1. Ponction veineuse
1. Ponction veineuse simple
1.1 Définition :
Prélèvement d’un échantillon de sang par ponction d’une veine périphérique.
La ponction veineuse est soumise à une prescription médicale mais le prélèvement
relève de l’entière responsabilité de l’infirmière.
1.2 Buts :
a. Poser une diagnostique.
b. Contrôler l’efficacité d’une thérapie.
c. Évaluer, contrôler l’efficacité d’un organe.
d. Faire des dosages en vue d’une thérapie.
e. Recherche de données spécifique (ABO).
1.3 Qualités de la veine choisie pour la ponction veineuse :
a. Superficielle.
b. Accessible.
c. Palpable.
d. Débit adapté au type de prélèvement.
e. Intacte.
f. Adaptée au nombre de ponction prévue.
g. Sans contre indication.
h. Qui n’est pas situé après une perfusion.
1.4 Choix des veines :
a. Veine radiale.
b. Veine basilique.
c. Veine céphalique.
d. Veine de l’arcade de la main.
1.5 Étude du matériel
Matériels
Caractéristiques
Garrot
Faire obstacle à la circulation veineuse dans empêcher le
passage du sang artériel.
La stase crée une augmentation veineuse facilitée à la
palpation.
Qualité : manipulation rapide et facile, entretien aisé,
souple et élastique, large et plat, peu d+, peu coûteux.
Type : brassard tensiomètre, ceinture élastique avec clip,
éviter caoutchouc.
Antiseptique
Isobétadine, Hibitane alcoolique, alcool dénaturé.
Matériel de ponction
Aiguille Vacutainer, aiguille IV, micro perfuseur à ailette ou
cathéter
Tube à prélèvements,
En fonction du laboratoire
pochette de
transfert,
demande d’examen
Étiquetage correct et lisible des tubes : NOM, prénom, Date
de naissance, date, parfois heure ou n° d’ordre
Tampons
Pansement sec
Gants non stériles
Bassin réniforme
Container à aiguilles
Protection
Stérilium
1.6 Système de prélèvement Vacutainer :
Assure le prélèvement sous vide d’échantillon de sang destiné à l’analyse.
a. Il se compose de :
Matériels
Caractéristiques
Tube
Tube à vide d’air, qui peu admettre un volume déterminé.
Disponible sans différente taille avec ou non un additif.
Système de couleur établit au niveau des bouchons.
L’intérieur des tubes est stérile.
Date de péremption est inscrite.
Corps Vacutainer
En plastique et muni d’un pas de vis, réutilisable, de différent
calibre.
Aiguille
Aiguille de ponction soudée au perforateur par l’intermédiaire
d’un pas de vis.
Si aiguille perforatrice n’est pas munie d’un manchon en latex,
elle ne peut être utilisée que pour un seul prélèvement.
Adaptateur
Embout de Luer est soudé à un perforateur par un pas de vis.
Permet la connexion à une aiguille, un cathéter ou
microperfuseur.
b. Avantage d’un système Vacutainer :
Diminue les risques de contamination (technique fermée, directe et propre).
Permet de conserver l’intégrité biologique de l’échantillon.
Limite l’effort du garrot.
Économie temps et matériel.
1.7 Prélèvement à la seringue :
a. Seringue de petit calibre (+ facile et réduit le risque hémolyse).
b. Embouts excentrés (diminue les manipulations au niveau de la veine
diminue
les risques traumatique ou de perforation de la paroi veineuse).
1.8 Procédure de soins : I et II
1.9 Conseils :
a. Endroit de la ponction :
Éviter hémiplégies ou endroit atteints de lésions cutanées ou infectées.
Interdiction total dans un bras porteur d’une fistule arterio-veineuse, dans
un bras du côté d’une mammectomie ou évidement ganglionnaire ou
site suspect ou atteinte thrombophlébite.
b. Pose du garrot :
Toujours sur un muscle.
Détacher le plus vite possible.
Jamais sur une articulation.
c. Economie de sang : Limiter la quantité.
d. Ecoulement du sang :
Perforation de la veine.
Accolement du biseau de l’aiguille contre une paroi veineuse.
Sortie de la lumière de la veine par retrait.
e. Hémolyse du prélèvement :
Tube agité trop fort.
Garrot laissé trop longtemps.
Durée trop longue entre la ponction et l’analyse.
f. Jeûne :
Ni boire, ni manger, ni fumeur pd 12H avant le prélèvement.
Surtout pour des analyses tel que le glucose, triglycérides, cholestérol,
testes inflammatoires, leucocytes, certain électrolytes.
