GESTION DES NÉMATODES EN PRODUCTIONS VÉGÉTALES DOCUMENT PROFESSIONNEL À USAGE D'EXPERTS TECHNIQUES SOMMAIRE DUPONT – INNOVER POUR NOURRIR LA PLANÈTE .......................................................4 INTRODUCTION............................................................................................................5 PRÉFACE............................................................................................................................................5 GUIDE DE LECTURE ............................................................................................................................5 SYMPTÔMES CAUSÉS PAR LES NÉMATODES ...............................................................6 LES NÉMATODES SONT PRÉSENTS PARTOUT.....................................................................................6 DESCRIPTION DES NÉMATODES À KYSTE...........................................................................................6 Reconnaître Globodera spp. (nématode à kyste de la pomme de terre, PCN)....................................8 Reconnaître Heterodera schachtii (nématode à kyste blanc de la betterave) ou Heterodera betae (nématode à kyste jaune de la betterave).........................................................8 DESCRIPTION DES NÉMATODES À GALLES ........................................................................................9 Reconnaître Meloidogyne chitwoodi et M. fallax, nématodes à galles du maïs ...............................10 Reconnaître Meloidogyne hapla (nématode du Nord à galle)..........................................................12 DESCRIPTION DES NÉMATODES DES LÉSIONS DES RACINES ...........................................................13 Reconnaître Pratylenchus penetrans (nématode des lésions des racines).......................................13 DESCRIPTION DES NÉMATODES LIBRES...........................................................................................14 Reconnaître Paratrichodorus pachydermus, Paratrichodorus teres (nématodes libres des racines)........................................................................................................15 DESCRIPTION DES NÉMATODES DES TIGES......................................................................................16 Reconnaître Ditylenchus dipsaci ......................................................................................................16 Reconnaître Ditylenchus destructor (maladie vermiculaire de la pomme de terre) .........................18 DESCRIPTION DES NÉMATODES DES FEUILLES ................................................................................18 BOÎTE À OUTILS DE CONTRÔLE DES NÉMATODES ET PLANIFICATION DE LA ROTATION............................................................................19 TRAVAILLER AVEC LA BOÎTE À OUTILS DE CONTRÔLE DES NÉMATODES ...........................................19 LA STRATÉGIE DE GESTION DES NÉMATODES (NEMATODES MANAGEMENT STRATEGY - NMS).........19 LES OUTILS DE CONTRÔLE DES NÉMATODES...................................................................................20 1. La prévention...............................................................................................................................20 2. L’échantillonnage ........................................................................................................................20 3. L’historique de rotation des cultures ...........................................................................................20 4. Améliorer votre plan de culture....................................................................................................20 5. La sélection variétale ...................................................................................................................21 6. Les engrais verts ..........................................................................................................................21 7. Les mesures complémentaires ....................................................................................................21 Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 1 L’ENQUÊTE : VÉRIFICATION DU PLAN DE ROTATION DES CULTURES .................................................22 Étape 1 : Quels nématodes causent les dégâts ?.............................................................................22 Étape 2 : À quelle fréquence les cultures ont été mises en place ?..................................................22 Étape 3 : Quelle était la séquence des cultures sur la parcelle posant problème ?..........................23 Étape 4 : Analyse du problème – Est-ce que la rotation est dans le bon ordre ?..............................23 Étape 5 : Amélioration du programme de rotation...........................................................................25 CONSEIL DE GESTION INTÉGRÉE DES NÉMATODES ....................................................26 LES ACTIVITÉS DE GESTION INTÉGRÉE DES NÉMATODES .................................................................26 Nématodes à kyste de la pomme de terre .......................................................................................26 Nématodes à kyste de la betterave..................................................................................................26 Meloidogyne chitwoodi....................................................................................................................27 Meloidogyne hapla (nématode à galles du Nord)............................................................................28 Meloidogyne naasi (nématode à galles des céréales) .....................................................................28 Pratylenchus penetrans ...................................................................................................................28 Les nématodes libres.......................................................................................................................28 Nématodes des tiges (Ditylenchus dispaci) .....................................................................................29 PROPHYLAXIE & PRÉVENTION : TENIR LES NÉMATODES À DISTANCE .........................30 SEMENCES UTILISÉES .....................................................................................................................30 PROPHYLAXIE DE L’EXPLOITATION...................................................................................................30 MAÎTRISE DES MAUVAISES HERBES ................................................................................................30 SURVEILLANCE DES CULTURES ET DIAGNOSTICS .............................................................................31 ÉCHANTILLONNAGE .........................................................................................................................37 TYPE DE SOL....................................................................................................................................45 RAISONNER ENTRE GÉRER ET CONTRÔLER LES NÉMATODES .....................................46 SÉLECTION DES VARIÉTÉS ...............................................................................................................46 ENGRAIS VERTS...............................................................................................................................46 ACTIONS SUPPLÉMENTAIRES ..........................................................................................................48 Lutte chimique.................................................................................................................................48 Désinfection biologique du sol .......................................................................................................48 2 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale INDICATEURS DE DÉGATS DE NÉMATODES .................................................................52 INTRODUCTION À LA NOTION DE SEUIL DE DÉGATS.........................................................................52 FACTEURS INFLUENÇANT LA NUISIBILITÉ.........................................................................................52 ÉCHANTILLONNAGES ET INFESTATIONS DE NÉMATODES..................................................................52 AUGMENTATION DE L’INFESTATION PAR LES NÉMATODES DURANT L’HIVER ....................................53 COMBIEN DE NÉMATODES CONTIENT COMMUNÉMENT UN ÉCHANTILLON ? ....................................54 POPULATIONS ET SEUILS DE NUISIBILITÉ ........................................................................................54 PERTES ESTIMÉES ...........................................................................................................................55 RÉFÉRENCES ET AUTRES LECTURES............................................................................56 LÉGENDES ET GLOSSAIRE...........................................................................................57 Colophon © 2010, Nematode Management Action Plan. Bien que toutes les précautions aient été prises pour produire cette brochure basée sur les informations les plus récentes et les plus fiables à la date d'édition, le Nematode Management Action Plan décline toute responsabilité pour les conséquences qui pourraient résulter de l'utilisation de ces informations. DuPont Solutions France a traduit cette brochure en 2012 avec l'aimable autorisation des éditeurs. Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 3 DUPONT – INNOVER POUR NOURRIR LA PLANÈTE La pomme de terre est l’aliment numéro 1 à l’échelle mondiale qui n’a pas pour origine des grains : elle fait partie intégrante du système alimentaire mondial. DuPont travaille en partenariat avec agriculteurs et transformateurs pour comprendre l’évolution des conditions de production et leurs besoins et développe des solutions pour la maitrise des adventices, la lutte contre les maladies et le contrôle des ravageurs afin de concourir à des récoltes de qualité, plus importantes pour une population mondiale qui ne cesse de croitre. DuPont a apporté la science et l’ingénierie au niveau mondial sous la forme de produits, matériels et services innovants depuis 1802. L’entreprise, qui compte plus de 9 500 scientifiques et ingénieurs, a investi plus de 2 milliards de dollars en recherche et développement en 2011. Chez DuPont, plus de 9 500 scientifiques et ingénieurs travaillent ensemble sur des solutions et produits pour produire mieux et durablement, pour des cultures plus saines et pour maximiser vos revenus. Centre européen de recherche et développement de DuPont pour la protection des cultures (ERDC), Nambsheim, France. 4 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale INTRODUCTION PRÉFACE GUIDE DE LECTURE Cette brochure a été réalisée dans le cadre du « Nematode Management Action Plan Initiative » aux Pays-Bas et a été publiée en hollandais en 2010. Elle fournit une vue d'ensemble sur la reconnaissance des dégâts des nématodes sur les cultures et sur la gestion intégrée des nématodes parasites en production végétale. Reconnaître les dégâts de nématodes et identifier les nématodes est le premier pas crucial vers leur contrôle, c’est pourquoi le chapitre 2 décrit et présente les nématodes les plus communément présents en productions végétales. Le chapitre 3 expose les différentes étapes à suivre dans le cas d’un problème de nématodes et le chapitre 4 décrit comment gérer une situation à nématodes. Il est toujours préférable d’éviter l’infestation de vos parcelles par les nématodes en agissant de façon préventive comme le décrit le chapitre 5. Le chapitre 6 examine en détail les différentes mesures de gestion des nématodes. Enfin, le chapitre 7 expose les dégâts aux cultures que les nématodes peuvent causer et quels sont les facteurs impliqués. DuPont publie cette traduction dans le but de rendre ce remarquable document sur les nématodes accessible à un public plus large. DuPont ne saurait être tenu responsable de cette traduction et le lecteur devra se référer à la version originale disponible en hollandais ; le lecteur prendra en compte les réglementations en vigueur dans son pays d'activité; les références hollandaises décrites ne peuvent être extrapolées aux conditions françaises de manière systématique ; contacter votre conseiller ou votre institut technique pour toute adaptation à vos conditions de culture. Avec cette brochure DuPont met en lumière l’impact des nématodes parasites sur la qualité et la quantité des récoltes. Une gestion adéquate des nématodes est considérée très largement comme la clé de la réussite et de la durabilité de la gestion intégrée des cultures. Cette brochure décrit les nématodes les plus courants et expose les différentes étapes à suivre dans le cas d’un problème de nématodes Les nématodes peuvent engendrer de sérieux dégâts sur un grand nombre de cultures Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 5 SYMPTÔMES CAUSÉS PAR LES NÉMATODES LES NÉMATODES SONT PRÉSENTS PARTOUT À titre d’exemple, aux Pays-Bas, approximativement 1 200 espèces de nématodes peuvent être trouvées dans les eaux de surface et les sols. Environ une centaine de ces espèces est considérée comme phytopathogène. Une fois qu’un dégât de nématode est visible à l’œil nu, il n’y a aucun moyen de rattraper les dégâts. Les populations de nématodes croissent lentement en comparaison de celles de ravageurs et de champignons, et leur dispersion est limitée. Il est important pour un agriculteur de mettre en place, comme éléments de la gestion intégrée de son exploitation, des mesures qui réduisent le risque d’infestation et de multiplication des nématodes. Les nématodes qui induisent le plus de dégâts sur les grandes cultures et les légumes sont décrits ci-dessous. DESCRIPTION DES NÉMATODES À KYSTE Le nom commun des nématodes à kyste est souvent lié à la principale culture qu’ils attaquent, par exemple le nématode à kyste de la carotte, le nématode à kyste du pois, le nématode à kyste de la betterave, le nématode à kyste de la pomme de terre. Ils sont strictement spécifiques d’une ou de quelques cultures et sont retrouvés dans tout type de sol. Le kyste est formé lorsque le nématode femelle meurt. Sa peau se durcit, alors que l’intérieur de son corps est rempli d’œufs. Un kyste contient entre 200 et 600 œufs bien protégés des conditions extérieures. Ils restent dormants dans le sol jusqu’à ce que les racines d’une plante hôte se développent à proximité. Chaque année, une petite proportion des kystes éclot spontanément, indépendamment de la présence ou non des racines de plantes hôtes. L’éclosion aléatoire des kystes diminue le niveau d’infestation du sol au cours du temps. Le rythme de décroissance dépend principalement de l’espèce de nématode considérée. Dès que les substances attractives (exsudats racinaires) atteignent le kyste, les œufs éclosent et les larves sortent du kyste à la recherche de leur hôte. Les larves pénètrent dans la racine juste derrière la zone de croissance. Les larves envoient un signal auquel la plante réagit en formant des cellules nourricières autour de la tête de la larve. La plante transporte alors des nutriments vers la larve qui par la suite mue et perd sa capacité à se déplacer dans la racine. La larve se développe alors en mâle ou en femelle. En effet, le contexte alimentaire détermine le sexe. Si les nutriments sont présents en quantité suffisante, la larve devient une femelle ; beaucoup plus de mâles sont créés en situation de nourriture limitée. Les mâles adultes sont mobiles et quittent la racine. Les femelles enflent jusqu’à ce que la partie arrière de leur corps se retrouve à l’extérieur de la racine. Elle est ensuite 6 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale fécondée par un ou plusieurs mâles. Les œufs sont alors contenus dans le corps de la femelle. Le cycle de développement reprend : la femelle meurt, etc. La plupart des espèces à kyste réalise un unique cycle au cours d’une saison. Cependant, quelques espèces, comme le nématode à kyste de la betterave, ont deux à quatre cycles de développement par an. Les dégâts engendrés par ces espèces de nématodes sont initialement causés par les larves attaquant le système racinaire, mais ils perturbent également la balance hormonale de la plante. Quand les larves pénètrent dans les racines, le système hormonal de la plante est perturbé, ce qui limite la photosynthèse au niveau des feuilles et est dommageable pour la plante. La création de résistances aux nématodes à kyste est fondée sur l’interruption de la formation de la cellule nourricière. Chez les variétés totalement résistantes, la cellule nourricière n’est pas complètement développée, ce qui signifie qu’il