bleue), mais qui doit être excitée violemment à 360 nm-390 nm, ce qui est toxique pour
les cellules. Les variantes danoises sont F64L-GFP, F64L-Y66H-GFP et F64L-S65T-GFP
qui sont très actives et fonctionnent au dessus de 30°, la première étant la meilleure.###
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Compte-tenu du nombre d'essais à effectuer, les méthodes de balayage de séquences
pour détecter les polymorphismes se devraient d'être efficaces, rapides et bon marché. Les
polymorphismes sont les variations individuelles qui viennent se superposer sur ce que l'on
appelle "la" séquence génomique de l'homme ou d'Arabidopsis par exemple. On les
étudient car, même si elles n'ont pas un effet phénotypique évident, elles pourraient en
avoir un dans certaines circonstances (sensibilité à un médicament, etc…).
Les méthodes les plus courantes de balayage sont basées sur les misappariements,
entre la séquence de référence et celle à étudier. La seule méthode qui permet, à la fois,
une détection et une localisation de tout misappariement est la méthode de séquençage de
Sanger. Mais elle est longue et coûteuse. On ne peut donc examiner qu'une dizaine de
gènes dans une région donnée du génome.
Une nouvelle technique vient d'être révélée par des chercheurs de Kyoto qui repèrent
spécifiquement le défaut d'appariement G-G par un marqueur que l'on fixe sur une surface
et qui capture le fragment porteur de ce défaut. L'avantage de la technique est qu'on
n'utilise pas d'hybridation, donc pas de sonde spécifique. Par ailleurs le ligand peut être
réutilisé de nombreuses fois, ce qui abaisse le coût de l'essai. K Nakatani et al.; Nature
Biotechnology 19 (JAN01) 51-55.
Il y a cependant plusieurs limitations à cette technique, pour l'instant. La première est
que seules les non-appariements G-G sont détectés, et ce sont les moins fréquents. Ensuite,
la technique permet de savoir qu'il y a quelque part un mauvais appariement. Il faut
ensuite séquencer pour le localiser. Enfin plusieurs G-G ne peuvent être distingués d'un
unique mauvais appariement, et surtout tous les autres misappariements ne sont pas
identifiables. PY Kwok; Nature Biotechnology 19 (JAN01) 18-19. ###
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L'activateur de transcription Gal4 de Saccharomyces cerevisiae agit normalement sur
un site de la séquence UAS (upstream activating sequence), environ 250 pb en amont du
site de début de transcription. Chez la levure, il devient inefficace à plus de 600 à 700 pb
en amont ou n'importe tout en aval, contrairement à ce qui se passe pour ses équivalents
chez les mammifères.
On vient de montrer qu'une séquence activatrice (enhancer) éloignée de 1-2 kb
devient utilisable si le gène qu'elle commande est lié à un télomère. Ceci est dû au fait
que les télomères font des boucles. D de Bruin et al.; Nature 409 (04JAN01) 109-113. ###
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On vient de combiner une technique d'immunoprécipitation de la chromatine (déjà
utilisée pour identifier des interactions protéines-ADN) et des microréseaux pour analyser
globalement tous les sites du génome qui fixent des protéines ayant une affinité pour
l'ADN (et qui ont donc des chances d'être des régulateurs de la transcription). B Ren et al.;
Science 290 (22DEC00) 2306-2309. La méthode a d'abord été vérifiée avec l'activateur
de transcription Gal4 de Saccharomyces cerevisiæ. Les auteurs ont révélé 10 sites, dont
7 étaient déjà connus. Ils ont ensuite entrepris une opération plus ambitieuse avec Ste12.
Celui-ci est également un activateur de transcription, intervenant dans la réponse des
cellules haploïdes de S.cerevisiæ aux phéromones sexuelles. On a identifié plus de 200
gènes répondant ainsi, mais on ne sait si cela correspond à une stimulation directe ou
indirecte. Avec la nouvelle technique on constate que seulement 29 d'entre eux lient
Ste12p.
On vient, encore plus récemment, d'effectuer la même opération sur les facteurs de
transcription BF et MBF. VR Iyer et al.; Nature 409 (28JAN01) 533-538. ###
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L'ADN polymérase de l'archée hyperthermophile Thermococcus litoralis est capable
d'allonger un génome au-delà de sa taille normale, car elle est capable de polymériser des
palindromes monobrins oligodésoxyribonucléiques jusqu'à des tailles de 20 kb, sans avoir