1.10 Analyse selon 7 principes (Cf. cours)
2. Ponctions particulières :
2.1. Généralité :
a. Collecte données :
Signalétique patient.
Anamnèse médicale et infirmière.
Traitement à domicile (Anticoagulant insuline AB).
Motif d’hospitalisation.
Traitement à l’hôpital.
Connaissance et/ou souvenirs à propos du soin.
Appréhension ?
Réactions du malade.
b. Craintes :
Liée au résultat (principalement).
Douleur du soin.
2.2. Hémoculture :
a. Définition :
Mise en culture du sang pour une recherche bactérienne et antibiogramme
éventuel.
b. DSI : Cf. généralité + prise de sang.
c. Collecte des données spécifique :
Traitement AB (Nom, dosage, quantité, depuis quand, voie
d’administration, date, heure de la dernière prise).
Degré de collaboration du patient.
Observation des portes entrées et facteurs de risque.
Indices d’hyperthermie.
d. Indications :
Après manipulation de tissus infectés.
Au début d’une infection systémique (méningite, pneumonies, arthrite.)
Bactériémies intermittente : Foyer infectieux ou abcès non drainé.
Bactériémies continues : des endocardites au infectons sur cathéters intra
vasculaire.
e. Procédures : III
f. Prise en charge du malade en hyperthermie :
Définition : Elévation de la température corporelle au-dessus des limites de
la normale.
Caractéristiques : Augmentation de la t°, peau rouge, congestionnée, peau
chaude au touché, augmentation de la vitesse respiratoire, tachycardie et
convulsions.
Facteurs favorisant : exposition au milieu chaud, effort violent, prise de
médicaments, vêtement inadéquats, augmentation du métabolisme,
maladie au traumatisme, déshydratation, incapacité totale ou partielle de
transpirer.
Phases de l’hyperthermie
Actions infirmière
2.3. Tests de coagulation
a. Conditions de prélèvement :
Garrot modérément serré et maintenu peu de temps.
Ponction veineuse franche.
Remplir les tube d’hémostase en 2ème position afin d’éviter toute souillure
par le facteur tissulaire libéré par la lésion provoquée par l’aiguille.
Remplir correctement les tubes pour avoir un rapport anticoagulant ad hoc.
Assurer un mélange homogène par retournement immédiats et lents du
tube.
b. Temps de céphaline activée :
Mesure du temps de coagulation d’un plasma auquel on ajoute un
activateur. Il analyse la totalité de la voie intrinsèque et la voie commune
de la coagulation.
Indiction : surveillance des patients traités par héparine ou par fibrinolyse,
en cas d’exploration des maladies hémorragiques, lors du bilan
préopératoire, pour évaluer le degré de sévérité d’une affection hépatique
ou d’une CIVD.
Abréviation : TCA, ACT, Temps de coagulation, TTPA, APTT et TCK (Temps
de céphaline Koalin)
utilisé à Verviers.
TCK peut se réalisé au chevet du patient grâce à un hémochron (rare) ou au
laboratoire grâce à un prélèvement dans un tube de coagulation avec
citrate (anticoagulant).
Valeur de référence : 30 à 45 secondes selon les réactifs.
Valeur thérapeutique : en cas d’anticoagulothérapie 1,5 à 2 fois le temps
témoin.
Collecte des données spécifique : Anticoagulant (nom, dosage, quantité,
durée), anamnèse (hémorragie à bas bruit). Thérapie prévue ? ou subie ?
c. Temps de Quick (temps de Prothrombine):
Analyse les facteurs VII, X, II et le fibrinogène de la voie extrinsèque et de la
voie commune de la coagulation.
TP peut s’exprimer en % (valeur correspond à une traduction en % du temps
de coagulation. Plus le TP est long plus le % est bas) et en seconde (valeur
correspond au temps de coagulation du plasma après adjonction de
thromboplastine tissulaire).
TP est utilisé en cas d’exploration des maladies hémorragiques, dans le
bilan préop, dans la surveillance sous anti vitamine k ou évaluer le degré
de sévérité d’une affection hépatique ou d’une CIVD.
Valeur : <13 secondes ou >70%. (sous Antivita K : 20 à 30%).
IRN : Temps du malade/temps témoin (le résultat attendu dépendra de
l’indication de l’anticoagulothérapie). Toujours transmettre le résultat
d’IRN avec le TP au médecin.
2.4. Saignée :
a. Définition :
Évacuation de sang provoqué à des gins thérapeutiques. Quantité varie de
150ml à 500ml.
b. Indications :
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