Compl\xE9mentsCHICK - Serveur de listes de Creteil
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Historique Le vecteur Aedes albopictus est un moustique originaire d’Asie du Sud-est, il aurait été introduit à Madagascar lors des grandes migrations austronésiennes en provenance d’Indonésie au Vième siècle de notre ère. (les œufs sont très résistants à la dessiccation) Le virus Arthropode Born virus (arbovirus) du groupe des alphavirus de la famille des Togaviridés. On distingue deux souches, l’une africaine et l’autre asiatique. Virus à ARN de polarité positive ( la traduction se fait directement dans le cytoplasme de la cellule hôte) Lutte Mécanique : Dans l’ile de la Réunion, la négligence des populations et la densification de l’habitat a permis la constitution d’une population d’Aedes homogène sur le pourtour de l’ile. La suppression des gites larvaires autour des maisons est un préalable à une lutte efficace contre le chikungunya et permettrait une fragmentation des populations de moustiques. De nombreuses arboviroses causées par des alphavirus sont présentes en Afrique : Virus Mayaro Virus O'Nyong-Nyong Virus Sindbis Fièvre jaune Fièvre de la vallée du rift … Lutte Chimique : Elle est réalisée avec des organophosphorés : Le Fenitrothion, mortel pour les moustiques adultes et le Téméphos, mortel pour les larves, sont utilisés par l'armée chez les particuliers, les agents de l'État dans les espaces et bâtiments publics - les établissements scolaires. Mode d’action : Les organophosphorés inhibent l'acétylcholinestérase. L’AChE est impliquée dans les mécanismes de transmission de l'influx nerveux à travers l'organisme : dans les jonctions inter neuronales et neuromusculaires, la terminaison nerveuse libère un médiateur chimique, l'acétylcholine (ACh), qui permet la transmission du message nerveux d'une cellule à l'autre. Une fois l'information transmise, l'acétylcholine est rapidement inactivée par l'AChE, ce qui permet au système de revenir à son état de repos. L'inhibition de l'enzyme par de nombreux neurotoxiques entraîne une accumulation du médiateur chimique dans l'espace synaptique, qui maintient de ce fait une transmission permanente de l'influx nerveux, laquelle conduit généralement à la tétanie musculaire et à la mort. Le développement des organophosphorés en tant qu'insecticides date du début des années 1970, favorisé par l'interdiction d'utilisation des composés organochlorés comme le DDT (dichloro-diphényl-trichloroéthane, hautement rémanent, dont le comportement lipophile en fait une substance extrêmement bioaccumulable). Les organophosphorés s'imposent rapidement par une très grande efficacité, notamment contre les insectes, et leur comportement dans l'environnement est considéré comme relativement inoffensif quand on les oppose aux organochlorés. Ceci dit, ces molécules ne doivent en aucun cas être considérées comme étant écotoxicologiquement négligeables. Résistance des moustiques aux insecticides : une même mutation commune à différentes espèces La majorité des insecticides utilisés dans la lutte anti-vectorielle pour ralentir la transmission des maladies à l’homme sont des organophosphorés et des carbamates qui inhibent une enzyme, l’acétylcholinestérase (AChE). Or, depuis un certain nombre d’années, des résistances à ces pesticides dues à une modification de l'AChE apparaissent chez les moustiques. Récemment, le gène d’acétylcholinestérase impliqué dans ces résistances a été identifié et nommé ace-1. Les chercheurs ont analysé sur ce gène la nature des mutations responsables de la résistance chez Culex pipiens originaire de 10 pays d'Amérique, d'Europe et d'Afrique, et chez Anopheles gambiae de Côte d'Ivoire. Les résultats ont indiqué qu’une