y a très peu de nourriture disponible pour la jeune larve de nématode. Cette situation engendre uniquement des nématodes mâles. Ainsi le nématode à kyste ne peut se reproduire. Le mécanisme de résistance est uniquement induit lorsque la larve commence à pénétrer dans le système racinaire. Ce type de résistance est, par conséquent, uniquement lié au taux de multiplication et n’a pas d’impact sur la sensibilité/ tolérance de la variété aux dégâts. La tolérance de la variété décrit l’aptitude de la variété à tolérer une infestation de nématodes et ses dégâts (et pertes de rendement). Les larves de nématodes à kyste pénètrent le système racinaire de toutes les plantes hôtes, en dépit de la résistance des variétés. Le critère selon lequel les plantes hôtes présentent des dégâts sous la forme de retard de croissance est exprimé par le concept de « tolérance ». Le tableau ci-dessous explicite les concepts de résistance et de tolérance. CONCEPT DE RÉSISTANCE ET TOLÉRANCE DES VARIÉTÉS DE POMME DE TERRE Résistante Multiplicatrice Tolérante Pas de multiplication et pas de dégats Multiplication mais pas de dégâts Sensible Pas de multiplication mais des dégâts Multiplication et dégâts Espèces / Pathotypes La mise en pratique probante d’une gestion du nématode à kyste de la pomme de terre (PCN) basée sur la résistance variétale est difficile car il y a beaucoup d’espèces différentes de PCN, Globodera rostochiensis (Ro) et Globodera pallida (Pa). Au sein de ces deux espèces, plusieurs biotypes ont été listés. Aux Pays-Bas, pour le moment, les pathotypes de G. rostochiensis suivants ont été identifiés : Ro1, Ro2, Ro3, Ro4 et Ro5, parmi lesquels Ro1 est le plus courant. Globodera pallida n’a pas de catégories de pathotypes particulières. Beaucoup de variétés de pomme de terre de fécule sont résistantes aux deux espèces G. pallida et G. rostochiensis. Certaines variétés sont exclusivement résistantes à une espèce. Dans le cas de G. rostochiensis, la résistance est dépendante du pathotype. Il y a très peu de variétés de pomme de terre destinées à la consommation qui sont résistantes aux deux espèces de PCN. Ceci rend la gestion des infestations mixtes par PCN plus compliquée. En cas de contamination par G. pallida, l’effet d’une variété de pomme de terre résistante va dépendre de la population en place dans une parcelle donnée. Ceci implique que le déclin d’une population de PCN dans une parcelle donnée pourra différer entre deux parcelles pour une même variété résistante. Notons que les infestations mixtes par des pathotypes différents peuvent également être rencontrées. L’effet d’une variété résistante sur la densité d’une population de PCN doit être contrôlé par prélèvement de sol. Comment savoir quelle espèce est présente ? Les résultats d’un test de PCN sur un prélèvement de sol et les informations relatives aux variétés cultivées sur une parcelle donnée peuvent révéler quelles espèces sont présentes. Par exemple, si une contamination est observée après avoir cultivé une variété résistante à G.pallida comme Innovator, les chances pour que la parcelle soit infestée par G. rostochiensis sont très élevées. Une infestation mixte par G. rostochiensis et G.pallida est également probable. La meilleure méthode consiste à mesurer l’effet d’une variété résistante en prélevant des échantillons de sol après récolte. Si vous cultivez une variété sans résistance spécifique, introduire une autre variété présentant la résistance souhaitée est une bonne idée dans le cas d’une rotation pomme de terre sur pomme de terre. Le catalogue national des variétés contient les informations relatives à la résistance aux nématodes. Si vous choisissez une variété résistante, les nématodes seront attirés mais ne se reproduiront pas. La population de PCN déclinera à l’occasion de l’utilisation d’une variété résistante. Le niveau de résistance est exprimé sur la base d’une proportion relative par rapport à celui d’une variété référence sensible, dite « sensibilité relative ». Cette proportion trouve correspondance dans une échelle de résistance allant de 1 à 9 qui est publiée chaque année dans une liste hollandaise de variétés de pomme de terre recommandées (voir le tableau ci-dessous). CORRESPONDANCE ENTRE LA SENSIBILITÉ RELATIVE DE VARIÉTÉS AUX PCN ET L’ÉCHELLE DE RÉSISTANCE DE 1 À 9 Sensibilité relative <1 1,1- 3 3,1- 5 5,1- 10 10,1- 15 15,1- 25 25,1- 50 50,1- 100 >100 Classification 9 8 7 6 5 4 3 2 1 Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 7 RECONNAÎTRE GLOBODERA SPP. (NÉMATODE À KYSTE DE LA POMME DE TERRE, PCN) POMME DE TERRE, zone infestée Symptômes sur racines • Généralement une croissance retardée ou des foyers de végétation faible; • Les zones infestées sont habituellement de forme ovale; • Les plantes au centre de la zone sont les plus petites; • Plus on s’éloigne du centre, plus les plantes sont développées; • La fermeture du couvert végétal survient tardivement ou ne survient pas du tout. • De petits kystes blancs sont observables sur les racines des variétés sensibles à partir de mi-juin; • Les espèces sont reconnaissables à la couleur des kystes; • Les kystes produits par Globodera pallica passent du blanc au marron; • Les kystes produits par Globodera rostochiensis passent du blanc au jaune puis au marron. À noter : les variétés résistantes n’ont presque pas de kystes sur leurs racines. RECONNAÎTRE HETERODERA SCHACHTII (NÉMATODE À KYSTE BLANC DE LA BETTERAVE) OU HETERODERA BETAE (NÉMATODE À KYSTE JAUNE DE LA BETTERAVE) BETTERAVE À SUCRE, zone infestée Symptômes sur racines • Betteraves peu développées; • Retard généralisé de la croissance ou foyers de végétation faible; • Forme ovale; • Zones avec des plantes plus petites, d’autant plus qu’on se rapproche du centre de la zone atteinte; • La fermeture du couvert végétal survient tardivement ou ne survient pas du tout. • Petits kystes blancs à partir de mi-juin ; en cas de printemps chaud, ils peuvent apparaitre dès la fin mai; • Les kystes sont en forme de citron; • Deux espèces : - le nématode à kyste blanc de la betterave dont le kyste passe du blanc au marron, - le nématode à kyste jaune de la betterave dont le kyste passe du blanc, au jaune, puis au marron. 8 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale DESCRIPTION DES NÉMATODES À GALLES Les nématodes à galles (RKN) sont présents principalement dans des sols sableux, tourbeux, limoneux et légèrement argileux. Ils ont un spectre d’hôtes large, se reproduisent rapidement et peuvent causer des dommages économiques importants sur plusieurs cultures majeures. Ils peuvent également réduire significativement les rendements et la qualité des récoltes, notamment de pommes de terre, de carottes et de scorsonères. Les espèces de RKN les plus communément observées dans les zones à climat tempéré d’Europe sont : Meloidogyne chitwoodi, Meloidogyne fallax, Meloidogyne hapla et Meloidogyne naasi. Meloidogyne naasi ne pose généralement pas de problème significatif en production végétale. Ce nématode à galle des céréales est présent dans les sols sableux et les sols Meloidogyne chitwoodi et Meloidogyne fallax sont des organismes de quarantaine auxquels s’appliquent les règles phytosanitaires spéciales de l’Union Européenne. Ce qui signifie que le matériel de multiplication végétale doit être exempt de symptômes lors du contrôle visuel par les services nationaux d’inspection. Les nématodes à galles (espèces de Meloidogyne) doivent leur nom au fait qu’ils créent des nodules sur les racines des plantes. Comme les nématodes à kyste, Meloidogyne spp. a un effet considérable sur la physiologie du système racinaire. Au niveau du point d’entrée dans la racine, les cellules gonflent, ce qui aboutit à la formation de nodules. Leur cycle de vie est comparable à celui des nématodes à kyste, à la différence près que les femelles peuvent envelopper leurs 300 à 500 œufs dans une enveloppe gélatineuse hors de leur corps, à l’intérieur et à la surface des nodules. argileux, et attaque céréales, pelouses, oignons et betteraves à sucre. La forme caractéristique des nodules racinaires est facilement reconnaissable. Ils sont allongés, très épais et observés notamment au niveau de l’apex racinaire. Ce nématode ne présente qu’une unique génération par période de croissance végétale et n’atteint pas facilement le seuil de nuisibilité. La plupart des problèmes liés à ce nématode peuvent être évités en commençant par cultiver une plante non hôte. Les autres espèces de nématodes à galles peuvent causer de graves problèmes sur la plupart des cultures ainsi que sur les bulbes de fleurs. Ils sont difficiles à gérer, parce qu’ils ont de nombreuses plantes hôtes. La gamme d’hôtes de Meloidogyne minor, qui a été identifié seulement récemment comme un pathogène des plantes, est encore méconnue. Ce type d’enveloppe protège dans une certaine mesure les œufs, mais ils ne sont pas aussi bien protégés que dans un kyste. Le fait que les nématodes à galles aient un large spectre de plantes hôtes leur permet de survivre facilement. Les nématodes à galles ne sont pas sensibles aux substances attractives de type exsudats. Les larves sortent des œufs spontanément dès que les conditions de températures et d’humidité du sol dépassent leurs exigences minimales. Les jachères ou implantations de plantes non hôtes vont par conséquent permettre une réduction naturelle considérable des populations. La majorité des espèces ont plusieurs générations durant une période de végétation, de sorte qu’ils sont capables de se reproduire rapidement sur la plante hôte. Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 9 RECONNAÎTRE MELOIDOGYNE CHITWOODI ET M. FALLAX, NÉMATODES À GALLES DU MAÏS POMME DE TERRE, zone infestée Sur racines • Aucun symptôme pendant la croissance de la végétation. • Nodules en forme de saucisse sur les racines. CAROTTE / SCORSONÈRE, zone infestée Sur racines • Croissance faible sur l’ensemble de la parcelle ; • La croissance des cultures reprend partiellement. • Nodules en forme de saucisse sur les racines secondaires. 10 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale Sur tubercule BETTERAVE SUCRIÈRE, zone infestée • Petites masses gélatineuses sous l’épiderme ; • Boursouflures galleuses sur les pommes de terre, qui s’étendent durant le stockage. • Croissance faible sur l’ensemble de la parcelle ; • La croissance des plantes est retardée visuellement uniquement lors d’un fort niveau d’infestation. Sur carottes Sur racines • Boursouflures galleuses sur carotte. • Nodules en forme de saucisse sur les racines ; • Formation de galles sur la racine pivot. Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 11 RECONNAÎTRE MELOIDOGYNE HAPLA (NÉMATODE DU NORD À GALLE) CAROTTE / SCORSONÈRE, zone infestée CHICORÉE, zone infestée • Croissance faible sur l’ensemble de la parcelle. • Croissance faible sur l’ensemble de la parcelle. Sur racines Sur racines • Racines ramifiées « en patte d’araignée » ; • Racines secondaires qui sortent des nodules. • Racines ramifiées « en patte d’araignée » ; • Racines secondaires qui sortent des nodules. Sur carottes BETTERAVE SUCRIÈRE, sur racines • Carottes tordues et très ramifiées avec des boursouflures galleuses. • Racines ramifiées « en patte d’araignée » ; • Racines secondaires qui sortent des nodules ; • Au champ : faible croissance dans l’ensemble de la parcelle. 12 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale DESCRIPTION DES NÉMATODES DES LÉSIONS DES RACINES Les nématodes des lésions des racines (espèces Pratylenchus) engendrent la pourriture des racines sur de nombreuses cultures. Ils peuvent également se reproduire sur un grand nombre de cultures et d’adventices sans causer de dommage significatif. Les nématodes des lésions des racines sont majoritairement observés dans les sols sableux, tourbeux et faiblement argileux. La plupart du temps, un mélange de différentes espèces de Pratylenchus est présent dans les parcelles. Pratylenchus penetrans est l’espèce la plus souvent observée en parcelles de grandes cultures, bulbes à fleurs et en pépinières. En plus de Pratylenchus penetrans, Pratylenchus crenatus est une espèce retrouvée communément. P. crenatus peut provoquer des dégâts sur les cultures comme l’orge et le blé particulièrement en situation de faibles valeurs de pH. Le nématode à lésions des racines de la betterave, Pratylenchus neglectus, est également présent en sols argilo-sableux. Les nématodes à lésion des racines sont mobiles pendant toute leur vie. Ils pénètrent dans la racine et y migrent jusqu’au cylindre central. Les cellules qu’ils traversent meurent et brunissent. Ces lésions brunes sont caractéristiques des espèces Pratylenchus. Dans les cas d’infestation sévère, le système racinaire pourrit complètement. Les femelles pondent 30 à 40 œufs dans le système racinaire ou dans le sol. Cette espèce présente deux à trois générations par an. Les espèces de Pratylenchus augmentent l’effet de l’agent responsable de la verticilliose (Verticillium dahliae). Les scientifiques ont longtemps pensé que les nématodes créaient un point d’entrée pour les champignons phytopathogénes. Il apparait, cependant, que le nématode change en fait la physiologie de la plante à un point tel que même les racines indemnes de dégâts deviennent plus sensibles aux infections de Verticillium. RECONNAÎTRE PRATYLENCHUS PENETRANS (NÉMATODE DES LÉSIONS DES RACINES) POMME DE TERRE, zone infestée Sur racines • Zones de faible croissance ; • Le développement du feuillage est réduit ; • Les plantes deviennent plus sujettes à Verticillium dahliae ; • Les plantes affectées entrent en senescence plus rapidement. • Les racines changent de couleur, passant de marron à noire ; • Lésions striées sur la racine ; • L’épiderme se détache. Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 13 CAROTTE / SCORSONÈRE, zone infestée Symptômes sur racines • Croissance faible sur toute la parcelle ; • La couverture foliaire est réduite. • La croissance du pivot est stoppée ; • Lésions striées sur les racines ; • Sur scorsonère : l’épiderme se détache. Il y a également d’autres nématodes à lésions des racines qui n’induisent pas les dégâts mentionnés ci-dessus. Ce sont Pratylenchus neglectus (nématode des lésions des racines de la betterave) et Pratylenchu crenatus (nématode des lésions des racines des céréales). DESCRIPTION DES NÉMATODES LIBRES Le terme « libre » est réservé à ces espèces de nématodes qui restent hors de la plante et attaquent la racine principalement à sa surface. Ces espèces sont observées dans les genres Rotylenchus, Paratylenchus, Tylenchorhynchus, Longidorus, Xiphinema, Trichodorus et Paratrichodorus. En terme économique, les espèces Trichodorus sont les plus dommageables. Elles sont observées dans les sols sableux, tourbeux et argileux légers. Paratrichodorus teres est le plus mobile, il est observé dans les sols sableux salins. Trichodorus primitivus est moins mobile et préfère les sols argilo-sableux légers. D’une manière générale, les espèces restantes sont trouvées en combinaisons variables. Toutes les espèces Trichodorus et Paratylenchus sont capables de transmettre le virus du Rattle du tabac (TRV) 14 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale et le virus du brunissement prématuré du pois (PEBV). Les nématodes Trichodorus causent en général des infestations du système racinaire en conditions de sol humide - cette humidité permet aux nématodes de nager dans les eaux capillaires du sol. Les nématodes Trichodorus ont pour caractéristique de provoquer des dégâts au moment où beaucoup de cultures sont en cours d’émergence. Le risque de dégât sur les cultures est plus important en cas de printemps froid et humide. Les nématodes libres sont connus pour avoir un large spectre de plantes hôtes, cultures et adventices confondues. RECONNAÎTRE PARATRICHODORUS PACHYDERMUS, PARATRICHODORUS TERES (NÉMATODES LIBRES DES RACINES) POMME DE TERRE, zone infestée Sur racines / plantules • Foyers irréguliers avec des plantes affaiblies et des plantes normales côte à côte. • Les plantules montrent des signes de formation de liège. Ce symptôme peut facilement être confondu avec ceux provoqués par Rhizoctonia. Parfois les deux bio-agresseurs sont présents ; • Les jeunes tiges et les racines montrent des croissances irrégulières ; • Épaississement des jeunes tiges et des racines. Sur tubercules • Nécrose annulaire provoquée par le virus du Rattle du tabac (TRV). Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 15 BETTERAVE SUCRIÈRE, zone infestée OIGNONS, zone infestée • Foyers irréguliers avec des plantes affaiblies et des plantes normales côte à côte ; • La culture peut rattraper partiellement. • Foyers irréguliers avec des plantes affaiblies et des plantes normales côte à côte. Sur racines Sur racines • Ramification de la racine pivot et croissance de racines secondaires horizontalement. • Les extrémités des racines sont émoussées et se développent latéralement; • Croissance buissonnante. DESCRIPTION DES NÉMATODES DES TIGES RECONNAÎTRE DITYLENCHUS DIPSACI Les nématodes des tiges sont à l’origine de bulbes déformés ou craquelés sur oignons et échalotes. Les feuilles restent petites, épaisses et cassantes, et ont des teintes bleu métallique. Les bulbes eux-mêmes sont marqués par un type de pourriture sèche et peuvent avoirs des craquelures. Sur les cultures sévèrement atteintes, toute la récolte peut être compromise. Les tubercules de pomme de terre affectés présentent des creux avec une pourriture sèche qui peut pénétrer profondément dans le tubercule. Visuellement, les symptômes aériens d’une infestation sévère incluent un retard de croissance et de dévelop- 16 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale pement, ainsi que des feuilles malformées, des pétioles épaissis et des tiges creuses. En culture de carotte, les plantules meurent rapidement, alors qu’à un stade plus avancé, une pourriture sèche se développe à l’interface entre la racine et les feuilles. Le maïs se couche du fait de l’infection de la base de la tige. Sur pois, les plantes sérieusement atteintes sont malformées, les tiges sont épaissies et les feuilles sont petites et gondolées. Les nématodes des tiges sur betterave engendrent des pétioles vrillés, des feuilles enflées et malformées, dégâts qui ressemblent à ceux des régulateurs de croissance. Le cœur de la betterave est plus souvent affecté plus tard en saison. Les infestations sérieuses sur tulipe sont caractérisées par des trous avec des bordures effilochées sur les feuilles et les fleurs. La tige sous la fleur est souvent affectée sur un seul côté, entrainant sa courbure, et la fleur est inclinée en angle au sommet de la tige. Il est fortement recommandé de ne pas produire de semences à partir de cultures provenant de sols infectés car les semences produites doivent être indemnes de contamination par le nématode des tiges. Oignons infectés par D.dispaci Description du nématode des tiges Longue période de survie en absence d’hôte Le nématode des tiges passe la plus grande partie de sa vie dans les parties aériennes de la plante. Ce nématode préfère se nourrir non seulement sur des tiges mais aussi sur des bourgeons et à la base des feuilles. À une température de 15°C, son cycle de vie est complet en trois semaines. La femelle pond jusqu’à 500 œufs par génération. La température minimum pour la production d’œuf se situe entre 1°C et 5°C. Ceci pris en compte, il n’est pas surprenant qu’une infestation du sol initialement très faible puisse aboutir à des dégâts importants sur les cultures et à de hauts niveaux d’infestation. La taille des foyers de faible croissance augmente particulièrement en cas de climat froid et humide. L’infestation de la culture et les dégâts continuent pendant le stockage. Les nématodes juvéniles peuvent survivre pendant plusieurs années que ce soit dans les sols, dans le matériel de multiplication végétatif ou dans les semences. Les nématodes des tiges peuvent, en principe, être observés dans tout type de sol. Parce qu’ils sont capables de survivre pendant de nombreuses années sans plante hôte, ils posent souvent des problèmes dans les sols plus lourds. Ils survivent plus longtemps dans des sols lourds que dans des sols sableux. Les nématodes des tiges peuvent se maintenir pendant plus de 10 ans sans plante hôte en sols argileux avec plus de 30% de limons. Il y a plus de 20 biotypes différents de nématodes des tiges connus, chacun avec de petites différences de préférence d’hôte et de développement de symptômes. Le biotype sur oignon/riz est le plus commun. Ces biotypes ne peuvent pas être identifiés sur des bases morphologiques. Le fait que les espèces ont une excellente stratégie de survie et un très faible seuil de nuisibilité rend pratiquement impossible de fournir des conseils concrets de rotation. OIGNON POMME DE TERRE • Infection de nématode des tiges sur oignon. • Les tubercules comme le feuillage peuvent être touchés ; • Infection de nématode des tiges sur tubercule. Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 17 RECONNAÎTRE DITYLENCHUS DESTRUCTOR (MALADIE VERMICULAIRE DE LA POMME DE TERRE) Ditylenchus destructor affecte principalement les parties souterraines des plantes. Les nématodes pénètrent dans les bulbes et tubercules par les stomates et les lenticelles. Ditylenchus destructor ne provoque pas de symptôme visible spécifique sur les parties aériennes des plantes. Les plantes touchées tournent simplement au jaune et la senescence débute précocement. Ce nématode est plus actif aux températures comprises entre 15 et 20°C et produit plusieurs générations par saison. Ce nématode peut se reproduire à des températures aussi basses que 5°C. Ditylenchus destructor survit dans les bulbes, dans le sol et dans les restes de plante. En absence de plante hôte, il peut se maintenir dans le sol au maximum deux ans. Il est dispersé par les bulbes ou tubercules infectés et le sol mais pas par les semences. Aucune nouvelle infection ou nouveau dégât ne se produit pendant le stockage. Ditylenchus destructor est nettement moins tolérant aux conditions sèches que le nématode des tiges. DESCRIPTION DES NÉMATODES DES FEUILLES Les nématodes des feuilles sont principalement observés dans les feuilles, les bourgeons foliaires et les points de croissance, où ils sont capables de passer l’hiver. Ils sont très actifs même à basse température. Les nématodes des feuilles sont caractérisés par un cycle de vie assez court. Le nématode des feuilles de chrysanthème (Aphelenchoides ritzemabosi) et le nématode des feuilles de fraisier (Aphelenchoides fragariae) sont des espèces de ce groupe de nématodes. En plus des Lilium et des fraises, plusieurs cultures à bulbe peuvent être attaquées par l’une ou les deux espèces. Les nématodes piquent les bourgeons floraux et végétatifs ce qui provoque des malformations. Les feuilles présentent alors des zones jaunes ou bronzées, bordées de nervures élargies Les feuilles touchées deviennent ensuite marron ou noires. Les nématodes se déplacent activement utilisant l’eau 18 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale libre à la surface de la plante ou dans les tiges et les feuilles. Ils peuvent également être disséminés par des éclaboussures d’eau. Une fois que les feuilles sont tombées, les nématodes migrent dans le film d’eau et reviennent dans la plante. Ils pondent leurs œufs dans le matériel végétal infecté. À l’automne, les nématodes retournent dans les bourgeons souterrains. Les nématodes des feuilles peuvent survivre sur les résidus de culture pendant plusieurs mois. A. ritzemabosi peut survivre plus de 24 mois dans du matériel végétal sec. En revanche, les nématodes des feuilles ne peuvent survivre dans les sols que pendant seulement 2 à 3 mois en absence de plante hôte. Les nématodes des feuilles sont disséminés par les pépinières ou par les graines. L’infection par les sols se produit via du matériel végétal mort ou vivant. BOÎTE À OUTILS DE CONTRÔLE DES NÉMATODES ET PLANIFICATION DE LA ROTATION LA STRATÉGIE DE GESTION DES NÉMATODES (NEMATODES MANAGEMENT STRATEGY - NMS) La stratégie de gestion des nématodes est un outil clé pour la gestion intégrée des nématodes sur votre exploitation. Cet outil se base sur la prévention, l’assainissement, la surveillance, la rotation des cultures et sur des mesures complémentaires. NEMATODES MANAGEMENT STRATEGY (NMS) Prévention matériel végétal initial, mesures d’hygiène sur l’exploitation, maitrise des mauvaises herbes Surveillance Rotation des cultures Mesures complémentaires type de sol, historique, inspection des cultures, échantillonnage du sol séquence des cultures, choix des variétés, fréquence de mise en culture, engrais vert désinfection des sols, granulés nématicides, contrôle biologique par la matière organique et utilisation de cultures pièges TRAVAILLER AVEC LA BOÎTE À OUTILS DE CONTRÔLE DES NÉMATODES Dans le chapitre 2, nous avons décrit les principaux groupes de nématodes parasites et présenté des photos pour aider à leur identification. Une fois la présence ou l’absence de nématodes confirmée, utilisez le guide présenté ci-dessous pour identifier rapidement le process à mettre en œuvre et les informations à recueillir. Cette approche vous permettra de vous souvenir des éléments les plus pertinents de la gestion intégrée des nématodes. Les boites à outils contiennent des domaines qui peuvent s’appliquer à votre situation, avec des références renvoyant aux chapitres appropriés. Elles vous donnent également des instructions étape par étape sur la façon de contrôler les populations de nématodes sur votre exploitation. Ces mesures ont été testées, évaluées et approuvées par des spécialistes hollandais, ce qui assure de leur validité ce qui assure de leur validité, dans le contexte pédo-climatique des Pays-Bas. Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 19 LES OUTILS DE CONTRÔLE DES NÉMATODES La gestion des nématodes commence par la prévention et l’analyse du sol. Suivez les 7 étapes dans l’ordre jusqu’à la fin du guide d’action. 1. LA PRÉVENTION 3. L’HISTORIQUE DE ROTATION DES CULTURES Il est important de contenir les nématodes hors de vos terres. Les quatre actions ci-dessous peuvent vous permettre d’atteindre cet objectif. La présence de certaines espèces de nématodes a été identifiée. Il est maintenant important de déterminer quelles sont les cultures de votre rotation qui sont les plus problématiques à la fois en terme de dégât potentiel et de reproduction des nématodes. En premier lieu, examinez votre historique de plan de rotation. Un modèle de contrôle du plan de rotation des cultures est fourni page 24. • Stock de semences : Utilisez des semences et des jeunes plants sans trace de terre adhérente. Vérifiez que les jeunes plants ne présentent pas d’anormalités, comme des galles ; • Hygiène du matériel : Il faut que vos machines soient impeccables, afin de ne pas introduire de «sol étranger» dans les locaux de votre exploitation ; • Maitrise des mauvaises herbes : Les mauvaises herbes permettent la reproduction des nématodes, à la fois pendant la culture et après. Assurez-vous d’une maitrise parfaite des mauvaises herbes ; • Rechercher des signes d’infestation de nématodes en les surveillant pendant la période de croissance de la culture. Si vous détectez une zone suspecte, prélevez un échantillon de nématodes. Vérifiez la certification des livraisons des semences de base et des plants car la plupart du temps, c’est l’utilisateur qui rapporte les défauts et dégâts. 2. L’ÉCHANTILLONNAGE Il faut détecter les problèmes de nématodes à un stade précoce de développement à travers l’échantillonnage et l’analyse. Echantillonner vous permettra d’évaluer le risque avant la mise en culture et potentiellement d’éviter des dégâts sur l’ensemble de votre production. De plus, une bonne gestion des nématodes n’est pas possible sans une bonne analyse du niveau d’infestation par les nématodes à l’échelle de la parcelle. 4. AMÉLIORER VOTRE PLAN DE CULTURE Ajustez votre séquence de culture selon le tableau des plantes hôtes des nématodes. La plupart des sols abritent des populations mixtes de nématodes phytopathogènes. En d’autres termes, plusieurs espèces de nématodes peuvent être présentes. Prenez en compte chaque type de nématode dans le plan et définissez le programme de rotation le moins désavantageux, en sachant qu’il pourrait y avoir un conflit entre les objectifs et les effets lors du choix d’une rotation particulière. Ce qui pourrait être une bonne mesure pour contrôler le nématode A pourrait entrainer l’augmentation des dégâts causés par le nématode B. Ajustez la fréquence des cultures si nécessaire. Cultiver une plus large gamme de cultures est une option. Par exemple, au lieu de mettre en place un plan de rotation sur 3 ans, prévoyez un plan de rotation sur 4 ans. Déterminez également si une plante qui permet une reproduction rapide peut s’intégrer dans le programme de rotation. En considérant ces problèmes, vous pourrez améliorer votre rotation. Vous avez plusieurs possibilités, décrites ci-après. 20 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale 5. LA SÉLECTION VARIÉTALE 7. LES MESURES COMPLÉMENTAIRES Il existe des variétés résistantes ou tolérantes qui ont une influence sur la densité des nématodes et les dégâts qu’ils peuvent causer aux cultures. La résistance ou la tolérance ont été établies pour les espèces de nématodes suivantes : Prenez des mesures complémentaires pour combattre les nématodes ou pour limiter les dégâts qu’ils peuvent occasionner. Les options chimiques et non chimiques sont résumées ci-dessous : • Nématode à kyste blanc de la betterave: certaines variétés de betterave sont résistantes mais peuvent subir des dégâts à partir d’un niveau de 1 500 larves pour 100 ml de sol ; • Les haricots verts sont résistants à Meloidogyne chitwoodi et à Meloidogyne falax et favorisent une diminution active de la population. Mais, cet effet dépend de la variété et certaines d’entre elles permettent néanmoins une reproduction des nématodes. Renseignez-vous auprès de votre fournisseur de semences pour plus d’informations ; • Nématode à kyste de la pomme de terre : une large gamme de variétés résistantes ou tolérantes a été identifiée. Elles sont disponibles dans le catalogue des variétés. 6. LES ENGRAIS VERTS • La décontamination des sols permet d’éradiquer environ 80 - 90 % des nématodes ; • Les microgranulés autorisés paralysent les nématodes plutôt que de les tuer ; • La décontamination biologique des sols est permise par une intégration de matériaux organiques frais dans le sol, qu’il faut ensuite recouvrir avec une bâche de plastique ; • L’utilisation de cultures pièges ; • L’inondation : submerger le sol avec de l’eau ; • La biofumigation entraine un mélange du matériel végétal dans le sol et n’est pas considérée comme une solution actuellement. Un résumé des actions de gestion pour chaque espèce de nématode est fourni pour : • Globodera spp (nématodes à kyste de la pomme de terre) • Heteradera schachtii ou H. betae (nématodes à kyste de la betterave) Il existe des cultures à engrais verts résistantes qui ont un effet sur la densité des nématodes dans le sol. Les variétés résistantes sont identifiées pour les espèces de nématodes suivantes : • Meloidogyne chitwoodi (nématode à galles du maïs) • La quantité de nématodes à kyste blanc et jaune de la betterave diminue considérablement après des cultures de variétés résistantes de radis fourragers et de moutardes jaunes ; • Pratylenchus penetrans (nématode des lésions des racines) • Meloidogyne hapla (nématode du Nord à galles) • Trichodorus species (nématodes libres) • Tagetus patula permet une diminution de Pratylenchus penetrans. L’avoine rude (Avena stigosa) n’abritera pas Pratylenchus penetrans, permettant ainsi une importante diminution de ce nématode dans les sols affectés. Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 21 L’ENQUÊTE : VÉRIFICATION DU PLAN DE ROTATION DES CULTURES Les expériences passées peuvent être source d’enseignements. C’est pourquoi il est nécessaire de conserver un historique des programmes de culture. Utilisez la liste de validation du programme de culture pour identifier à quel moment le vôtre a posé problème. La première étape consiste à lister les cultures par année et dans l’ordre. Utilisez le guide des plantes hôtes pour estimer le potentiel de reproduction des nématodes et de dégâts sur les cultures. Créez un programme de rotation qui permet un minimum de dégâts de par la variation des séquences de culture, la détermination de la fréquence des cultures et le remplacement des cultures ou des variétés. Les étapes pour améliorer vos rotations sont listées ci-dessous. ÉTAPE 2 : À QUELLE FRÉQUENCE LES CULTURES ONT ÉTÉ MISES EN PLACE ? ÉTAPE 1 : QUELS NÉMATODES CAUSENT LES DÉGÂTS ? L’observation des cultures et l’échantillonnage des nématodes en particulier permettent de déterminer quels nématodes sont présents. Une fois la situation identifiée, vous pouvez choisir la meilleure approche. Choix des cultures, engrais verts, programme de rotation et la fréquence des cultures, tous ces éléments ont un rôle à jouer dans cette approche correcte. La fréquence des cultures affecte non seulement les nématodes mais aussi les maladies et les ravageurs. Votre fréquence de culture est également déterminée par votre type de sol et par la réglementation. Le tableau ci-dessous décrit la fréquence maximale de culture en absence de nématodes. Fréquence des cultures en absence de nématodes Culture Type de sol Fréquence de culture Problèmes avec des maladies telles que Pomme de terre pour le marché de détail Sable 1:4 Verticillium / galle / Rhizoctonia Argile 1:4 Verticillium / galle / Rhizoctonia Pomme de terre de fécule Sable / tourbe 1:2 Pomme de terre semences Tous 1:4 Betterave à sucre Argile et sablo-argileux 1:4 Sable et tourbe 1:3 Tous 1:6 Botrytis Haricot vert 1:6 Espèce tolérante Fèves et féverole 1:6 Rhizoctonia Pois de conserve Rhizoctonia, réglementation Blé d’hiver Sablo-argileux, argileux et tourbeux 1:2 Piétin-échaudage en cas de culture continue et d'orge en deuxième et troisième année Orge de printemps Tous 1:2 Augmentation des maladies foliaires Maïs vert Tous 1:3 Pythium et Fusarium Oignons Tous 1:5 Pourriture blanche Salsifis/scorsonères Tous 1:6 Rhizoctonia Carotte Tous 1:6 Perte de qualité Chicorée Tous 1:4 Pourriture rose (Phytophthora erythroseptica) Variétés de chou Tous 1:4 Hernies Chou pommé Tous 1:2 22 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale ÉTAPE 3 : QUELLE ÉTAIT LA SÉQUENCE DES CULTURES SUR LA PARCELLE POSANT PROBLÈME ? Commencez par dresser un tableau des séquences de culture mises en place durant les dernières années. Exemple d’une séquence de culture durant les dernières années : Parcelle Ha 2002 2003 2004 2005 Bloc 7 3 Maïs grain Carotte Betterave Pomme à sucre de terre 2006 2007 2008 Maïs grain Féverole Betterave à sucre ÉTAPE 4 : ANALYSE DU PROBLÈME – EST-CE QUE LA ROTATION EST DANS LE BON ORDRE ? La méthode traditionnelle pour gérer les problèmes de nématodes passe par la rotation des cultures. La définition de la rotation des cultures est « l’alignement de la séquence et de la succession de cultures de la façon la plus favorable ». Séquence de culture La séquence de culture est déterminée par : • La reproduction des nématodes et les dégâts qu’ils peuvent causer ; • Les maladies causées par les champignons du sol ; • La fréquence de la culture dans le programme ; • Les ravageurs ; • Le stockage. Utilisez le tableau des plantes hôtes pour déterminer le dégât potentiel et la reproduction des nématodes pour chaque culture. Le tableau est fourni à la fin du document. Le tableau est composé d’une matrice de différentes couleurs, points et abréviations. Légende des types de sol Certains nématodes se développent dans un sol sableux plutôt que dans un sol argileux. Ce tableau liste les types de sols dans lesquels les espèces de nématodes sont actives. Type de sol Globodera rostochiensis / G. pallida Nématodes à kystes de la pomme de terre Heterodera schachtii Nématode à kyste blanc de la betterave Heterodera betae Nématode à kyste jaune de la betterave Meloidogyne hapla Nématode du Nord à galles Meloidogyne naasi Nématode à galles des céréales S T SA A S T SA A ST ST S T SA Cela signifie que le nématode à kyste jaune de la betterave est actif seulement dans les sols sableux et tourbeux alors que le nématode à kyste de la pomme de terre et le nématode à kyste blanc de la betterave peuvent être présent dans tous les types de sols. Légende des types de sols S Sableux Matière organique < 8 % T Tourbeux Matière organique > 8 % Sablo-Argileux Limons < 25 % Argileux Limons > 25 % SA A Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 23 Légende : Impact sur la population de nématodes ? Inconnu ou trop peu de données -- Réduction active - Réduction naturelle • •• ••• Augmentation faible Augmentation modérée Augmentation forte R Dépendant de la variété S Dépendant du sérotype Le taux de multiplication des nématodes est exprimé avec des points, un signe ’moins’ et les symboles -- et R. Trois points indiquent le plus haut niveau de reproduction. ‘--’ indique une forte baisse. Cela signifie que le nombre de nématodes chute plus rapidement avec une culture qui n’est pas une plante hôte ou une jachère. Un exemple bien connu est celui des tagètes, semés sur une jachère estivale, qui contrôlent efficacement les nématodes des lésions des racines (Pratylenchus penetrans). Le symbole ‘R’ indique une dépendance selon la variété. Les variétés peuvent être sensibles ou résistantes. Légende : pertes de cultures Inconnu Aucune perte 5 - 15 % 15 - 33 % > 33 % Pertes faibles Pertes modérées Pertes fortes La sensibilité aux dégâts de chaque culture est exprimée avec une couleur. Une fourchette de dégâts est donnée pour chaque couleur. Les dégâts occasionnés ne dépendent pas seulement du nombre de nématodes mais également d’autres facteurs comme le pH, le type de sols ou d’autres encore. Le même nombre de nématodes dans un sol sableux avec 2 % de matière organique causera plus de dégâts sur les cultures que dans un sol argileux avec 40 % de limon. Les dégâts sont exprimés en pourcentage qui indique les pertes financières par rapport à une récolte normale. Les dégâts peuvent aller jusqu’à 100 %, si un lot entier est rejeté à cause de sa mauvaise qualité. Exemple : espèce de nématode : nématode à kyste jaune de la betterave - Pomme de terre - Maïs grain ••• ••• 24 Féverole Betterave à sucre DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale Description des causes du problème de nématodes Le nématode à kyste jaune de la betterave se reproduit fortement sur la féverole. Il y a deux cultures dans le programme de rotation qui permettent à ce nématode de se reproduire rapidement. ÉTAPE 5 : AMÉLIORATION DU PROGRAMME DE ROTATION Consultez le tableau des plantes hôtes des nématodes 1-Regardez le taux de multiplication et le potentiel de dégâts liés aux combinaisons classiques de cultures et d’espèces de nématodes dans le tableau des plantes hôtes. 2-Déterminez comment vous pouvez intervertir les cultures pour prévenir la reproduction des nématodes juste avant la mise en culture de cultures sensibles. 3-Rédigez votre approche de gestion des nématodes. Améliorez votre rotation de cultures Espèce de nématode : nématode à kyste jaune de la betterave - Pomme de terre - Haricot vert - Maïs grain ••• Le nématode à kyste jaune de la betterave se reproduit rapidement dans les cultures de féverole. Si la féverole est remplacée par des haricots verts, la multiplication est diminuée. Betterave à sucre Fréquence de culture 1 sur 4 : pommes de terre, betteraves 1 sur 8 : haricots verts 1 sur 8 : carottes Nouveau plan de culture Parcelle Ha 2008 2009 2010 2011 Bloc 7 3 Pomme de terre Carotte Maïs grain, Betterave engrais à sucre vert 2012 2013 Pomme de terre Pois/ haricot vert Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 25 CONSEIL DE GESTION INTÉGRÉE DES NÉMATODES LES ACTIVITÉS DE GESTION INTÉGRÉE DES NÉMATODES Les actions nécessaires pour un contrôle maximum des nématodes sont décrites ci-dessous. Les conseils sont pratiques et applicables. • Pomme de terre de fécule (tolérante) : par exemple Avarna, Aveka, Sofista, Scarlet et Vectra ; NÉMATODES À KYSTE DE LA POMME DE TERRE • Variétés de pomme de terre pour le marché de détail (résistantes à Globodera rostochiensis ro 1 + ro 2/3) : par exemple, Annabelle, Ballade, Simply Red et Sofia ; • Évaluez le niveau d’infestation de chaque parcelle au moyen d’échantillonnage et d’analyses. • Classez votre infestation par espèce. Il y a beaucoup plus de variétés résistantes disponibles pour Globodera rostochiensis que pour Globodera pallida. Choisissez une variété avec la résistance adaptée en fonction des espèces présentes. La résistance est liée avec l’infestation en fin de cycle. En général, une variété résistante a un taux d’infestation final en retrait, alors qu’une variété sensible/multiplicatrice entrainera une augmentation des niveaux d’infestation. La résistance est un facteur significatif dans la gestion à long terme. La tolérance d’une variété est aussi importante quand les niveaux d’infestation sont élevés. En cultivant une variété hautement tolérante, vous pouvez limiter les pertes de revenus, même dans les cas de niveaux d’infestations élevés. Exemple de variétés tolérantes et résistantes à Globodera pallida, pour le marché de détail Résistante Multiplicatrice Sensible Innovator Aucune Tolérante Aucune Agria • Pomme de terre de fécule (résistante) : par exemple Festien, Seresta, Starga et Valiant ; • Variétés de pomme de terre pour le marché de détail (résistantes à Globodera pallida pa 2 et /ou pa 3) : par exemple Ballade, Innovator, Maritiema, Santé, Saphir et Simply Red ; • Pour un fort niveau d’infestation, une application en plein de granulés nématicides est utile pour limiter les pertes de rendement et diminuer le taux de multiplication ; • La désinfection des sols dans des conditions favorables peut partiellement nettoyer le sol. Cependant, la désinfection ne peut pas compenser un mauvais choix de variété ! • À condition que sa culture soit réalisable, l’utilisation de morelles de Balbis (Solanum sisymbriifolium) peut réduire le taux de contamination du sol. Dans ce cas, il faut faire particulièrement attention à la gestion des mauvaises herbes au début de leur stade de croissance ; • La culture de pommes de terre, en tant que culture piège, peut diminuer l’infestation par les nématodes à kystes de 80 à 90 % dans l’horizon supérieur du sol, si elle est correctement réalisée ; • Détruisez les repousses de pommes de terre avant le 1er juin. NÉMATODES À KYSTE DE LA BETTERAVE Exemple de variétés tolérantes et résistantes à Globodera pallida, pour le marché de la fécule Résistante Multiplicatrice Sensible Seresta Aucune Tolérante Avarna Karnico 26 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale • Laissez un délai plus long entre deux cultures qui se comportent comme des plantes hôtes des nématodes à kyste de la betterave. Nématode à kyste jaune de la betterave (Heterodera betae) : rotation minimum : 1 sur 4 ; nématode à kyste blanc de la betterave (Heterodera schachtii) : rotation minimum : 1 sur 6 ; • En plus des betteraves et des choux, les légumineuses peuvent également agir comme des plantes hôtes des nématodes à kyste jaune de la betterave ; • Vous devez savoir avec certitude si vous faites face à une infestation de nématodes à kyste blanc ou jaune de la betterave, ou à un mélange des deux ; • Si vous faites face à une infestation de nématodes à kyste blanc de la betterave, utilisez une variété de betterave résistante. Actuellement, il n’a pas encore été prouvé que ces variétés soient également résistantes au nématode à kyste jaune de la betterave ; • Utilisez de façon optimale les cultures de radis fourragers et de moutardes jaunes avec une résistance BCA-1 ; • Cela permet une diminution efficace du nombre de nématodes. Les radis fourragers et la moutarde jaune sont également résistants au nématode à kyste jaune de la betterave. Des recherches récentes ont montré que les variétés de radis fourragers Corporal et Terranova et les variétés de moutarde jaune Achilles et Abraham sont aussi résistantes au nématode à kyste jaune de la betterave ; • Assurez-vous de suivre les procédures de prophylaxie pour votre exploitation. MELOIDOGYNE CHITWOODI • Meloidogyne chitwoodi est un organisme de quarantaine soumis à des réglementations européennes spécifiques. Il est fortement recommandé de ne pas cultiver de cultures de semences sur des parcelles infestées car toutes les semences doivent être exemptes de contamination ; • Dans le cas de cultures sensibles, cultivez une plante qui ne se comporte pas comme une plante hôte de Meloidogyne chitwoodi, comme la chicorée, le lin, la luzerne, des haricots verts résistants ou des fraises. Les alternatives qui permettent de limiter la reproduction de Meloidogyne chitwoodi incluent des cultures comme la betterave à sucre, les haricots verts (selon la variété), les oignons et l’orge de printemps ; • Assurez-vous d’une maitrise parfaite des mauvaises herbes ! • Une fois la culture principale arrivée à terme, plantez uniquement des engrais verts comme couvert végétal et détruisez les 5 semaines après leur phase de croissance initiale. Ne laissez jamais votre couvert passer l’hiver. Cependant, un radis fourrager résistant à Meloidogyne chitwoodi peut être laissé pendant la période hivernale. Faites attention à la présence d’autres espèces de nématodes nuisibles auxquelles le radis fourrager ne serait pas résistant ; • La jachère noire est une méthode d’assainissement efficace. Un semis tardif provoque également la mort de Meloidogyne chitwoodi, limitant ainsi les dégâts occasionnés. Cet effet est valable uniquement s’il y a eu une jachère noire pendant une période assez longue à la fois avant et après la culture ; • La désinfection chimique des sols dans des conditions favorables peut partiellement nettoyer le sol, mais uniquement en tant qu’action complémentaire. La désinfection seule n’est jamais suffisante pour éviter les dégâts (qualité) sur une culture très sensible ; • La désinfection des sols ne peut pas compenser un mauvais choix de variété ! • La sensibilité à la formation de nodules sur le tubercule varie notablement entre les variétés de pommes de terre; • Les granulés nématicides, quand ils sont appliqués en plein, ont un effet positif sur un grand nombre de cultures. Les granulés nématicides permettent d’obtenir un taux plus faible de tubercules de pommes de terre défectueux. À noter : les doses d’utilisation de granulés nématicides varient selon les cultures. Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 27 MELOIDOGYNE HAPLA (NÉMATODE À GALLES DU NORD) • Dans le cas de cultures sensibles, cultivez une plante (monocotylédone) qui n’est pas hôte de Meloidogyne hapla, comme les céréales, le maïs, les prairies, les bulbes de fleurs (ex : glaïeuls, lys, tulipes, jonquilles) ; Votre approche pour la gestion des mauvaises herbes à feuilles larges doit être parfaite car Meloidogyne hapla peut se multiplier sur les plantes dicotylédones ; • Evitez de cultiver des légumineuses sur des terres infestées par Meloidogyne hapla, car elles favorisent fortement une haute multiplication de ce nématode ; • Si une partie de parcelle est infestée seulement par Meloidogyne hapla, prairies de graminées et céréales sont les meilleurs couverts végétaux à mettre en place. Gardez un œil sur les autres espèces de nématodes qui peuvent se reproduire sur les graminées et les céréales, et causer des dégâts dans les cultures suivantes. Ne laissez pas le couvert passer l’hiver dans ces cas ; • Les semis tardifs au printemps provoquent la mort des nématodes, à condition qu’une période longue de jachère noire ait été mise en place ou qu’aucune plante hôte n’ait précédée le semis ; • Une application en plein de granulés nématicides a un effet positif sur la croissance initiale et sur la formation de la racine pivot. Les granulés ne tuent pas les nématodes, ils les paralysent, limitant ainsi les dégâts et leur multiplication. À noter : les doses d’utilisation de granulés nématicides varient selon les cultures. PRATYLENCHUS PENETRANS • Avant de cultiver une plante sensible, cultivez une plante peu hôte comme la betterave à sucre, les épinards ou la betterave rouge ; • Cultiver Tagetes patula est l’outil de gestion le plus efficace contre les nématodes à lésions des racines. La culture de cette variété a un effet de suppression des nématodes qui peut durer plusieurs années ; • Il existe des variétés résistantes d’Avena strigosa (avoine rude) disponibles. La mise en culture de cette plante comme couvert végétal a le même effet que laisser la parcelle en jachère. Faites attention aux repousses spontanées de céréales : ils peuvent entrainer des résultats décevants ; • Ne cultivez pas de variétés sensibles de pommes de terre, comme Seresta, Starga ou Aveka. À la place, choisissez une variété moins sensible comme Festien ; • La désinfection des sols dans des conditions favorables peut partiellement nettoyer le sol, mais seulement en tant qu’action complémentaire. La désinfection des sols ne peut pas compenser un mauvais choix de culture ou de variété ! • Les granulés nématicides ont un effet très positif seulement lorsqu’ils sont appliqués en plein lorsque la densité de nématodes est forte. Les granulés ne tuent pas les nématodes, ils les paralysent, limitant ainsi les dégâts. À noter : les doses d’utilisation de granulés nématicides varient selon les cultures. LES NÉMATODES LIBRES MELOIDOGYNE NAASI (NÉMATODE À GALLES DES CÉRÉALES) • Les betteraves, les oignons, le blé de printemps, l’orge de printemps et le ray-grass sont les plus sensibles aux dégâts. Cultivez une plante qui n’est pas hôte pour résoudre le problème. 