de très longues durées. Les platines motorisées permettent de mémoriser plusieurs zones et de les acquérir les unes après les autres au cours d'une même expérience. Ces outils sont simples d'utilisation et répondent à la majorité des besoins. Leur limitation provient du fait de l'illumination de tout le champs d'observation qui induit un manque de résolution notamment sur les échantillons épais, ce qui peut conduire à utiliser des microscopes confocaux à balayage laser ou un spinning disk. Services : Observation XYZT Acquisitions sur de courtes ou longues durées Images à multi-marquages Thermorégulation & contrôle CO2 pour maintien des échantillons Déplacement en profondeur rapide et repositionnement précis (Piezo) Multi-positionnement pour suivre plusieurs champs au cours d'une acquisition Échantillons fixés ou vivants Nombreux support d'échantillon utilisables (boite pétri, lame, boite multi-puits…) Mode d'accès : Page 1 Assistance Autonomie (après formation) Prestation de service Equipements : LEICA DMI6000 / ROPER Inversé, thermorégulation, multipositions, scanslides, FRAP et photoactivation, imagerie calcique ZEISS Axiovert 200M / ROPER Inversé, thermorégulation & contrôle CO2, multi-positions, acquisitions longues durées ZEISS Axiovert 200M (2) / ROPER Inversé, thermorégulation, acquisitions courtes durée Microscope confocal Spinning Disk Le compromis idéal pour ceux qui recherchent la résolution et une faible phototoxicité. Le « spinning-disk » allie la rapidité du microscope champ large à la résolution d'un confocal. Cette technique utilise des lasers pour illuminer les échantillons et des caméras ultra-sensibles pour détecter le signal fluorescent. A la différence du confocal à balayage Page 2 laser, le spinning disk illumine l'ensemble de la zone d'observation de manière simultanée permettant de réduire la durée d'acquisition et de réduire la photo-toxicité et permet d'accéder ainsi à l'imagerie 4D (3D + temps). Services : Acquisition XYZT en fluorescence et lumière blanche Multi-marquage Acquisitions sur de courtes ou longues durées Images à multi-marquages Thermorégulation & contrôle CO2 pour maintien des échantillons Déplacement en profondeur rapide et repositionnement précis (Platine Piezo) Multi-positionnement pour suivre plusieurs champs au cours d'une acquisition Échantillons fixés ou vivants Nombreux supports d'échantillon utilisables (boite pétri, lame …) Mode d'accès : Assistance Autonomie (après formation) Prestation de service Equipements : SPINNING DISK ZEISS Axio Observer Z1 / ROPER Alliance d'une bonne résolution et d'une faible phototoxicité Microscopes confocaux / Biphoton La plateforme de microscopie photonique PIC GIN dispose de plusieurs microscopes confocaux. Ils permettre la réalisation de coupes optiques fines au sein d'un tissu/d'une cellule et capturent uniquement le signal fluorescent issu du plan focal en se débarrassant de la fluorescence parasite des plans supérieurs et inférieurs contrairement à la microscopie à champ large. Ceci donne une très bonne résolution axiale, mais les échantillons vont souffrir de la phototoxicité induite par les sources lasers diminuant la capacité d'observation au cours du temps. Les inconvénients de la microscopie confocale et la relative lenteur d'acquisition (balayage laser point par point) pouvant être contrecarré par des systèmes de type spinning disk pour les études sur le vivant. Parmi les microscopes à balayage laser on distingue deux catégories, les microscopes confocaux mono-photon et microscopes confocaux bi-photons. La microscopie bi-photonique utilise un laser IR pulsé femtoseconde permettant de pénétrer l'échantillon plus en profondeur (1mm) et de limiter le photobleaching des fluorophores ainsi que le photodommage de l'échantillon. L'excitation en microscopie biphotonique provient uniquement du point focal permettant d'obtenir une section optique d'échantillons épais (sans pinhole) et ainsi de faire une reconstitution 3D. La microscopie biphotonique couplée à la photoactivation (optogénétique, décageage de glutamate…) et à l'électrophysiologie permet l'imagerie fonctionnelle (imagerie calcique…) in vivo de cellules individuelles (neurones, astrocytes) dans le cerveau de rongeurs anesthésiés. Services : Observation XYZT (multipositions) et dans le temps Images multi-marquages Page 3 Lasers UV pour marquage nucléaires (type DAPI, Hoechst) Thermorégulation et controle CO2pour maintien des échantillons Échantillons vivants ou fixés Analyse spectrale FRAP, FRET Mode d'accès : Assistance Autonomie (après formation) Prestation de service Equipements : ZEISS LSM710 Inversé, analyse, spectrale, thermorégulation, FRAP, FRET LEICA TCS SPE Inversé, pas de laser UV, pas de régulation NIKON Eclipse Inversé, FRAP ZEISS 7MP Droit, 3 NDD (épicollection), large platine motorisée, aesthésie gazeuse, laser IR 680-1080m Page 4 Microscopie TIRF La microscopie TIRF (Total Internal Reflection Fluorescence) permet d'imager une section optique d'une épaisseur de l'ordre comprise entre 20 et 200nm. En TIRF, seule la surface de l'échantillon en proximité immédiate de la lamelle est observée. La haute résolution axiale offerte par cette technique en fait un instrument de choix pour les observations membranaires ou les études du cytosquelette. Services : Étude de récepteurs membranaires Étude de l'exocytose/endocytose Étude de l'adhésion cellule/substrat Étude du cytosquelette sous membranaire Équipement : NIKON / ROPER Inversé, thermorégulation Microscope AIRYSCAN Nouvelle technologie confocale pour une microscopie plus sensible et de haute résolution Page 5 Avec le nouveau détecteur AIRYSCAN installé sur le confocal LSM 710 ZEISS, les utilisateurs peuvent obtenir une résolution 1,7× plus élevée dans toutes les dimensions spatiales. Une sensibilité améliorée donne une meilleure qualité d'image. L'ensemble du processus d'imagerie peut être réalisé avec des protocoles de préparation d'échantillons et de m a r q u a g e s s t a n d a r d s . Microscopie PALM/STORM Nouvelle génération de microscopes permettant de visualiser des objets à une résolution dont l'observation était limitée par la diffraction de la lumière (environ 200nm). Le principe du microscope de super-résolution (PALM/STORM) est basé sur l'observation de molécules uniques. Équipement : ZEISS / ROPER Inversé, techniques super résolution PALM/STORM et également TIRF, FRAP, Spinning Disk, thermorégulation et contrôle CO² Mise à jour le 16 mai 2017 Page 6