même mutation était présente dans le gène ace-1 des différentes espèces de moustique. Cette mutation ponctuelle (correspondant au remplacement d’une base par une autre dans la chaîne ADN), conduit à la production d’une protéine dans laquelle un acide aminé est remplacé par un autre (substitution de l’acide aminé glycine par une sérine : mutation G119S). Des tests in vitro, réalisés sur des cellules en culture, ont confirmé que cette mutation était bien responsable de la résistance aux pesticides employés (insensibilité au carbamate propoxur). L'analyse approfondie du gène ace-1 a permis de voir que la mutation G119S s'était produite au moins à deux reprises différentes dans l'espèce Culex pipiens. De plus, cette mutation ayant été retrouvée parmi la majorité des populations de moustiques couvrant le globe, il semble probable que les chercheurs tiennent là une clé essentielle de l’origine des résistances des moustiques aux pesticides (voire d’autres résistances de la part d’insectes différents comme les pucerons). Est-ce que la pulvérisation des organophosphorés a un effet sur l'environnement? Les organophosphorés se dégradent rapidement dans l'environnement, particulièrement dans le sol humide, et leur toxicité vis-à-vis des oiseaux et des mammifères est faible. Par contre ils sont très toxiques pour les insectes, y compris les insectes utiles, comme les abeilles. Lutte biologique : Elle est réalisée avec le Bacillus Thuringiensis Isralensis (B.T. I .) ou VECBAC. Mode d’action : Durant l'étape de sporulation de son cycle de vie, le Bti produit une protéine cristallisée, qui est toxique uniquement pour les larves de moustiques et de mouches noires. Ces cristaux microscopiques sont ingérés par les larves des insectes lorsque celles-ci se nourrissent. Dans le milieu alcalin de l'appareil digestif de ces insectes sensibles, les cristaux se dissolvent et se transforment en molécules protéiques toxiques qui détruisent les parois de l'estomac. Les insectes cessent habituellement de se nourrir dans les heures qui suivent leur exposition au Bti et meurent en quelques jours. Quel effet le Bti a-t-il sur l'environnement? Le Bti ne devient toxique qu'une fois rendu dans l'estomac des larves de moustiques ou de simulies. Le Bti n'a donc aucun effet sur les autres insectes comme l'abeille domestique, ni sur les poissons, les oiseaux ou les mammifères. L’agence deprotection de l'Environnemental des ÉtatsUnis estime que les risques présentés par les souches de Bti pour les organismes non visés sont négligeables à nuls. La toxine insecticide est en outre rapidement biodégradée dans l'environnement par les rayons solaires et les microorganismes. Comment peut-on lutter efficacement contre le CHICK et limiter ses effets sociaux et économiques tout en préservant l’environnement ? Diversité des moustiques du genre Aedes Aedes abnormalis Aedes aboriginis Aedes cantator Aedes capensis Aedes fulvus Aedes fulvus pallens Aedes luteolateralis Aedes luteostriatus Aedes phyllolabis Aedes pionips Aedes taeniorhynchoides Aedes taeniorhynchus Aedes adami Aedes carteri Aedes fumidus Aedes adersi Aedes aegypti Aedes aegypti formosus Aedes aerarius Aedes cartroni Aedes caspius Aedes cataphylla Aedes chamboni Aedes cinctus holocinctus Aedes cinereus Aedes circumluteolus Aedes africanus Aedes aitkeni Aedes albineus Aedes albocephalus Aedes albodorsalis Aedes albolineatus Aedes albopictus Aedes alboscutellatus Aedes albothorax Aedes alboventralis Aedes alternans Aedes angustus Aedes annandalei Aedes annulata Aedes annulipes Aedes apicoargenteus Aedes arborealis Aedes argenteopunctatus Aedes argenteoventralis Aedes argyrothorax Aedes pipersalatus Aedes taeniorostris Aedes furcifer Aedes fuscinervis Aedes gardnerii