1.3. AnalysedelaréponseimmunitaireparRT‐qPCR
Lacapacitédecetextraitàstimulerl’expressionde
médiateursdel’immunitéaétéévaluée,parRT‐qPCR,en
utilisantunsystèmedecultureinvitrodecellulesépithéliales
intestinalesporcinesdifférenciéesIPEC‐1.Troisdoses(1,01et
0.01mg/ml)ontététestéesencomparaisonavecduLPSd’E
coli0111:B4commecontrôlepositifetdescellulesincubées
enmilieudecultureseulcommecontrôlenégatif.Cetextraita
étéaussitestévis‐à‐visdelalignéedecellulesrénales
embryonnaireshumainesHEK293exprimantTLR4/MD2/CD14,
TLR2,TLR5,TLR9,NOD1etNOD2afindedéterminerle
récepteurTLRouNLRimpliquéensuivant,parELISA,
l’expressiond’IL8commemarqueurdestimulation.Des
analysesstatistiquesontétéeffectuéesparletestKruskal‐
WallisetBonferroni‐Dunnpourunecomparaisondegroupes.
2. RESULTATS
L’analysedel’activitéantibactérienneparlesdeuxtechniques
amontrédessensibilitésdifférentesdesbactériesvis‐à‐visde
l’extraitdepolysaccharide.S.aureus(1,9<CMI<3,9mg/mL)
etL.monocytogenes(31,3<CMI<62,2mg/mL)appartenant
augroupedesbactériesGram+étaientplussensiblesàl'effet
despolysaccharidessulfatésquelesbactériesGram‐testées,à
savoirS.typhimurium(CMI=63mg/mL),E.coliK88(CMI=63
mg/mL)etE.coliO78(CMI=62,4mg/mL).
Tableau1–Activitéantibactériennedel’extraitde
polysaccharidessulfatésvis‐à‐visdecinqbactériespathogènes
BactériestestéesValeursdeCMI
enmg/ml
E.coliO78(Fècesdepoulet,CIRMBP‐096)
E.coliK88(ColibacillosePorcine,CIRMBP‐945)
S.Typhimurium(SepticémieBovineCIRMBP‐
940)
L.monocytogenes(Tissuedelapin,CIRMBP‐
711)
S.aureus(Mammitebovine,CIRMBP‐476)
62,4
63
63
31,3<MIC<62,6
1,9<MIC<3,9
L’analyseparRT‐qPCRamontréquel’extraitde
polysaccharidessulfatésinduit,àuneconcentrationde
1mg/ml,uneaugmentationdel’expressiondeplusieurs
cytokinesparlescellulesintestinalesIPEC‐1encomparaison
aveclescellulesnontraitées(Tableau2).LachimiokineCCL20
estlacytokinelaplusstimulée,sonexpressionétant
augmentéede38foiscomparativementaucontrôle.Cet
extraitinduitaussiuneaugmentationdel’expressiondeTNFα
(8,3fois),IL‐8(10,8fois)ainsiquedeIL‐1α(7,1fois)etIL‐6
(4fois).Parailleurs,ilinduitd’unefaçonsignificativemais
faible(1,7à2,4fois)l’expressiondescytokinesIL‐1β,IL‐12p40,
TGF‐βetlefacteurdetranscriptionPPARγ.
Enrevanche,cetextraitnesemblepasinduirel’expression
d’IL‐10,CCL25,CCL28TLR2etTLR4(Tableau2).LeLPSn’induit
pasdestimulationdel’expressiondecesmédiateursen
comparaisonavecl’extraitd’algue.Cetextraitaététestévis‐à‐
visdescellulesHEK293exprimantdifférentsrécepteurs
membranaires(TLR4/MD2/CD14,TLR2,TLR5,TLR9,NOD1et
NOD2).Lesrésultatsobtenusmontrentquelastimulationde
l’expressiondesfacteursimmunitairespasseraitpar
l’activationdurécepteurcellulaireTLR4.
Tableau2–Influencedel’extraitdepolysaccharidessulfatés
(1mg/ml)surl’expressiondescytokines
dansdescellulesintestinalesIPEC‐1(**:P<0,01)
CONCLUSION
L’ensembledesrésultatsamontréquel’extraitd’algueverte
richeenpolysaccharidessulfatésavaituneactivité
antibactériennecontredesagentspathogènesrencontrés
danslesélevages.Ilaaussilacapacitédestimuler,invitro,
l’expressiondescytokinesimpliquéesdansl’activation,le
recrutementetlamigrationdeslymphocytesainsiqueles
cellulesdendritiquespourmodulerlaréponseimmunitaire.
Cettestimulationpasseraitparl’activationdurécepteurTLR4.
Cetextraitpourraitdoncêtreutilisédansl'alimentationdes
animauxd’élevagepourinhiberlacroissancedecertaines
bactériesetstimulerlaréponseimmunitairepouraugmenter
larésistancedesanimauxauxinfectionsetréduirel'utilisation
desantibiotiques.Ilpourraitaussiêtreutilisécommeadjuvant
potentieldansdesapprochesdevaccinationmucosalepour
améliorerlaréponseimmunitairedel’organismehôte.
REFERENCESBIBLIOGRAPHIQUES
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September2003onadditivesforuseinanimalnutrition.
• O’SullivanL.,MurphyB.,McLoughlinP.,DugganP.,LawlorP.G.,HughesH.,GardinerG.E.,2010.PrebioticsfromMarineMacroalgaefor
HumanandAnimalHealthApplications.MarineDrugs,8,2038‐2064.
• ChojnackaK.,SaeidA.,WitkowskaZ.,TuhyL.,2012.BiologicallyActiveCompoundsinSeaweedExtracts‐theProspectsforthe
Application.TheOpenConferenceProceedingsJournal,3,(Suppl1‐M4),20‐28.
Gènesdesmédiateursde
l’immunitétestés
Degrédestimulation
d’expression/Contrôle
TNFα
IL‐1α
IL‐8
CCL20
IL‐6
IL‐1β
IL‐12p40
TGFβ
PPARγ
TLR2
IL‐12p35
IL‐10
CCL25
CCL28
TLR4
8,3**
7,1**
10,8**
38,4**
4**
2,1**
2,0**
1,7**
2,4**
2,4
1,8
1,1
2,2
1,5
1,6
2015. Journées Recherche Porcine, 47.