Peudenier Stéphanie Froeliger Alizée 19/03/12 Cancérologie Pr

Peudenier Stéphanie
Froeliger Alizée
19/03/12
Cancérologie
Pr Karine Tarte
BASES BIOLOGIQUES DE
L’IMMUNOTHERAPIE DES CANCERS
Introduction :
On étudie ici le rapport immunologie-cancérologie. Comment développer une
immunothérapie pour booster la réponse immune (RI) anti-tumorale ?
Expérience chez la souris :
Des études montrent que si on prend une souris, qu’on lui implante une tumeur et que, par la suite,
on lui injecte des Lymphocytes T (LT) spécifique de cette tumeur, alors ces derniers sont capables
de se multiplier dans les ganglions drainants, proches de la tumeur, d’aller sur le site de celle-ci afin
de la détruire.
Expérience chez l’homme :
D’autres travaux sur l’Homme, notamment dans le cadre du cancer colorectal prouvent que dans le
cadre de l’immunité anti-tumorale, les marqueurs de bon pronostic (moins de rechutes et de
métastases) sont :
-la présence de nombreux LT CD8 cytotoxiques (via l’action du granzyme)
-une forte réponse Th1 (qui booste l’immunité cellulaire contrairement à Th2)
Donc si on a une réponse T cytotoxique efficace dans la tumeur, elle favorise l’éradication de la
tumeur.
On a bien la preuve que in vivo chez l’homme, la réponse immunologique a un rôle important à
jouer en oncologie. On veut donc amplifier cette réponse immunologique.
I. L’immunothérapie :
Il en existe 3 types :
 l’immunothérapie passive
 l’immunothérapie adoptive
 l’immunothérapie active
A. L’immunothérapie passive (anticorps) :
Utilisation d’anticorps dirigés contre des antigènes exprimés à la surface de l’ensemble des
cellules tumorales. Elle est majoritaire (médicaments utilisés aujourd’hui en dérivent).

Dans l’idéal, les AC doivent être :
 stables : il ne doit pas y avoir de variation de l’expression au cours de la maladie.
 homogènes : toutes les cellules tumorales doivent exprimer l’antigène
 les plus spécifiques possible : pour qu’il n’y ait pas de destruction des cellules non
cancéreuses.
On utilise souvent des IgG1 car ce sont des AC capables d’induire efficacement une réponse anti-
tumorale grâce à leur récepteur CD 16, 32, 64 qui médient la phagocytose et active l’ADCC
(cytotoxicité à médiation cellulaire dépendante des anticorps)
 Pendant longtemps, on a travaillé avec des anticorps murins (de souris). Problème :
l’homme s’immunise contre cet anticorps reconnu comme étranger, et lors de la deuxième
injection, l’anticorps est totalement éliminé.
 Révolution de l’utilisation des anticorps : les anticorps chimères (60-70%humain) : seule la
partie variable est murine, la partie constante est d’origine humaine. Donc moins
d’immunisation et une meilleure interaction avec les effecteurs de l’immunité (récepteurs Fc
des macrophages par exemple). La partie constante est d’origine humaine, elle est donc
moins immunogène.
 Les anticorps humanisés (90-95% humain) : seules les régions hypervariables (CDR) sont
d’origine murine, tout le reste est d’origine humaine. A peu près équivalent aux anticorps
chimères.
B. L’immunothérapie adoptive (effecteurs) :
On utilise des cellules qui ciblent directement la tumeur. Les effecteurs sont cellulaires, et sont
injectés au patient :
 LT conventionnels (a, b, cytotoxiques…)
 LT non conventionnels (NK)
Leur but est de détruire directement la tumeur.
C. L’immunothérapie active :
Même principe que les vaccins. On veut faire émerger une RI in vivo. On injecte alors des
AC sous forme immunogène, soit avec des adjuvants, soit directement sur des cellules dendritiques.
Néanmoins cette méthode est trop couteuse
II. L’immunothérapie passive : Les anticorps anti-
tumeur :
Ils sont utilisés dans beaucoup de cancers et marchent bien. Cependant, ils font partie des dix
médicaments les plus chers sur le marché.
Exemple : Anti-CD20 et Lymphomes :
Les lymphomes touchent les LB exprimant CD20, les patients développent des anticorps antiCD20.

CD20 :
 expression stable
 sur tous les LB, normaux ou tumoraux
 absent des plasmocytes (heureusement car sinon on tuerait toutes les cellules productrices
d’anticorps) et des cellules souches hématopoïétiques (CD34) : donc, on garde la mémoire
immunologique des plasmocytes long survivants de la moelle, et de plus il y a préservation
de l’hématopoïèse, ainsi qu’une immunité de base par les plasmocytes.
Anticorps anti-CD20 :
 Rituximab (MabThera®), le plus fréquent, a été utilisé au moins une fois chez tous les
patients ayant un lymphome.
 Zevalin (couplé avec un radioélément : Yttrium 90) .
Mécanisme d’action :
 lyse par les cellules NK : les NK fixent le Rituximab par CD16 et lysent la cellule tumorale.
Néanmoins, chez quelques patients, l’efficacité est faible : en effet 20% des personnes ont
un polymorphisme pour CD16, et CD16 peut être moins affin pour les IgG, donc la réponse au
traitement est moins bonne.
 c’est une IgG donc elle active aussi le complément : lyse par le complément.
 cytotoxicité directe faible (elle active directement la mort de la cellule).
 possibilité de synergie avec la chimiothérapie.
L’efficacité est liée à la densité de CD20 : plus il y a de CD20 et meilleure est l’efficacité du
traitement. .
Ce traitement est beaucoup utilisé dans les lymphomes.
III. L’immunothérapie adoptive :
A. Les TIL : Lymphocytes Infiltrant la Tumeur :
 Histoire ancienne :
En 1985, premiers essais d’injection d’IL-2 chez des patients atteints de cancer : mais la molécule
est toxique et mal tolérée, pas de guérison.
En 1988, premiers essais TIL (mélanomes et cancers du rein).
Problème : peu efficace.
 Actualité : regain d’intérêt
On sait que le traitement marche dans certains cas :
 Faible masse tumorale (exemple : après chirurgie) .
 Capacité d’expansion in vivo : quand on injecte des LT, il faut qu’ils puissent
se multiplier donc on fait une lymphodéplétion au préalable avec une drogue
de chimiothérapie afin de détruire les LT du patient pour que ces LT (TIL)
aient la place de se multiplier in vivo en utilisant les cytokines et les facteurs
de croissance du patient.
 Coinjection TCD4 et TCD8, car si on injecte seulement des T cytotoxiques,