28 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale • Assurez-vous qu’une culture sensible est précédée par une culture qui limite la reproduction des nématodes. Les espèces de nématodes Trichodoridés apparaissant souvent dans des populations mixtes, il vaut mieux que vous demandiez conseil à votre interlocuteur habituel ; • Si vous faites face à une infestation par Paratrichodorous teres, ne cultivez que du radis fourrager ou de la moutarde jaune comme engrais vert après la culture principale. Le radis fourrager a l’avantage supplémentaire de contrôler le virus du Rattle du tabac. Il n’est pas plus favorable que d’autres engrais vert en ce qui concerne les infestations de Trichodoridés. Ne laissez jamais vos engrais verts hiverner au champ. Autrement, d’autres espèces vont pouvoir survivre et se multiplier ; • Si vous êtes en présence de Paratrichodorous teres, l’expérience montre que l’ajout de matière organique dans les couches superficielles du sol est un bon moyen de prévention de dégâts directs. Ceci perturbe les nématodes ; • Si vous suspectez que les nématodes soient infectés par le virus du Rattle du tabac, choisissez une variété de pommes de terre qui n’est pas particulièrement sensible à la nécrose annulaire ; • La désinfection du sol en conditions favorables peut partiellement assainir le sol, mais seulement de manière complémentaire. Elle ne peut en aucun cas compenser un mauvais choix de culture et de variété ! • Dans les cas où le niveau d’infestation est élevé, des granulés nématicides peuvent avoir un effet positif durant l’établissement de la culture. Les granulés ne tuent pas les nématodes ; ils les paralysent ce qui réduit les dégâts sur la culture. NÉMATODES DES TIGES (DITYLENCHUS DISPACI) • Cultivez de manière discontinue toute culture sensible occasionne d’importants dégâts dans des champs infestés, notamment les oignons et les tulipes ; • N’implantez pas de cultures qui favorisent la reproduction des nématodes des tiges, comme les oignons, la luzerne, le pois, les haricots, les tulipes et les trèfles. Prêtez également attention aux cultures qui permettent une reproduction modérée des nématodes comme la pomme de terre, le maïs, le seigle, l’avoine et la carotte ; • Les cultures de pois, haricots verts et fèves peuvent supporter une forte infestation de Ditylenchus dispaci et leur multiplication sans symptôme visible ; • Plus votre sol possède une texture lourde, plus vous devez faire attention lors d’une réimplantation de cultures sensibles dans des zones où le problème est survenu précédemment ; • Blé, orge, triticale, chicorée, scorsonère, betterave sucrière, betterave rouge, lin et épinard ne favorisent pas la reproduction des nématodes, c’est pourquoi ces cultures sont intéressantes dans la rotation. À noter que la betterave sucrière, la betterave rouge, le lin et les épinards présentent des risques de dégâts ; • Les nématodes des tiges se retrouvent souvent dans des foyers délimités. Il est intéressant de repérer et cartographier ces zones puis d’empêcher la dissémination vers des zones non infectées ; • La destruction immédiate des cultures affectées empêche leur reproduction tout en limitant leur expansion. Il est recommandé de maintenir une zone tampon de quelques mètres ; • L’utilisation de semences certifiées est fondamentale dans la gestion de ce nématode. Un traitement à l’eau chaude est généralement appliqué aux bulbes et aux vivaces résistantes. La désinfection du sol peut diminuer la population, mais comme les nématodes des tiges peuvent se trouver jusqu’à 70 cm de profondeur, elle n’est pas efficace aussi profondément ; • Il est facile de ne pas repérer les nématodes des tiges lors d’un échantillonnage classique. Quelques nématodes par litre peuvent causer des dégâts sur des cultures sensibles. Cela signifie que si vous repérez un seul nématode, vous pouvez craindre de voir des dégâts ; • Il n’existe pas de techniques de décontamination du sol, chimiques ou non, qui contrôle suffisamment la population de nématodes des tiges. Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 29 PROPHYLAXIE & PRÉVENTION : TENIR LES NÉMATODES À DISTANCE Outre les méthodes de cultures pour gérer les nématodes, il existe aussi des mesures préventives qui peuvent être retenues. Ce chapitre offre une brève description de chacune. SEMENCES UTILISÉES Même si les semences et jeunes plants sont soumis à des obligations de qualité, ils peuvent être un facteur de risque. Les nématodes ne se retrouvent pas seulement dans le sol adhérent, mais aussi dans le bulbe ou les parties racinaires. Nous recommandons de commander des plantules et des plants auprès d’entreprises dont le matériel est déclaré sain suite à des tests intensifs. De plus, vous devez privilégier les opportunités d’utiliser des semences et plants sans terre, c’est-à-dire qui ont été lavés et séchés. Bien sûr, le lavage ne permet pas de se débarrasser des espèces de nématodes installées dans la plante. Pour s’assurer que du matériel comme les semences de pommes de terre ne soit pas à l’origine d’une contamination, vous devez examiner la livraison minutieusement. Prêtez surtout attention aux nématodes à galles (Meloidogyne chitwoodii et Meloidogyne fallax), à ceux provoquant la nécrose annulaire et à ceux des tiges. Regardez particulièrement les nodules sur le tubercule. Les plants peuvent cependant être infectés même sans nodule visible. Si vous pelez une fine couche de peau, vous pouvez révéler des agglomérats d’œufs de nématodes à galles. Couper un tubercule en deux peut vous permettre de clarifier si le tubercule contient le virus du Rattle du tabac. En cas de doute, une PCR (Polymorphism Chain Reaction) vous permettra de confirmer si les tâches sont dues au virus. Lors d’une infection par des nématodes des tiges, les tubercules présentent des tâches en creux (facilement confondues avec les pourritures sèches causées par Fusarium) qui peuvent pénétrer profondément dans le bulbe. PROPHYLAXIE DE L’EXPLOITATION La question de l’hygiène à la ferme est épineuse. Même si tous les multiplicateurs de semences de pommes de terre savent que Globodera pallida entrave la commercialisation, les récolteuses à betteraves des entrepreneurs agricoles contenant plusieurs kilos de terre sont couramment utilisées dans leur exploitation. Pourtant chaque kilo peut introduire 2 000 kystes contenant chacun 200 œufs de Globodera pallida, et pourrait être responsable de l’arrêt de la production de semences sur cette parcelle. Le simple fait de ne pas autoriser le passage d’engins sur ces terres avant qu’ils n’aient été correctement nettoyés permet de réduire significativement l’introduction de nématodes pathogènes pour les plantes. Il existe des exemples désastreux de cas où l’introduction de sol, utilisé par exemple pour niveler le terrain, a introduit maladies et infestations. MAÎTRISE DES MAUVAISES HERBES Les nématodes peuvent se reproduire et se multiplier autant sur les adventices que sur les cultures. Des études ont montrées qu’un pied de morelle noire dont le poids racinaire est de 20 grammes peut héberger plus de 164 000 Meloidogyne chitwoodi au bout de seulement 8 semaines. La reproduction d’une espèce de nématode dans les mauvaises herbes dépend du type d’adventice, de la période de végétation, de la durée de croissance et du développement racinaire. Les effets d’une séquence de cultures bien pensée dans laquelle une culture non multiplicatrice précède une 30 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale culture sensible, en termes de dégâts, peuvent être détruits par la présence d’une espèce adventice dans laquelle les nématodes peuvent se reproduire. Un exemple bien connu : les dégâts causés par les nématodes à galles du Nord (Meloidogyne hapla) dans les cultures de carottes, implantées après une culture de céréales dont la variété est considérée comme non hôte. Les adventices à feuilles larges en céréales sont souvent à l’origine des multiplications. Même les repousses sauvages de cultures peuvent anéantir les effets d’une rotation correcte ou d’engrais vert. Les adventices ne constituent pas seulement une source de nourriture mais aussi une source de virus pour ceux transmis par certaines espèces de nématodes (espèces de Trichodorides, Longidorus, Xiphinema). Le virus du Rattle du tabac, dont les vecteurs sont les nématodes Trichodoridés se retrouve abondamment dans la capselle bourse-à-pasteur, la morelle noire, le mouron des oiseaux, etc. De plus, ce virus est disséminé plus loin encore par les semences d’adventices, et les populations de nématodes saines peuvent alors être contaminées. Une mauvaise gestion des adventices peut aussi être responsable de la transmission de maladies virales : virus du brunissement du tabac sur pommes de terre, du virus du Rattle sur tulipes, etc. Quelques études précieuses ont été réalisées sur le statut de plantes hôtes de différentes adventices pour les espèces majeures de nématodes. L’expérience nous dit cependant de maitriser efficacement toutes les mauvaises herbes au bon moment ! La mortalité hivernale est une part importante de la diminution de population de nématodes. Les mauvaises herbes présentes sur des sols non cultivés et qui ne sont pas en jachère totale durant l’hiver assurent une meilleure survie des nématodes en sortie d’hiver qu’en terre en jachère totale. Le cycle des nématodes dure 4 à 8 semaines en fonction de la température du sol et du taux de croissance de la culture. Pour supprimer ou prévenir la reproduction des nématodes (Meloidogyne spp.), il faudrait éliminer les mauvaises herbes toutes les 4 semaines. Les nématodes libres comme les espèces de Trichodoridés et les nématodes des lésions des racines perforent les racines depuis l’extérieur ou quittent les plants morts pour chercher un nouveau plant hôte. C’est pour cette raison que la maîtrise des mauvaises herbes ne permet pas de les supprimer totalement. Les adventices meurent lentement après un désherbage mécanique, ce qui sous-entend que les nématodes peuvent survivre pendant une période plus longue. Les adventices de plus petite taille meurent plus rapidement. La maitrise des mauvaises herbes est cependant incontournable. SURVEILLANCE DES CULTURES ET DIAGNOSTICS Si vous cherchez bien, vous pouvez trouver de nombreuses informations sur les nématodes dans les champs. Les infestations locales de nématodes sont faciles à repérer, surtout au moment du développement initial et lorsque la végétation se développe rapidement. Souvent le retard de croissance n’est visible que temporairement, et les signes sont souvent attribués à des problèmes structuraux, surtout si la surface concernée par un retard de croissance est limitée au début de l’infection et que les plantes reprennent une pleine croissance après deux semaines. En tenant compte de ces petites zones, vous pouvez éviter des centaines de mètres carrés problématiques dans les cultures l’année suivante. Des contrôles réguliers de la croissance racinaire en bêchant autour de la plante informent précocement quant aux problèmes qui pourraient apparaître en surface. Les fentes dans les racines pivot, le développement anarchique de la pilosité racinaire, les nodules, les kystes, et les zones de pourriture racinaires sont autant de signes d’une attaque de nématodes. La bêche est indispensable. Le simple fait de déterrer une plante va impacter les racines et tous les signes d’infection par les nématodes vont disparaître. Ils vont rester dans le sol et vous ne verrez aucun symptôme ! Il est recommandé d’utiliser le diagramme ci-après par étape, pour un diagnostic terrain, Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 31 ÉTAPE 1 Rechercher les zones à faible croissance du début de croissance jusqu’à la fermeture de la canopée (mai à juillet). La forme de ces zones nues peut vous en dire beaucoup sur le type d’infection. Faible croissance sur toute la surface : Indique une infection de nématodes à galles ou une infestation importante de nématodes des lésions des racines. Des foyers de terre visibles à formes régulières : Indique une infestation précoce de nématode à kystes ou une infestation de nématodes des lésions des racines. Des foyers de formes irrégulières avec des plantes faibles et des plantes normales : Indique la présence d’espèces de Trichodoridés. 32 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale ÉTAPE 2 Utilisez une bêche pour prélever un plant entier du sol, en incluant les racines, retirez soigneusement la terre adhérente avec de l’eau et évaluez les dégâts autant sur les parties racinaires que aériennes. Vous allez voir… … des déformations foliaires, vrilles, épaississements, une croissance des parties aériennes faible et désordonnée ? Reportez-vous à A. … des kystes aussi gros que des têtes d’épingles ? Reportez-vous à B. … des nodules ? Reportez-vous à C. … des lésions, des zones pourries ? Reportez-vous à D. … des racines ramifiées sans kystes, ni nodules, ni lésions ? Reportez-vous à E. Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 33 ÉTAPE 3 Utilisez les images et les symptômes décrits ci-dessous pour déterminer à quel nématode vous avez à faire. A. NÉMATODE DES TIGES (DITYLENCHUS) Symptômes Plantes hôtes Sur oignons, les feuilles restent petites et courtes et certaines plantes peuvent mourir. Sur pommes de terre, la croissance est retardée avec des possibilités de malformation des feuilles, des tiges creuses et des pétioles épaissis. Très variées. Pommes de terre, maïs, betteraves, oignons et tulipes sont sensibles aux dégâts. Blés et chicorées sont des plantes hôtes pauvres. En cas d’infection à faible échelle en oignons, arracher la plante et placer la dans un sac clos. B. NÉMATODES À KYSTES SUR POMMES DE TERRE (GLOBODERA ROSTOCHIENSIS ET GLOBODERA PALLIDA) Symptômes Plantes hôtes Des foyers de forme ovale à croissance retardée ; les cultures se développent ensemble plus tardivement. Seul G. rostochiensis comporte un stade jaune ; G. pallida passe directement du blanc au brun. Les kystes sont de forme ronde, visibles à partir de la fin juin. Pommes de terre. 34 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale B. NÉMATODES À KYSTE SUR BETTERAVES Nématode à kyste blanc de la betterave (sol argileux et sableux). Nématode à kyste jaune de la betterave (sol sableux) ; Couleur pas toujours visible (une loupe est parfois nécessaire). Symptômes Développement de pilosité racinaire Les kystes ont une forme de citron. Plantes hôtes Betteraves, épinards, choux et légumineuses (seulement nématode à kyste jaune). Les plantes flétrissent et meurent durant la phase de croissance initiale et les betteraves entrent en «dormance» plus tard dans la saison. C. NÉMATODE À GALLES DU NORD (MELOIDOGYNE HAPLA) Symptômes Plantes hôtes Les racines se ramifient au niveau des nodules créant des formes d’araignées et, de ce fait, un système racinaire buissonnant. Les racines pivotantes sont ramifiées. Apparaissent en sols sableux et tourbeux. Espèces à feuilles larges (pas sur graminées, céréales et maïs). Très dommageable sur carottes, salsifis noirs, chicorées et betteraves. Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 35 C. MELOIDOGYNE CHITWOODI ET MELOIDOGYNE FALLAX Symptômes Plantes hôtes Nodules striés sans racine ramifiée. Formation de galles sur les racines à pivot et sur les tubercules de pommes de terre. Apparaissent en sols sableux et tourbeux autant qu’en sol argileux léger avec un taux d’argile de moins de 20 %. Très variées : Pommes de terre, betteraves, carottes, salsifis et pois sont très sensibles aux dégâts. L’infection est transmise par les jeunes plants et les plantules. Évitez le Ray-Grass italien, le Ray-Grass anglais surtout pour M. fallax. D. NÉMATODES DES LÉSIONS DES RACINES (PRATYLENCHUS) P. penetrans cause les dégâts les plus importants. P. crenatus cause des dégâts sur céréales (à faible pH). P. neglectus se reproduit sur betteraves mais ne cause pas de dégâts. La senescence des plantes induites par Verticillium dahliae est accentuée par les nématodes des lésions des racines. Symptômes Les racines brunissent, en commençant par des stries verticales tout du long. Étranglement de la racine ce qui inhibe la croissance. 