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Université de Fribourg
Faculté des Sciences
Département de Biologie
Devenir des cellules corticospinales axotomisées suite à une hémi-section
cervicale chez des primates traités avec un anticorps inhibant l’action de
«Nogo».
Injection BDA
Right M1 hand area
Injection BDAInjection BDA
Right M1 hand area
Travail de Bachelor de :
Beaud Marie-Laure
Rte de la Grangette 17
1723 Marly
Juin 2005
Ce travail a été réalisé dans le laboratoire du Professeur Eric M. Rouiller
Sous la supervision de Dr. Thierry Wannier
Unité de Physiologie
Département de Médecine
Faculté des Sciences
Université de Fribourg
Travail de Bachelor Marie-Laure Beaud
Table des matières
Introduction ...........................................................................................................1
Hypothèse du présent travail.................................................................................8
Matériel et méthodes.............................................................................................9
Résultats ..............................................................................................................13
Discussion ...........................................................................................................24
Références ...........................................................................................................28
Travail de Bachelor Marie-Laure Beaud
Table des Figures
Figure 1 : cerveau de primate (ici l’homme) comportant les différentes aires de
Brodmann, dont l’aire 4 en jaune correspondant à M1......................................................1
Figure 2 : Le système corticospinal. Les deux panneaux du haut représentent la
localisation du cortex moteur primaire dans le cerveau, alors que les autres figures
montrent différents niveaux du cerveau et de la moelle épinière ainsi que la trajectoire
pour une fibre corticospinales croisée................................................................................2
Figure 3 : Le panneau de gauche montre des coupes longitudinales de moelle épinière
lésée de rat. Les numéros de 1 à 4 montrent les cas d’animaux lésés et traités avec
l’anticorps IN-1. Le numéro 5 représente le cas d’animaux lésés mais non traités. Les
fibres corticospinales, marquées par le traceur neuroanatomique BDA, sont visibles à
l’intérieur de chaque moelle épinière. On remarque que, chez les animaux traités, les
fibres corticospinales interrompues par la lésion, ont régénérés sur une certaine distance
plus bas que la lésion, ce qui n’est pas le cas d’animaux non traités. Le panneau de droite
représente la distance maximum de régénération des axones des fibres corticospinales
post-lésionnellement. Le traitement avec l’anticorps IN-1 induit donc une régénération
des fibres corticospinales. ..................................................................................................5
Figure 4 : Performance comportementale avec évolution temporelle du score
comportemental chez un animal traité (panneau du haut singe nommé Mozambique) et
chez un animal non traité (panneau de milieu singe nommé Hamalie), avant et après une
lésion unilatérale de la moelle cervicale. Le panneau du bas illustre le test de Binkman..7
Figure 5 : Cerveau de singe avec localisation des injections dans M1 du traceur
antérograde nommé BDA.................................................................................................10
Figure 6 : Cortex moteur primaire coloré avec le SMI-32 comportant pour la couche V le
périmètre (en orange) et le contour des cellules pyramidales (en vert), positives pour le
marqueur SMI-32.............................................................................................................12
Figure 7 : Coupe de la moelle épinière où les axones des fibres corticospinales sont mis
en évidence grâce au traceur antérograde BDA qui est injecté dans l’hémisphère droit de
M1 d’un animal intact......................................................................................................13
Figure 8 : Photos à l’agrandissement 40x d’une coupe du singe contrôle Hamali,
respectivement son hémisphère contralésionnel et ipsilésionnel, montrant les cellules
pyramidales marquées au SMI-32....................................................................................16
Figure 9 : Cellule pyramidale de la couche V de M1, avec le contour de l’aire mesurée
(Colombo, agrandie 400x)................................................................................................17
Figure 10 : Nombre de cellules SMI-32 positives dans les deux hémisphères dans M1. La
lésion n’induit pas une mort cellulaire dans l’hémisphère contralésionnel. ....................19
Figure 11 : Histogrammes illustrant la distribution des surfaces cellulaires dans les deux
hémisphères du singe Mozambique. Le panneau du haut montre cette distribution dans
Travail de Bachelor Marie-Laure Beaud
l’hémisphère ipsilésionnel, c’est-à-dire l’hémisphère non ou peu affecté pas la lésion.
Quant au panneau du bas, il montre cette distribution dans l’hémisphère contralésionnel,
hémisphère affecté par la lésion. A noter que les cellules de très grande taille sont
totalement absentes dans cet hémisphère.........................................................................20
Figure 12 : Distribution des cellules par hémisphère et par singe. En bleu, les singes non
lésés et non traités; en vert, les singes ayant subi une hémisection mais n’ayant reçu
aucun traitement; en rouge, les singes ayant subi une lésion et ayant reçu un traitement.
Les valeurs des tests statistiques (Mann-Whitney U-test), évaluent l’hypothèse que la
distribution des cellules diffère entre les deux hémisphères. Ces valeurs sont indiquées
pour chaque animal en dessus du graphique en caractère gras. .......................................23
Table des Tableaux
Tableau 1 : Etendue des lésions chez tous les singes inclus dans cette étude..................15
Tableau 2 : Le nombre de cellules SMI-32 positives dans la couche V est comparable
dans les deux hémisphères, tant chez les animaux intacts que chez les animaux lésés. ..18
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