on n’a pas de mémoire immunologique, donc il faut aussi des TCD4.
 Ces protocoles peuvent marcher car il y a des épitopes spreading : en effet,
les LT détruisent la tumeur qui libère alors des antigènes, ceux-ci génèrent
alors une seconde réponse immunitaire et ainsi de suite… C’est une
dissémination antigénique, et la réponse immunitaire est dirigée contre
d’autres antigènes que ceux que l’on a injecté au départ.
 plusieurs protocoles en cours (Nantes, USA)
B. Les T redirigés
On cible des LT qui vont détruire la tumeur. Notamment utilisés chez les enfants atteints de
Leucémies aïgues.
 On prélève les cellules du donneur → amplification in vitro avec de l’IL-2 et des LB
infectés par l’EBV (Ebstein-Barr Virus) → transfert dans les LT des molécules
ciblant les Ag tumoraux (ici des anti-CD 19) → injection post-greffe des LT ciblant
les blastes LAL CD19+.
 De plus, on a une persistance de l’effet anti-tumoral des LT redirigés via la
stimulation par l’EBV. C’est à-dire que chez le patient, les LT porteurs d’un anti-
EBV peuvent se multiplier grâce à la présence de LB résiduels porteurs de l’EBV qui
sont immortels. Leur contact va induire la stimulation des LT.
C. Les Tγδ :
Cellules présentes en très faible proportion dans le sang (0,5%). Elles sont peu variables et
reconnaissent les phosphoantigènes.

Il existe deux grands types de stratégies :
 Soit on prend les cellules sanguines du malade avec T.d. On les cultive in vitro avec
BrHPP qui est un analogue de l’IPP et des IL2. Les T.d s’amplifient et on les réinjecte chez
le patient.
 La deuxième technique est encore plus simple. On injecte directement au malade BrHPP et
Il2 donc l’amplification se fait in vivo.
Cette technique présente beaucoup d’intérêt car les tumeurs sont très sensibles à l’activité des LTɣδ.
De plus les LTɣδ expriment le CD19, il y a donc possibilité de synergie avec les AC monoclonaux.
Ces deux stratégies sont utilisées dans des cancers hématologiques. L’objectif est la destruction des
cellules tumorales.
D. Les NK allogéniques, application à la LAM (leucémie aigue
myéloïde) :
Ces cellules sont très difficiles à expandre in vitro ce qui diminue leur possibilité d’utilisation.
Néanmoins, elles restent les cellules majeures responsables de l’ADCC.
innovation- transfert CD16 dans LT anti-EBV
-ADCC efficace+ réactivation possible par l’EBV
Dans le cadre des LAM, on prélève des LT, LB et NK du donneur → déplétion en CD3 (si on
n’enlève pas préalablement les LT et qu’on ajoute de l’IL-2 ce sont les LT qui vont se multiplier et
non les NK) puis ajout d’il-2 → amplification des NK → réinjection de cellules NK au patient +
chimiothérapie. Mais on note un effet secondaire majeur, 1/20 des patients a fait un syndrome
lymphoprolifératif EBV à partir des LB contaminants et est décédé. Il a fallu modifier le protocole.
Pour que les cellules NK fonctionnent, elles doivent s’amplifier chez le patient, d’où une
immunodéplétion préalable. De plus, il ne faut pas que les NK réinjectées possèdent des récepteurs
KIR au HLA classe 1de la tumeur car cela induit une inhibition dans la cellule NK.
Nécessité d’un KIR mismatch.
On purifie donc les cellules NK→ amplification par IL-2→ réinjection au patient + chimiothérapie.
Les NK sont difficiles à faire proliférer, il ne suffit pas de mettre de l'IL2 pour les faire proliférer.
On enlève les TCD3, on met de l'IL2, cela donne une prolifération des NK que l'on va injecter au
patient.
La deuxième possibilité est que l'on enlève les TCD3, on purifie les NK puis on les fait proliférer,
cette méthode est en cours d'étude donc on ne connait pas les résultats encore.
E. Immunothérapie adoptive+Ac, l'ADCC redirigée:
Leur multiplication in vitro est difficile.
Intérêt théorique : associer les NK avec un anticorps anti-tumeur pour avoir une ADCC. Il faut donc
une cellule capable d’ADCC.
On prélève des LT anti-EBV → amplification et rajout de CD16 et Rc au fragment constant des IgG
→ réinjection et obtention d’une lyse tumorale.
Ainsi les AC détruisent la tumeur via les interactions avec les effecteurs