Aedes geniculatus Aedes macfarlanei Aedes madagascarensis Aedes mariae Aedes marshallii Aedes mascarensis Aedes pogonurus Aedes polynesiensis Aedes poweri Aedes prominens Aedes tarsalis Aedes tauffliebi Aedes taylori Aedes teesdalei Aedes gibbinsi Aedes grahamii Aedes grassei Aedes masoalensis Aedes mathioti Aedes mattinglyi Aedes telleri Aedes thelcter Aedes thibaulti Aedes communis Aedes congolensis Aedes contiguus Aedes cozi Aedes crassiforceps Aedes cretatus Aedes culicinus Aedes cummensii Aedes cumminsii Aedes dalzieli Aedes demeilloni Aedes dendrophilus Aedes dentatus Aedes detritus Aedes grenieri Aedes grjebinei Aedes grossbecki Aedes hamoni Aedes harrisoni Aedes hastatus Aedes haworthi Aedes hebrideus Aedes heischi Aedes hexodontus Aedes hirsutus Aedes holocinctus Aedes hopkinsi Aedes hortator Aedes mediolineatus Aedes mediopunctatus Aedes mefouensis Aedes melanimon Aedes metallicus Aedes michaelikati Aedes microstictus Aedes minutus Aedes mitchellae Aedes mixtus Aedes monetus Aedes monotrichus Aedes moucheti Aedes mucidus Aedes pseudoafricanus Aedes pseudotaeniatus Aedes pseudotarsalis Aedes pseudotarsalis trifilatus Aedes pubescens Aedes pulchrithorax Aedes pulcritarsis Aedes pullatus Aedes punctocostalis Aedes punctodes Aedes punctor Aedes punctothoracis Aedes quasirusticus Aedes quasiunivittatus Aedes reali Aedes refiki Aedes rickenbachi Aedes devisi Aedes impiger Aedes mutilus Aedes riparius Aedes vittatus Aedes dialloi Aedes diantaeus Aedes implicatus Aedes imprimens Aedes natalensis Aedes natronius Aedes rossicus Aedes rusticus Aedes vittiger Aedes wigglesworthi Aedes tiptoni Aedes togoi Aedes tricholabis Aedes tricholabis bwamba Aedes trichurus Aedes triseriatus Aedes trivittatus Aedes tulearensis Aedes uncus Aedes unilineatus Aedes varipalpus Aedes veeniae Aedes vexans Aedes vigilax Aedes atlanticus Aedes atropalpus Aedes aurifer Aedes axicola Aedes bancoi Aedes barnardi Aedes bequaerti Aedes bergerardi Aedes berlandi Aedes bicristatus Aedes biskraensis Aedes bolensis Aedes boneti Aedes breedensis Aedes brunhesi Aedes brygooi Aedes caballus Aedes caecus Aedes calceatus Aedes caliginosus Aedes campestris Aedes canadensis Aedes cantans Aedes domesticus Aedes dorsalis Aedes dufouri Aedes durbanensis Aedes durhamii Aedes ebogoensis Aedes echinus Aedes edgari Aedes ellinorae Aedes embuensis Aedes eritreae Aedes eritreae karooensis Aedes excrucians Aedes falabreguesi Aedes filicis Aedes fitchii Aedes flavescens Aedes flavimargo Aedes fowleri Aedes fraseri Aedes fryeri Aedes fulgens Aedes fulvithorax Aedes increpitus Aedes ingrami Aedes insolens Aedes interruptus Aedes irritans Aedes jamoti Aedes juppi Aedes kapretwae Aedes kennethi Aedes kummi Aedes lamborni Aedes neoafricanus Aedes nigerrimus Aedes nigricephalus Aedes nigripes Aedes nigromaculis Aedes niphadopsis Aedes niveoides Aedes notoscriptus Aedes nyasae Aedes nyounae Aedes ochraceus Aedes saxicola Aedes scapularis Aedes scatophagoides Aedes scutellaris Aedes semlikiensis Aedes septemstriatus Aedes serratus Aedes sierrensis Aedes simpsoni Aedes simulans Aedes soleatus Aedes langata Aedes laniger Aedes leesoni Aedes leptolabis Aedes leucocelaenus Aedes leucomelas Aedes lineatopennis Aedes lineatus Aedes longipalpis Aedes longiseta Aedes lottei Aedes luteocephalus Aedes odantus Aedes oligopistus Aedes opok Aedes orbitae Aedes ovazzai Aedes pachyurus Aedes palpalis Aedes pataigain Aedes pauliani Aedes pembaensis Aedes pernotatus Aedes phillipi Aedes sollicitans Aedes spencerii Aedes squamiger Aedes stanleyi Aedes sticticus Aedes stimulans Aedes stokesi Aedes strelitziae Aedes subargenteus Aedes sudanensis Aedes sylvaticus Aedes taeniarostris Aedes woodi Aedes yangambiensis Aedes yvonneae Aedes zoosophus
