Description du stage : donner un résumé (contexte, problématique, matériels et méthodes).
contexte, problématique
En France, la lagune de Thau, moteur économique majeur de la région Languedoc Roussillon, es
confrontée régulièrement non seulement à de fortes mortalités de juvéniles de l’huître Crassostre
gigas depuis 2008 mais également à des efflorescences récurrentes de la microalgue productrice d
saxitoxines, Alexandrium catenella (Lilly et al., 2002 ; Laabir et al., 2011).
Les effets des efflorescences toxiques sur les systèmes de défense des bivalves, et plu
particulièrement sur l’apoptose restent encore méconnus et peu étudiés. L’apoptose est u
mécanisme de défense actif d’autodestruction contrôlée qui joue un rôle clé lors du développemen
et la réponse immunitaire (Kiss, 2010). Ce mécanisme est connu chez les mollusques pour s
produire en réponse à des infections et ont été mis en évidence notamment chez Crassostre
virginica après infection par des pathogènes (Terahara et Takahashi, 2008 ; Hughes et al, 2010). Che
l’espèce qui nous intéresse, C. gigas, trois gènes pro-apoptotiques (caspase 1, caspase 2, FADD) et u
gène anti-apoptotique (IAP1) sont surexprimés suite à une infection par Vibrio anguillarum (Zhang e
al, 2011). Chez C. gigas, trois gènes pro-apoptotiques (Caspase 1, caspase 2, FADD) et un gène anti
apoptotique (IAP1) montrent une up-régulation suite à une infection par Vibrio anguillarum (Zhang e
al, 2011).
un dysfonctionnement de ce mécanisme induit par la microalgue toxique A. catenella pourrai
avoir des conséquences sur la capacité de résistance des huîtres aux infections microbiennes.
Matériels et méthodes
Expérimentations animales en milieu contrôlé : Impact d’Alexandrium catenella sur l’activit
apoptotique de l’huître Crassostrea gigas.
Sous des conditions contrôlées dans la salle d’infections expérimentales de la plateforme expérimental
de l’IFREMER de Palavas, des huîtres creuses C. gigas (2 x 25animaux adultes diploïdes) seron
exposées pendant 48h soit au dinoflagellé toxique A. catenella soit au dinoflagellé non toxique A
tamarense à des concentrations correspondantes aux conditions de « bloom naturel». De
prélèvements seront réalisés pour chaque traitement à différents temps. Les tissus étudiés, le
hémocytes (cellules immunitaires), la glande digestive (organe accumulateur de toxines) seron
prélevés au temps 0, 6, 24, 48 et 72 h (5 huîtres par temps de prélèvement) pour :
i) La recherche de lésions tissulaires (analyse histologique) et de la présence de cellule
en apoptose (marquage TUNEL) dans la glande digestive et l’hémolymphe d’huître
ayant ingéré l’algue toxique A. catenella sera réalisée.
ii) La recherche d’activité pro-apoptotique (activité caspase et production de RO
(Reactive Oxygen Species) dans la glande digestive et les cellules immunitaires.
iii) Une analyse de l’expression de gènes connus pour avoir des activités pro et anti
apoptotique, pour être impliqués dans l’une des voix conduisant à l’apoptose ou connu
pour être modulés chez C. gigas suite à une infection microbienne.
Une partie des échantillons de glandes digestives sera fixée dans une solution de Davidso
pendant 48 heures avant inclusion dans la paraffine et analyse histologique. Une partie des échantillon
(glandes digestives et hémocytes) sera broyée et conditionnée pour l’analyse de la production de RO
et la mesure d’activité caspase. Une partie des échantillons (glandes digestives et hémocytes) ser
conservée dans un conservateur d’ARN pour une extraction ultérieure des ARN totaux et l’analyse d
l’expression des gènes par PCR quantitative (qPCR). Une partie sera conservée à –20°C pour l’analys
des concentrations en toxines paralysantes (PSP) afin de les comparer au profil toxinique connu pour A
catenella. Lors des expérimentations, certains paramètres seront mesurés comme la taille et la quantit
des cellules immunitaires circulant dans l’hémolymphe.