(Microsoft PowerPoint - UE 2.1-Master_IADE_3bis [Mode de

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Approfondissement des
connaissances en biologie
moléculaire
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Master IADE – Année 2013-2014
Plan du cours
• Rappels de biologie moléculaire et de biologie
cellulaire
– Les molécules du vivant
– Le support de l’information génétique et son
décodage
– L’organisation de la cellule animale
• Les outils et les approches expérimentales
utilisées par les chercheurs
• Les mécanismes qui permettent aux cellules
de communiquer entre elles
Les outils et approches
expérimentales utilisées par les
chercheurs
Master IADE – Année 2013-2014
Les outils et les approches
expérimentales
• Les méthodes de purification et d’analyse des
molécules présentes dans les cellules
• Les cultures bactériennes
• Clonage et manipulation de l’ADN dans des bactéries
• Les cultures de cellules eucaryotes
• Les techniques de biologie cellulaire
• Souris transgéniques et souris porteuses de
mutations génétiques ciblées
Les méthodes de purification et d’analyse des
molécules présentes dans les cellules (1)
• Lyse de cellules en absence ou en présence de
détergents
• Selon les cas :
– Purification des organelles, des membranes et du cytosol par
centrifugation
– Fractionnement par chromatographie d’exclusion,
chromatographie sur couche mince ou chromatographie en
phase gazeuse
– Purification des acides nucléiques par extraction
phénol/chloroforme et précipitation en présence d’éthanol
Les méthodes de purification et d’analyse des
molécules présentes dans les cellules (2)
• Séparation et visualisation des protéines par
électrophorèse à travers un gel de polyacrylamide
• Séparation et visualisation de fragments d’ADN par
électrophorèse à travers un gel d’agarose
• Détermination de la séquence nucléotidique d’un
gène
• Détermination de la séquence d’acides aminés d’une
protéine
Centrifugation
Chromatographie d’exclusion
Séparation de protéines par
électrophorèse
Séparation de fragments d’ADN par
électrophorèse
Les cultures de bactéries
• Boites de Pétri, fioles de culture, pipettes
• Milieux de culture liquides (tubes,
Erlenmeyer) ou gélosés (Boites de Pétri)
• Centrifugeuse
• Microscope
• Incubateur à 37°C
Les cultures bactériennes
Les plasmides bactériens
• Molécules d'ADN
surnuméraires et circulaires
distinctes de l'ADN
chromosomique
• Non essentielle à la survie de
cellule
• Capables de réplication
autonome
• Peuvent contenir des gènes qui
permettent à une bactérie
d’être résistante à une
antibiotique
• Peuvent être modifiés par des
Les plasmides bactériens
• Molécules d'ADN surnuméraires et
circulaires distinctes de l'ADN
chromosomique
• Non essentiels à la survie de cellule
• Capables de réplication autonome
• Peuvent contenir des gènes qui
permettent à une bactérie d’être
résistante à une antibiotique
• Peuvent être modifiés par des
techniques de recombinaison
génétique in vitro
• Peuvent être réintroduits dans des
bactéries par transfection
Le clonage
d’un gène
dans un
plasmide
Les principales enzymes utilisées pour
modifier des plasmides
• Enzymes des restriction : protéines qui peut couper un
fragment d'ADN au niveau d'une séquence de nucléotides
caractéristique appelée « site de restriction ». Chaque
enzyme de restriction reconnaît ainsi un site spécifique. Il en
existe plusieurs centaines qui reconnaissent chacune une
séquence différente.
• ADN ligase : protéine qui répare les brins cassés d'ADN et qui
peut former des liaisons phospho-diester covalentes, et donc
lier ou connecter des brins d'ADN entre eux.
Exemples d’enzyme de restriction
Exemple de ligation
Les cultures de cellules eucaryotes
• Boites de Petri, fioles de culture, pipettes
• Milieu de culture (isotonique, pH neutre)
– Acides aminés, glucose, vitamines, ions (chlorure
de calcium, chlorure de magnesium,...)
•
•
•
•
Hotte à flux laminaire
Centrifugeuse
Microscope
Incubateur (37°C, CO2)
Fibroblastes de souris en culture
Cellules issues d’une tumeur cérébrale
Lymphocytes de souris
Neurones en culture
Le dénombrement direct des cellules
permet de déterminer un nombre absolu
de cellules dans un volume déterminé. Ce
type de numération est bien adapté aux
cellules eucaryotes.
Les méthodes d’analyse et de modification
génétique des cellules eucaryotes (1)
• Identification et quantification d’ARN messagers
– Hybridation moléculaire avec une sonde spécifique (Northern)
– Réaction de polymérisation en chaîne (PCR) avec des amorces
spécifiques
– Analyse globale du transcriptome par hybridation sur des puces à
ADN
• Identification et quantification des protéines exprimées
– Immunofluorescence
– Electrophorèse à travers un gel de polyacrylamide et détection
de la protéine d’intérêt avec un anticorps spécifique
– Analyse globale du protéome
Réaction de polymérisation en chaîne
Hybridation moléculaire
Les méthodes d’analyse et de modification
génétique des cellules eucaryotes (2)
• Transfert de gènes
– Transfection au phosphate
de calcium
– Electroporation
– Lipofection
– Infection avec un virus
recombinant
• Invalidation d’un gène par
transfert d’ARN interférents
Production de souris transgéniques
par micro-injection dans un oocyte
Production de souris transgéniques
par micro-injection dans un oocyte
Production de souris transgéniques par
injection de cellules ES modifiées génétique
dans un blastocyste
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