36 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale Plantes hôtes Très variées. Betteraves et choux sont des hôtes pauvres. Pommes de terre, carottes et lys sont très sensibles et constituent de bons hôtes. Les légumes sont d’excellentes plantes hôtes. E. LES NÉMATODES TRICHODORUS ET PARATRICHODORUS (TRICHODORIDÉS) Symptômes Ce nématode provoque de dégâts principalement sur les apex racinaires en conditions de printemps froid et humide. Ceci interrompt la croissance (mort de la plante et retard de croissance) et de nouvelles racines sont formées. Ils sont observés dans les sols sableux et argilo-sableux légers. Ils transmettent le virus du Rattle du tabac, ce qui engendre une perte de qualité, des marbrures de la tige, des nécroses annulaires (pomme de terre) et des brunissements (tulipe). Plantes hôtes Très variées. La pomme de terre, la betterave, la chicorée et l’oignon sont particulièrement sensibles. ÉCHANTILLONNAGE Quelle que soit la méthode d’échantillonnage que vous choisissez, il faut toujours utiliser une méthode d’incubation des nématodes pour avoir une vision globale de l’infestation. Ceci garantit que les nématodes contenus dans les racines, ainsi que leurs œufs, sont pris en compte. Ceci est particulièrement important pour les espèces Pratylenchus et Meloidogyne. En fonction de la culture et de la saison, jusqu’à 90 % de ces nématodes peuvent être trouvés dans la fraction organique. De nombreux laboratoires incluent l’incubation dans leurs process standards mais le mieux est encore de le demander pour en être sûr. Échantillonner les zones de faible végétation Si vous rencontrez une zone suspicieuse, nous conseillons de confirmer vos doutes par un double échantillonnage du sol et de la culture. La plupart du temps, vous trouverez plusieurs espèces de nématodes. Une méthode, qui peut vous apporter un bon nombre d’informations, consiste à prélever un échantillon (sol et racine) dans la zone périphérique du foyer de faible végétation et un second échantillon juste à l’extérieur de cette zone. La comparaison de ces deux échantillons donne une idée des nématodes responsables du retard de croissance. Pendant la période de végétation, procéder à une analyse de sol peut parfois ne révéler aucun Trichodoridé même lorsque la culture présente les symptômes caractéristiques d’une infestation de Trichodoridés. Ceci est souvent dû au fait que les nématodes ne sont pas présents dans la partie supérieure des sols au moment de l’échantillonnage. Un échantillonnage spécifique pour ces nématodes est plus approprié entre novembre et février. Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 37 Échantillonnage de sol Les mois d’hiver sont favorables à l’échantillonnage dans les zones où le type d’infestation n’est pas encore connu. Pour des raisons économiques, il est souvent préféré de prélever des échantillons mixtes d’une zone donnée. C’est une bonne chose de garder en tête que le sol échantillonné est le sol que vous avez besoin de traiter. Echantillonner en bande une zone plus étendue vous permet de cultiver une autre variété ou une autre culture uniquement sur la bande infestée par exemple. Un échantillonnage en bande est préférable à un échantillonnage en bloc car l’infestation se propage dans le sens du travail du sol et il est plus pratique de cultiver une autre variété ou culture sur cette bande que d’avoir à le faire dans des blocs dans différentes parties de la parcelle. La taille optimale de l’échantillon est une bande de 1/3 d’hectare mais prélevez au minimum 1 échantillon par hectare. En échantillonnant une partie de parcelle à des intervalles réguliers, les résultats sont faciles à comparer dans le temps. Un excellent système de surveillance des nématodes à l’échelle de l’exploitation est d’échantillonner avant que vous n’implantiez les cultures sensibles, par exemple les pommes de terre, autrement dit au moment où vous avez encore une chance de réagir avec succès. Ceci permet d’avoir une vision d’ensemble de toutes les zones de votre exploitation au cours du temps. En fonction du résultat de l’analyse des nématodes, vous pourriez vouloir modifier votre assolement et choisir d’autres variétés à implanter. Les pages suivantes expliquent comment et quand effectuer un échantillonnage de sol. A. COMMENT ET QUEL ÉCHANTILLONNAGE EN PRODUCTIONS VÉGÉTALES ET LÉGUMES D’INDUSTRIE Les six pages suivantes fournissent une vue d’ensemble des différents aspects pris en compte dans un échantillonnage de nématodes. Le plan de gestion intégrée des nématodes indique que, dans le cadre de la gestion de la problématique nématodes, il est important de savoir ce qui vit dans vos parcelles et ce qu’il arrive à vos sols et vos cultures. C’est pourquoi nous abordons les principales problématiques et présentons les informations importantes pour vous aider à prendre des décisions d’échantillonnage quant à la présence ou non de nématodes. 38 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale B.POURQUOI EFFECTUER UN ÉCHANTILLONNAGE DE SOL, DE NÉMATODES OU DE CULTURE ? Chaque exploitation qui cultive des végétaux a des nématodes dans ses sols. Vous pourriez ne pas en remarquer tout de suite l’effet sur votre productivité, de sorte que vous attendez souvent l’apparition des dégâts. Les dégâts des nématodes se cumulent alors rapidement. Pensez à des situations comme : • Les refus, parce que l’entreprise de transformation ne veut plus de votre production. Les raisons peuvent en être : racines branchues et nodules sur les pommes de terre notamment ; • Les pertes de rendement, car il y a des zones de faible végétation sur pommes de terre et betteraves sucrières (rendement réduit en sucres) ; • Les pertes de qualité : nécroses annulaires sur pommes de terre et déformation des racines ou de la plante ; • Les pertes économiques : les parcelles où les nématodes à kyste sont observés sont déclarées « en gestion de foyers » et placées sous restrictions de quarantaine ; • Les restrictions à l’export : les dégâts peuvent se traduire par un refus partiel, c’est-à-dire un prix revu à la baisse ou un refus de la marchandise. Les dégâts financiers peuvent atteindre 3 000 € par hectare. Le nématode à kyste blanc de la betterave est, en dehors du nématode à kyste de la pomme de terre, le plus connu des nématodes. Mais qu’en est-il des autres nématodes ? En analysant votre sol ou votre culture, vous apprendrez : - quels types de nématodes sont présents, - en quelles quantités, - quels dégâts vous pouvez en attendre. Un exemple Plus de 10 kystes blancs sont observés sur betterave sucrière. Chaque kyste peut contenir 300 œufs et larves. Les dégâts sont possibles si une analyse de sol révèle qu’il y a 150 œufs et larves pour 100 ml de sol. Imaginez qu’un agriculteur ait une infestation à hauteur de 500 œufs et larves de nématode à kyste blanc de la betterave sur une parcelle donnée – les pertes peuvent alors rapidement atteindre 1 100 kg de sucre par hectare. Ce qui signifie une perte de revenu de l’ordre de 200 € par hectare. Cependant : des mesures permettant d’éviter ou de limiter les dégâts sont disponibles. Les nématodes à kystes de betterave : un problème en développement Des études menées en Hollande ont montrées que 40 % (34 000 ha) de la surface de betterave à sucre hollandaises est infectée par les nématodes à kystes blancs de la betterave. Parmi elles, 11 % sont infectées avec plus de 300 œufs et larves par 100 ml de sol. Et de ces 34 000 ha, 9 100 ha souffrent de dommages et problèmes aigus. Cela représente une perte économique de 1,8 millions d’euros. Une analyse de sol apporte : • Des connaissances sur quels nématodes se trouvent dans le sol ; • Le nombre de nématodes pour chaque espèce ; • Les dégâts attendus ; • Une alerte quant aux actions qui sont nécessaires à mettre en œuvre. Utilisez l’évaluation des cultures lorsque vous observez des symptômes de dégâts de nématodes pendant la culture. Elle indique : • Quel nématode est à l’origine du dégât ; • La confirmation du diagnostic terrain. Historique de la parcelle Chaque parcelle a son historique cultural. Si différentes espèces de cultures ou variétés de pomme de terre sont cultivées sur une partie de la parcelle, il est conseillé de faire des prélèvements séparés pour ces zones ayant des historiques différents. Un échantillon moyen de la parcelle entière ne donne pas une information utilisable ; le résultat du niveau d’infection par les nématodes risquerait d’être modifié. Kyste blanc sur un système racinaire d’adventice C. PRÉLÈVEMENTS DE SOL, DE CULTURES ET DE RÉSIDUS DE RACINE Les cultures et le sol peuvent être analysés ensemble : • L’analyse du sol sert à déterminer les infections de nématodes ; • L’évaluation des cultures (culture + terre adhérente) servent à déterminer quels nématodes s’attaquent à une culture en particulier. Les deux évaluations vous permettent de décider, si besoin, des actions à mener. Le prélèvement est un outil important de la gestion des problèmes liés aux nématodes Effectuer une analyse de sol avant l’implantation d’une culture sensible aux nématodes est une action très appropriée, car le risque potentiel de dégât est élevé. Le meilleur moment pour effectuer les prélèvements est indiqué dans la partie suivante. Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 39 D. QUEL TYPE D’ÉVALUATION POUR QUEL TYPE DE NÉMATODE Des exemples de différents types d’évaluations pour plusieurs espèces de nématodes, et leurs résultats sont présentés ci-dessous. Nématode à kyste de la pomme de terre Évaluation Ce que l’évaluation apporte Quantité de sol Profondeur du sondage Nombre de sondages/ha Officielle • Évaluation par les autorités PRN 1 500 ml/ha 5 cm 180 Évaluation PRN • Prouver ou réfuter la présence du nématode à kyste à pomme de terre • Découverte de foyers pour une gestion géo-orientée PRN-I 50 : 15 l/ha 5 cm 300 à 360 • Mesure de l’effet de la gestion des nématodes PRN-I 100 : 7,2 l/ha 5 cm • Demande de la détermination des espèces G. rostochiensis / G. pallida PRN-I 150 : 4,8 l/ha 5 cm PRN-I 225 : 3,6 l/ha 5 cm • Demande de la détermination des espèces de G. rostochiensis / G. pallida Évaluation volontaire PRN. Méthodes intensives du PRN de PNR-I 50 jusqu’à PRN-I 225 sont disponibles. La probabilité de piéger quelque chose est la plus élevée avec PRN-I 50 Nématode à kyste de la betterave Évaluation Ce que l’évaluation apporte Quantité de sol Profondeur du sondage Nombre de sondages/ha 1 prélèvement par ha • Détection de la présence de nématodes 1 200 ml/ha 25 cm 60 • Nombre de nématodes pour mesurer les résultats des actions de gestion des nématodes • Détermination des espèces : jaune ou blanc 40 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale Nématodes libres Évaluation Ce que l’évaluation apporte Quantité de sol Profondeur du sondage Nombre de sondages/ha 1 prélèvement par ha • Détection de la présence de nématodes 1 200 ml/ha 25 cm 60 • Nombre de nématodes phytopathogènes • Détermination de l’espèce • Dégâts attendus/non attendus sur les cultures La recherche des nématodes libres couvre de nombreuses espèces, comprenant : • Les Trichodoridés, en particulier Trichodorus similis, T. primitivus, Paratrichodorus teres et P. pachydermus (tous provoquent des stries de croissance, des malformations, une faible croissance initiale et une perte de rendement, et transmettent la nécrose annulaire et le virus du Rattle du tabac). • Les espèces de Meloidogyne , en particulier M. hapla, M. chitwoodi et M. fallax (perte de qualité et de rendement en culture, nodules sur racine). • Les espèces de Pratylenchus, surtout P. penetrans, P. crenatus et P. neglectus (perte de qualité et de rendement). Kystes jaunes de pomme de terre sur racine de pomme de terre Meloidogyne hapla provoque des nodules Dégats de Trichodorus sur carottes Racines fourchues provoquées par Trichodorus Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 41 E. TECHNIQUES D’INCUBATION : À CHAQUE FOIS ! Nous recommandons de toujours analyser vos échantillons de nématodes libres en utilisant la technique d’incubation. L’incubation permet également de déterminer le nombre d’œufs et de larves dans la matière organique et dans les résidus de culture et de racine en particulier. Cela s’applique aux nématodes qui se retrouvent dans les racines de plantes, tels que les nématodes à galles et les nématodes à lésions des racines. L’incubation est indispensable pour les évaluations de nématodes Trichodoridés, car ces nématodes ne se retrouvent pas dans les résidus de culture et de racine. L’incubation augmente la fiabilité des résultats des prélèvements des nématodes libres. Mener une évaluation au bon moment est très important, car il faut attendre 2 à 4 semaines supplémentaires pour obtenir les résultats. Remarque : chaque laboratoire n’applique pas la technique d’incubation comme méthode standard, informez-vous afin d’en être certain ! F. PÉRIODE DE PRÉLÈVEMENT DES NÉMATODES Le meilleur moment pour prélever les nématodes dépend de nombreux facteurs (date de récolte, culture, taux d’humidité, etc.). De plus, l’objectif de l’échantillonnage est important pour prouver la présence d’espèces de nématodes dommageables ou pour estimer le risque potentiel de dégâts sur les cultures suivantes. Le tableau suivant indique la meilleure période pour prélever un échantillon pour chaque espèce afin de : • Prouver la présence d’espèces dommageables de nématodes (= la plus grande probabilité de capture et/ou de détection) ; • Estimer le dégât sur la culture suivante. La meilleure période pour prélever Espèces de nématodes Plus grande probabilité de capture et /ou de détection Estimation de dégât sur culture suivante Nématode à kyste de pomme de terre Tout de suite après la récolte Octobre - Mars pour la récolte de pomme de terre Nématode à kyste de betterave N/A Octobre - Mars pour la récolte de cultures sensibles Meloidogyne chitwoodi/M. fallax Immédiatement après une culture qui favorise fortement la multiplication des nématodes Décembre - Mars pour l’implantation de cultures sensibles Meloidogyne hapla Immédiatement après la récolte de pommes de terre, betteraves, ou autres cultures qui favorisent fortement la multiplication des nématodes Décembre - Mars pour l’implantation de cultures sensibles Pratylenchus penetrans N/A Décembre - Mars pour l’implantation de cultures sensibles Paratrichodorus teres Novembre (en conditions fraiches et humides) (en conditions fraiches et humides) Autres Trichodoridés Novembre - Mars (en conditions fraiches et humides) Novembre- Mars (en conditions fraiches et humides) Remarque : Les populations de nématodes sont influencées par les conditions météorologiques pendant la période hivernale. Les populations de Meloidogyne spp., et dans une moindre mesure de Pratylenchus penetrans peuvent chuter rapidement dans des conditions hivernales moyennes. Lors de l’utilisation d’engrais verts ou de céréales d’hiver par exemple, la population peut croitre durant l’hiver. L’information indiquant quels nématodes peuvent se reproduire sur les engrais verts ou cultures se trouve dans le tableau des plantes hôtes de nématodes. 42 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale G.CE QUI IMPORTE SI VOUS FAITES VOS PROPRES PRÉLÈVEMENTS Si vous prélevez un échantillon de sol… Vous ne pouvez pas prendre vos propres échantillons pour des inspections ou évaluations officielles. Si vous prélevez vos propres échantillons, assurez-vous de les prélever correctement, en suivant rigoureusement les recommandations ci-dessous. • Conservez l’échantillon au frais et à l’obscurité (4°C), jusqu’à son envoi ; • Manipulez l’échantillon avec précaution ; • Nématode à kyste de pomme de terre : 1 échantillon par variété cultivée - minimum 180 sondages/ha ; profondeur de sondage minimum. 0 - 5 cm, - volume de prélèvement : minimum de 600 ml/ha, - prélèvement sur: 5 à 11 m de largeur, - prélèvements réguliers en suivant un motif en grille : par exemple 7,5 m x 7,5 m ou 11 m x 5 m, - diamètre de sondage : +/- 13 mm, - se déplacer dans le sens de la culture. • Nématode à kyste de la betterave : 1 échantillon/ha - 60 sondages/ha ; profondeur de sondage de 25 cm, - volume de prélèvement : 1200 ml/ha, - prélèvement sur 11 m maximum de largeur, - prélèvements réguliers en suivant un motif en grille de 11 m x 15 m, - diamètre de sondage : +/-13 mm, - se déplacer dans le sens de la culture. Remarque : Si vous ne prélevez pas vos échantillons avec ces règles, le résultat risque de ne pas refléter la réelle infestation dans les parcelles échantillonnées. • Nématode libres : 1 échantillon/ha ou sur la partie de parcelle impactée ou la plus suspectée d’être infectée (bancs de sable). Pour les Trichodoridés, prélevez en sol humide. - 60 sondages/ha ; profondeur de sondage de 25 cm, - volume de prélèvement : 1200 ml/ha, - prélèvement sur 11 m maximum de largeur, - prélèvements réguliers en suivant un motif en grille de 11 m x 15 m, - diamètre de sondage : 13 mm (plus important pour les Trichodoridés), - se déplacer dans le sens de la culture. • Nématodes à galles : 1 échantillon/ha ou sur la partie de parcelle impactée ou la plus suspectée d’être infectée (bancs de sable). - 60 sondages/ha ; profondeur de sondage de 25 cm, - volume de prélèvement : 1200 ml/ha, - prélèvement sur 11 m maximum de largeur, - prélèvements réguliers en suivant un motif en grille de 11 m x 15 m, - diamètre de sondage : 13 mm, - se déplacer dans le sens de la culture. Si vous prélevez sur plusieurs hectares, la fiabilité des résultats va diminuer, assurez-vous donc de prendre plus d’échantillons dans les grandes parcelles. Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 43 Lorsque vous prélevez un échantillon de plantes… • Utilisez votre bêche pour déterrer 3 plantes : 1. à l’extrémité d’une zone à faible croissance, 2. dans une zone de faible croissance, 3. à n’importe quel endroit dans une zone normale. • Laissez une quantité suffisante de terre adhérente sur la plante (suffisamment pour remplir un sac en plastique, entre 1 et 1,5 litres de terre). Si le sol est sec, retirer les premiers 5 cm de terre ; • Placez la plante et le sol précautionneusement de sorte que la motte de terre reste intacte. Fermez bien le sac afin d’éviter le desséchement ; 44 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale • Transportez l’échantillon dans une boite isotherme, équipée de packs congélation. Mettez du carton entre l’échantillon et les packs congélation ; • Étiquetez les échantillons avec : - la date et localisation du prélèvement, - la culture, - cause suspectée et description des symptômes, - nom et adresse du préleveur et/ou du producteur. • Déposez ou envoyez l’échantillon à un laboratoire et leur faire rechercher les nématodes dans le sol et sur les racines. TYPE DE SOL En général, beaucoup d’espèces de nématodes se développent dans des sols légers. On trouve beaucoup plus d’espèces de nématodes dans des sols sableux et tourbeux que dans des sols argileux ou sablo-limoneux. Les nématodes que l’on trouve principalement dans des sols lourds argileux sont les nématodes à kystes (Heterodera spp. et Globodera spp.), les nématodes du pin (Paratylenchus bukowinensis), les nématodes des tiges (Ditylenchus dipsaci) et les nématodes Ditylenchus destructor à l’origine de la maladie vermiculaire de la pomme de terre. Les sols légers sablo-argileux contiennent plutôt des nématodes libres (Trichodorus spp. et Paratrichodorus spp.) et des nématodes à galles des céréales (Meloidogyne naasi). Les sols limoneux sont connus pour contenir des nématodes à kyste de la betterave. En dehors de ces éléments, nous n’avons que peu d’informations sur la relation entre les nématodes et les sols limoneux. Les sols moins lourds contiennent également d’autres nématodes à galles Meloidogyne hapla, Meloidogyne chitwoodi, Meloidogyne fallax et Meloidogyne minor. Les nématodes à lésions des racines (Pratylenchus spp.) sont également assez communs dans les sols légers. Des exploitations ayant des sols hétérogènes peuvent trouver un intérêt à cartographier les zones à risque potentiel. Le tableau des plantes hôtes de nématodes montre exactement quel type de sol est favorable à quelles espèces de nématodes. Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 45 RAISONNER ENTRE GÉRER ET CONTRÔLER LES NÉMATODES Ce chapitre décrit plus en détail la gestion intégrée des nématodes. SÉLECTION DES VARIÉTÉS La liste des variétés recommandées indique la résistance de ces variétés aux nématodes. Si vous choisissez une variété résistante, les nématodes seront attirés par la culture mais ne pourront pas s’y reproduire. Leur population sera alors réduite de manière significative à la fin de la période de végétation. ENGRAIS VERTS Cette section fournit un bref résumé des différents choix que vous pouvez faire pour se prémunir contre les nématodes. Cultiver un engrais vert a de nombreux effets positifs sur le sol. Un engrais vert offre une protection contre les conséquences défavorables de l’érosion (érosion éolienne et hydraulique, imperméabilisation et lessivage) et est très favorable à une meilleure teneur en matière organique du sol. Cependant, beaucoup d’engrais verts offrent malheureusement également de bonnes conditions pour la reproduction des espèces de nématodes après la fin de la culture principale. Beaucoup d’espèces de nématodes meurent durant la période de terre nue. Mais cette période de terre nue est raccourcie par la mise en place d’un engrais vert. Il sera donc nécessaire de faire un choix clair parmi les engrais verts disponibles. Cette décision dépend des espèces de nématodes présentes et du niveau d’infestation. Dans certaines situations, en particulier si plusieurs espèces sont observées et si une jachère n’est pas possible, le choix le plus judicieux est de laisser le chaume de céréales désherbée, ou de mettre en place une culture courte (6 semaines maximum) de seigle ou de radis fourrager. Jusque récemment, la seule information disponible sur les nématodes Trichodoridés concernait Paratrichodorus teres. Les recherches de ces dernières années ont démontré que les nématodes Trichodoridés ne peuvent être regroupés dans une même catégorie. Cela ne facilite pas le choix de l’engrais vert. Si le nématode Paratrichodorus teres pose des problèmes potentiels pour la saison à venir, vos choix se limitent au radis fourrager 46 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale ou à la moutarde jaune. Ces nématodes ont en effet une capacité de reproduction nulle ou limitée dans ces cultures. Si le virus du Rattle du tabac (transmis par ces nématodes) peut affecter la qualité de la culture, choisissez le radis fourrager, car il combat ce virus. Nous savons que Paratrichodorus pachydermus se reproduit plus facilement sur radis fourrager que Paratrichodorus teres. Le radis fourrager est en réalité un bon hôte pour le nématode Trichodorus primitivus. En contrepartie, le radis fourrager diminue tout de même le niveau d’infection du virus du Rattle du tabac. Dans le cas de Meloidogyne spp., en particulier dans le cas d’une infection par Meloidogyne hapla, vous pouvez choisir une graminée ou du seigle. Dans le cas d’une infection par Meloidogyne chitwoodi ou Meloidogyne fallax, le radis fourrager ou la jachère noire est le choix le plus prudent. Pour une plante sensible telle que la pomme de terre, la carotte ou le scorsonère, la reproduction de n’importe quel nématode accroit le risque d’un échec de culture. Dans le cas de Pratylenchus, la méthode idéale est moins facile à trouver. Tagètes patula est le seul engrais vert pour ce nématode, ayant un effet pendant un an, mais il doit être semé au plus tard fin juin pour espérer obtenir un effet maximal. Avena strigosa (avoine rude) a des variétés résistantes à Pratylenchus penetrans. Sauf dans le cas d’Avena strigosa, laisser la terre nue est préférable à la mise en place d’un engrais vert lorsque le niveau d’infestation est élevé, car les engrais verts communs favorisent la multiplication des nématodes. Si un engrais vert est nécessaire, dans ce cas le Ray-Grass anglais ou la folle avoine est le meilleur choix. Le Ray-Grass anglais doit être semé avant août. Si la parcelle contient une combinaison de (Para) Trichodorus et de Pratylenchus, tout est plus compliqué. Tout d’abord, il est important de connaitre quelle culture vous allez implanter, et quels nématodes peuvent l’attaquer. Il est primordial de s'assurer que les espèces de nématodes nuisibles n'ont que peu de probabilité de s'y multiplier. Ainsi, pour chaque engrais vert envisageable, cela peut conduire à une multiplication potentielle d’un nématode phytopathogène. Il est alors essentiel de garder le sol nu à l’aide de moyens mécaniques ou chimiques. Suite aux questions posées sur le terrain, l'institut hollandais «for Rational Sugar Production» (Roozendaal Netherlands) a mené des travaux sur la multiplication des nématodes à kyste jaune de la betterave en cas de culture d’engrais verts. Cette étude a montré : • Multiplication importante : betterave, chou, colza, les variétés « sensibles » Siletta Nova de radis fourrager et Gisilba de moutarde jaune. Cela signifie que l’utilisation de ces engrais verts favorise fortement l’infestation et peut entrainer des pertes de rendement en betterave ; • Multiplication moyenne : trèfle de Perse ; • Faible multiplication : trèfle d’Alexandrie ; • Aucune multiplication et une baisse de 80 % possible pour Corporal et Terranova (variétés de radis fourrager « résistant »), et les variétés de moutarde jaune Achilles et Abraham. On ne sait pas si une variété dite «BCA» qui est résistante aux nématodes à kyste blanc de la betterave est automatiquement résistante aux nématodes à kyste jaune de la betterave. C’est cependant le cas pour les variétés résistantes mentionnées ci-avant de radis fourrager et moutarde jaune. Chaque variété d’engrais verts va multiplier de manière différente les nématodes. La résistance génétique des engrais verts et les taux observés de réduction de la population de nématodes dépendent de la période de culture. Lorsque les graines sont semées avant la mi-juillet, on appelle cela une « jachère d’été ou estivale », l’engrais vert se développe librement et totalement et attire plus de nématodes que lors des « jachères d’automne ». Résistance des engrais verts pour une «jachère estivale» Type d’engrais vert Type de nématodes Niveau de reproduction des nématodes Radis fourrager Meloidogyne chitwoodi Pas de reproduction Meloidogyne fallax Pas de reproduction Nématode à kyste blanc de la betterave Diminution importante Nématode à kyste blanc de la betterave Diminution importante Nématode à kyste jaune de la betterave Diminution importante Tagètes patula Pratylenchus penetrans Diminution importante Ray-Grass anglais Pratylenchus penetrans Reproduction très limitée Moutarde jaune Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 47 Résistance des engrais verts pour une « jachère automnale » Type d’engrais vert Type de nématodes Radis fourrager Meloidogyne chitwoodi Pas de reproduction Meloidogyne fallax Pas de reproduction Nématode à kyste blanc de la betterave Diminution importante 0 à 35 % Nématode à kyste jaune de la betterave Diminution importante 0 à 35 % Nématode à kyste blanc de la betterave Diminution importante Nématode à kyste jaune de la betterave Diminution importante Avena strigosa Pratylenchus penetrans Diminution importante Ray-Grass anglais Pratylenchus penetrans Reproduction très limitée Moutarde jaune Niveau de reproduction des nématodes ACTIONS SUPPLÉMENTAIRES LUTTE CHIMIQUE Les produits de protection des cultures qui paralysent, ou tuent, les nématodes sont communément connus sous le nom de « nématicides ». Les nématicides fumigants ont des pressions de vapeur élevées et diffusent rapidement en phase vapeur à travers le sol via ses pores. Ce groupe de nématicides potentiels tue les nématodes par sa diffusion dans la pellicule d’eau qui entoure les nématodes. Les nématicides fumigants communément utilisés sont peu sélectifs pour les plantes, spécialement pour leur système racinaire et sont donc appliqués sur le sol bien avant l’implantation de la culture. Le planning d’application en vigueur et l’intervalle minimum avant l’implantation de la culture varient selon le produit utilisé et la température du sol durant l’application. Les applications de fumigants sont connues pour désinfecter les sols (remise à zéro) et ont donc un impact important sur la diversité microbienne de celui-ci. Plusieurs nématicides non-fumigants ont été développés et sont largement utilisés pour lutter contre les nématodes phytopathogènes. Les nématicides non fumigants les plus couramment utilisés appartiennent au groupe des organophosphorés et des carbamates. Stricto sensu ces produits devraient être qualifiés de « nématostatiques » car ils affectent le mouvement, le comportement et l’alimentation des nématodes plutôt que de tuer les nématodes. En raison de leur profil tox-ecotox, les nématicides non-fumigants peuvent être appliqués avant, pendant et après l’implan- 48 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale tation de la culture. Certains nématicides non fumigants, notamment les carbamates, sont hautement systémiques et seront transportés dans les racines et les jeunes tiges de la plante en croissance. Appliquer un nématicide sur une parcelle implique des couts supplémentaires et devrait être mis en perspective avec les bénéfices financiers à obtenir. En cultures annuelles, la perte de rendement est souvent associée à des dégâts racinaires des nématodes sur les jeunes plantes en croissance rapide. La protection du système racinaire installé contre le risque d'attaque de nématodes est bien souvent suffisante pour prévenir la perte de rendement et limiter les problèmes de qualité à la récolte. DÉSINFECTION BIOLOGIQUE DU SOL Traitement en anaérobie Lors d’un traitement en anaérobie, 40 tonnes par hectare de matière végétale facilement dégradable (de l'herbe par exemple) sont incorporées uniformément dans l'horizon labouré. Le sol est roulé, humidifié puis recouvert d'un plastique. L'horizon labouré sera sans d'oxygène quelques jours plus tard. Ce traitement en anaérobie doit durer au moins 6 semaines pour être efficace contre les organismes du sol. Le nématode des lésions des racines Pratylenchus penetrans peut être géré grâce à cette technique. Les essais n'ont montré aucune différence d’efficacité entre le traitement anaérobie sous l'eau et celui sous plastique. Inondation L'inondation complète d'une parcelle coupe l'approvisionnement en oxygène et différentes réactions privent le sol de son oxygène. Une inondation de 8 semaines est suffisante pour tuer la plupart des nématodes phytopathogènes comme Pratylenchus penetrans et Meloidogyne spp. Contre les nématodes Trichodorus, l'efficacité n'est certainement pas totale et le risque de virus du Rattle peut encore persister après l’inondation. Cette méthode ne permet pas de gérer le nématode Ditylenchus destructor. Pour un traitement efficace, le sol doit être à 17°C minimum, mais pour les kystes une température de 22°C est meilleure qu’à 17 °C. Le problème concerne essentiellement la terre utilisée pour faire les talus : les nématodes qui y sont localisés ne seront pas impactés et pourront réinfecter la parcelle ensuite. La technique de l'inondation est sélective des champignons et des mauvaises herbes. Cela signifie qu'elle fonctionne sur l'un mais pas sur l'autre. L'inondation a été jugée efficace contre le chardon des champs, les repousses de pommes de terre, le tussilage et le chiendent. Cette technique fonctionne moyennement contre le cresson des champs mais n'affecte pas la prêle, la prêle des champs ou le souchet comestible. La technique de l’inondation fonctionne contre Sclerotinia bulborum, Sclerotinia sclerotiorum (sclérotiniose), le Botritys (pourriture grise), et Rhizoctonia tuliparum (rhyzoctone des bulbes) mais pas contre Stromatinia gladioli (pourriture sèche), Pythium spp. (racines roses), Rhizoctonia solani (rhyzoctone), Sclerotium cepivorum (pourriture blanche) et Fusarium. L’inondation est un bon moyen d’éliminer les kystes dans les terres de stations avant que celles-ci ne soient remportées vers la parcelle. Il faut s’assurer que tout le sol soit sous l'eau dans une fosse étanchéifiée à l’aide d’un plastique et laisser reposer pendant un minimum de 3 mois à une température suffisamment élevée. Laisser ces terres stockées tout l’hiver après égouttage et les épandre à nouveau au printemps est insuffisant car la température est trop basse durant cette période de l’année. Bien que cela n'ait jamais été étudié, on suppose que les nématodes à galles ne peuvent pas survivre à une période d’inondation. Etre certain de bien prendre en compte tous les aspects techniques de l’inondation comme le nivellement et la construction de digues, prévenir leur rupture, le drainage et s’assurer de la disponibilité en eau est indispensable. L'inondation est une technique qui a un coût trop élevé si on l’applique à grande échelle. Biodésinfection La biodésinfection consiste à enfouir des cultures qui contiennent ou vont générer des composés toxiques ensuite. Après avoir été labouré, le sol devra être correctement bâché. Du fait que la grande majorité des travaux de biodésinfection est réalisée sur brassicacées ou genres associés, le concept de biodésinfection est parfois limité à l’utilisation de ces plantes. Cependant, d’autres cultures peuvent être utilisées dans cet objectif. Si le matériel organique utilisé est également recouvert de bâches imperméables aux gaz, cela s’appelle la décontamination biologique des sols. Pour obtenir un bon résultat, le sol doit être à une température suffisamment élevée. Cela signifie que l’on doit appliquer cette méthode durant les mois d’été. « Fermer » le sol avec un revêtement imperméable aux gaz permettra d'augmenter l'effet recherché. Il est aussi important de choisir des cultures adaptées à la biodésinfection qui ne soient pas des plantes hôtes, ou qui soient résistantes aux nématodes que l'on souhaite gérer afin d'éviter d’augmenter leur population contrôlée. Les populations qui ne se seront pas multipliées n'auront pas besoin d'être contrôlées. • Ce mécanisme ne tue pas les agents pathogènes du sol, néanmoins il améliore la santé et la qualité du sol ; • L'innovation dans les engrais verts (production d'espèces adaptées et résistantes) et dans les techniques (dates et types d’enfouissements) permettront d'améliorer l'efficacité de la biodésinfection ; • La biodésinfection actuelle offre peu de bénéfices aux productions végétales étant donné que la méthode est délicate en terme opérationnel et économique. Une mise en œuvre se présente comme leur alternative pour la décontamination des sols hydromorphes dans le cas où la désinfection chimique des sols serait prohibée. Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 49 Cultures pièges Tagètes, une culture piège pour Pratylenchus penetrans L’effet des Tagètes sur les niveaux de population de Pratylenchus penetrans a été rapporté pour la première fois en 1957. L’endoderme de ces plantes produit de l’α-terthienyl, qui peut être transformé en substance toxique pour contrôler les nématodes. Seuls les nématodes qui vont pénétrer dans l’endoderme vont déclencher ce processus de conversion, par conséquent, la culture de Tagètes n’est pas efficace contre tous les nématodes. Il faut surveiller la présence (ou non) des nématodes de type Trichodoridés, leur reproduction sur Tagètes étant incertaine et très variable. Des travaux de recherche indiquent toutefois que la reproduction des Paratrichodorus pachydermus est réduite sur ces cultures. Toutes les espèces de Tagètes ne tuent pas Pratylenchus penetrans. Tagetes minuta et Tagetes erecta sont moins efficaces sur Pratylenchus penetrans que Tagetes patula. L'effet de Tagetes patula sur les niveaux de population de Pratylenchus penetrans dure plus longtemps que celui de la désinfection chimique des sols. Solanum sisymbriifolium, une culture piège pour les nématodes à kystes de la pomme de terre. Une sélection sur leur capacité à attirer le PCN, parmi 90 solanacées ne formant pas de kystes, a révélé que Solanum sisymbriifolium (morelle de Balbis) est une culture prometteuse, car elle combine une bonne capacité à attirer les larves et une résistance complète. Solanum nigrum montre également un effet leurre mais elle a moins de tolérance aux infestations de haut niveau de nématodes à kyste sur pomme de terre. De plus, S. sisymbriifolium est plus résistant au gel de nuit. Des expériences menées en laboratoire et en pots ont montré que S. sisymbriifolium cause un effet leurre de 60 à 80 %. Ce chiffre inclut les morts naturelles qui surviennent lors d’une année sans pomme de terre (variant de 50% l’année suivant la culture de pomme de terre à 30 % les années suivantes). Les tests de plein champ et dans les exploitations la cultivant ont montré que l'effet d’attraction supplémentaire en plus des pertes naturelles ne présente souvent que peu d’intérêt. Il ne faut donc pas implanter de morelle de Balbis en première année après une culture de variété multiplicatrice. 50 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale La morelle de Balbis doit être semée à partir de la mi-mai afin de garantir un développement optimal. Au début sa croissance est lente, et les mauvaises herbes posent souci. Voici les conditions d’implantations à respecter : • La densité doit être suffisante (9 - 10 plants/m2) ; • La plante doit se développer suffisamment au bon moment afin d’attirer des nématodes à kyste et ainsi remplir sa fonction. Pomme de terre, une culture piège pour les nématodes à kyste de la pomme de terre. Une culture de pomme de terre comme culture piège peut permettre d’obtenir les mêmes résultats que la désinfection chimique des sols. Des réductions maximum dans l’horizon supérieur allant de 78 à 92 % ont été mesurées après une période de culture de 37 à 47 jours. Cela inclut les pertes naturelles qui se produisent durant une année sans pomme de terre (variant de 50% la première année après pomme de terre, à 30% les années suivantes). Il ne faut donc pas cultiver de culture piège de pomme de terre la première année après qu’une variété multiplicatrice des nématodes y ait été cultivée l’année précédente. Le piégeage ne peut pas s’effectuer à des températures de sol inférieures à 10°C. L’utilisation du glyphosate est la seule méthode pour éliminer complètement la culture piège avant que la reproduction du nématode ne se déroule. Il faut utiliser une variété résistante de façon à ce qu’aucun problème ne survienne si la culture n’est pas détruite immédiatement. Radis fourrager et moutarde jaune, culture piège des nématodes à kyste de la betterave Le radis fourrager (Raphanus sativus) et la moutarde jaune (Sinapsis alba) peuvent être hôtes des nématodes à kyste de la betterave. La première variété résistante a été décrite en 1981. Toutes les variétés de la liste variétale hollandaise sont résistantes, ce qui laisse penser qu’une réduction de la population de nématodes peut être réalisée par des cultures semées assez précocement. En cas de semis après le 1er août, la période de culture est trop courte pour réduire la population de nématodes. Des avancées ont été réalisées avec la découverte d'une variété de brassicacée oléifère : Eruca sativa spp. oleifera. Cette culture fait l'objet de recherches en Italie car elle combine la production d'huile de moutarde avec un contrôle des nématodes approprié, d’un niveau équivalent à celui obtenu par le radis fourrager et la moutarde jaune. clairement été démontré pour quelques composts particuliers supposés stimuler la vie du sol et par conséquent, supprimer les nématodes phytopathogènes. Compost et autres additifs organiques Une toxine présente dans le compost a également fait l'objet de deux études au champ en grande parcelle pour stimuler la résistance du sol aux nématodes à galles et aux nématodes des lésions des racines. L'une de ces deux études a montré que la toxine de compost augmentait de façon significative la résistance du sol en diminuant le nombre de nématodes présents qui atteignaient la plante. Un autre essai n’a montré aucun effet probant du compost, mais cela pourrait s’expliquer par le fait que cette parcelle avait naturellement un bon niveau de résistance de son sol. Le bénéfice supplémentaire n’a donc pas pu être clairement démontré. En général, la littérature rapporte que les produits organiques ont un effet positif sur la santé du sol et suppriment les maladies bactériennes et cryptogamiques. La recherche sur les utilisations de compost contre les nématodes est une longue histoire. Par exemple, aux Pays-Bas, l’utilisation de différents types de compost contre les nématodes Trichodoridés et le transfert du virus du Rattle du tabac à différentes cultures ont été étudiés. Il s’est avéré que tous les types de compost étudiés étaient en mesure de stopper, pour une certaine partie, la migration des nématodes vers la plante hôte. L’effet suppressif mesuré au champ était généralement moins significatif, probablement parce que la période de protection fournie par le compost était trop courte. L’utilisation d’engrais organique est actuellement recommandée pour lutter contre les Trichodoridés. Des essais en pots ont montré qu’une large gamme de produits organiques est active contre les nématodes. La durée de cet effet est limitée à 2 semaines et la variabilité de cette efficacité est de l’ordre de 50 %. Ces essais et quelques essais au champ ont mis en évidence un lien entre la stimulation de la respiration du sol et la suppression des nématodes. Il apparait qu'un compost mature, très stable a un effet approprié à la fois sur les nématodes et l'aptitude du sol à respirer. Aucun effet positif n'a Le compost ou les autres produits organiques peuvent facilement s’insérer dans les conduites de cultures actuelles. Plusieurs exploitants agricoles utilisent déjà le compost et autres produits pour garder un niveau élevé de matière organique dans le sol, améliorer la structure de celui-ci, et comme engrais alternatifs. On peut donc dire que le compost et autres produits organiques peuvent être utilisés comme composants de l’ensemble des mesures de gestion des nématodes. De plus, selon la bibliographie, le compost serait aussi efficace que les désinfectants chimiques de sols ; les efficacités rapportées sont trop faibles dans le cas où des quantités réalistes de compost sont utilisées. Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 51 INDICATEURS DE DÉGATS DE NÉMATODES INTRODUCTION À LA NOTION DE SEUIL DE DÉGATS Nous souhaiterions être en mesure d'indiquer à quel niveau une espèce donnée peut impacter telle ou telle culture. Malheureusement, ce n'est pas encore d'actualité, on ne connait pas les seuils exacts de nuisibilité car beaucoup d'autres facteurs en plus de la densité de nématodes rentrent en compte. La période de prélèvement des échantillons représente un des facteurs clés. La densité de population peut changer radicalement après prélèvement, de manière très complexe. Ce chapitre va donc traiter de l'évaluation raisonnable du risque de nuisibilité. FACTEURS INFLUENÇANT LA NUISIBILITÉ D'autres facteurs que le nombre de nématodes de différentes espèces sont également discriminants dans l'évaluation des dégâts potentiels. Nous avons identifié et répertorié certains de ces facteurs dans le tableau ci-dessous. Facteurs influençant la nuisibilité des nématodes Facteurs Effets pH Certaines espèces de nématodes provoquent des niveaux de dommages plus importants si le pH n'est pas optimal. Par exemple des niveaux élevés de pH causent plus de dégâts liés aux nématodes des kystes de la pomme de terre et des pH plus faibles entrainent plus de pertes liées aux Trichodoridés sur la betterave sucrière. Le pH joue probablement un rôle important dans la relation culture-nématodes mais nous n'en sommes pas certains. Matière organique Il y a moins de perte de rendement dans un sol avec un taux élevé de matière organique. Humidité La perte de rendement due aux nématodes est généralement plus importante en condition sèche. Et il y a moins de dommages liées aux PCN et Pratylenchus penetrans les années humides. Le risque de pertes liées aux Trichodoridés est plus important lors de printemps humides. Culture Certaines cultures vont être plus sensibles à certains types de nématodes, alors que d’autres ne le seront pas. Ex: La pomme de terre est sensible à Pratylenchus penetrans, à l’inverse de la betterave sucrière. De plus, entre cultures sensibles, on note des différences de niveaux de sensibilité ; par exemple, la carotte est plus impactée par Méloidogyne hapla que la betterave sucrière. Variété Chaque variété a son propre niveau de sensibilité par rapport à certaines espèces de nématodes. Des sensibilités variétales existent entre variétés de pomme de terre pour les nématodes à kystes de la pomme de terre, Pratylenchus penetrans, les trichodoridés et Meloïdogyne chitwoodi. Plusieurs espèces de nématodes Dans de nombreux cas, plusieurs espèces de nématodes sont présentes dans une même parcelle, ce qui augmente le risque de dégâts pour la culture. Autre Les dommages causés par les nématodes peuvent être amplifiés par la présence de certains champignons ou virus phytopathogènes. Ceci vaut aussi pour, une mauvaise structure de sol, ou encore des conditions de fertilisation imparfaites. ÉCHANTILLONNAGES ET INFESTATIONS DE NÉMATODES Un prélèvement ne vaut que pour un instant « T » ; ceci est particulièrement vrai pour le nombre de nématodes que l’on retrouve dans l’échantillon mais l’est beaucoup moins pour les différentes espèces détectées. Une espèce de nématode ne disparait pas complètement mais son nombre peut varier considérablement. Lors de l'échantillonnage 52 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale il est primordial de déterminer l’objectif que l’on se fixe. Si l'on veut savoir combien d’espèces différentes de nématodes sont présentes, le moment idéal pour prélever se situe juste après la récolte, dans les 6 semaines maximum. C'est à cette période-là qu'on a le plus de chance de les capturer. Si l'objectif est de savoir combien de nématodes d'une espèce donnée sont présents, il est alors préférable de prélever au printemps durant le mois de février. Surface échantillonnée : pourquoi prélever un échantillon pour 10 hectares est problématique ? Prélèvement de plantes en cours de culture : à quoi ça sert ? L’infestation des sols par les nématodes n’est jamais répartie uniformément sur une parcelle. Prélever un échantillon tous les 10 ha n’est pas un bon moyen pour évaluer le niveau d’infestation de votre champ. Plus votre prélèverez d’échantillons, plus vous obtiendrez une carte précise des niveaux d’infestation. La surface de terrain échantillonnée détermine la précision et la fiabilité des résultats que vous obtiendrez. Vous devez prélever suffisamment d’échantillons pour mettre en place la bonne action contre les nématodes. En pratique, il est conseillé d’effectuer des prélèvements plus nombreux dans les parcelles où le risque de dégâts sur les cultures est élevé. Prélevez au minimum un échantillon par hectare. Il est important de prélever à un endroit où la croissance végétale est retardée. Il est préférable d'avoir autant de sol et de racines à analyser que possible, afin de déterminer quelles espèces de nématodes sont mises en cause. Les quantités de nématodes ont peu de signification pour évaluer les dommages potentiels pour les cultures suivantes. Il est préférable, dans ces circonstances, de prélever également la parcelle en hiver, cela vous donnera un meilleur aperçu du niveau d'infestation lors de l'implantation. AUGMENTATION DE L’INFESTATION PAR LES NÉMATODES DURANT L’HIVER Prélever un échantillon permet d’avoir une photographie de l’infestation à un moment donné. Le nombre de nématodes peut augmenter ou diminuer après la prise de l’échantillon. Cela dépend de l’espèce de nématodes, de la présence ou non d’un couvert végétal, de la présence de mauvaises herbes, et des conditions climatiques durant l’hiver. En général, les niveaux d’infestation par Pratylenchus spp., Meloidogyne spp., et les Trichodoridés diminuent pendant une période où les sols sont laissés nus avec un climat tempéré et humide. Évolution des niveaux de populations dans le sol à différentes périodes de l'année Période d’échantillonnage Pratylenchus penetrans Meloidogyne hapla Meloidogyne chitwoodi Trichodoridés Août / Septembre Novembre / Décembre Février / Mars Jachère post-récolte, engrais vert résistant ou engrais vert non hôte - 50 % - 30 % - 10 % Enfouissement d’engrais vert après récolte + 50 % + 20 % 0% Jachère post-récolte, engrais vert résistant ou engrais vert non hôte - 80 % - 40 % - 10 % Enfouissement d’engrais vert après récolte + 25 % + 10 % 0% Jachère post-récolte, engrais vert résistant ou engrais vert non hôte - 80 % - 40 % - 10 % Enfouissement d’engrais vert après récolte + 40 % + 10 % 0% Jachère post-récolte 25 % 10 % 0% Enfouissement d’engrais vert après récolte 25 % 0% 0% Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 53 COMBIEN DE NÉMATODES CONTIENT COMMUNÉMENT UN ÉCHANTILLON ? Le niveau d’infestation à partir duquel des dégâts sont causés varie en fonction des espèces de nématodes. Pour avoir une meilleure idée sur le nombre de nématodes que l’on trouve dans un échantillon, veuillez-vous reporter au tableau ci-contre. Ce tableau présente les différentes espèces de nématodes que l’on peut retrouver dans un échantillon de sol. Espèces Densité mini-maxi de population Unité : total (œufs + larves vivantes) Globodera rostochiensis 1-25 000/200 ml sol Globodera pallida 1-15 000/200 ml sol Heterodera spp 1-3 000/100 ml sol Pratylenchus penetrans 1-2 500/100 ml sol Meloidogyne hapla 1-2 000/100 ml soi Meloidogyne chitwoodi 1-3 000/100 ml sol Meloidogyne fallax 1-3 000/100 ml sol Paratrichodorus teres 1-150/100 ml sol Trichodorus primitivus 1-2 000/100 ml sol Trichodorus similus 1-300/100 ml sol Paratrichodorus pachydermus 1-300/100 ml sol POPULATIONS ET SEUILS DE NUISIBILITÉ Nous ne pouvons pas fournir de seuils de nuisibilité par espèce et par culture. Les agriculteurs doivent toutefois utiliser les résultats d'analyse afin de choisir la bonne action à adopter. Le tableau ci-dessous indique à quel niveau de population, exprimé en total (œufs + larves vivantes)/100 g. de sol, les dommages peuvent avoir lieu. Pratylenchus penetrans Meloidogyne hapla Meloidogyne chitwoodi / fallax Trichodoridés Pomme de terre de consommation 100 100 10 10 Semence de pomme de terre 100 100 1 10 Pomme de terre fécule 100 100 - 50 Betterave sucrière - 100 500 150 Carottes 100 100 10 50 Scorsonères 75 5 1 25 Chicorée - 100 50 10 Pois 100 100 10 10 NB : Ces chiffres ici ne sont pas des valeurs absolues, ils servent simplement à titre indicatif. 54 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale PERTES ESTIMÉES Le tableau ci-dessous donne une estimation des dégâts auxquels on peut s'attendre sur une culture touchée. Pratylenchus penetrans Meloidogyne hapla Meloidogyne chitwoodi / fallax Trichodoridés Pomme de terre de consommation 30 - 50 % 30 - 50 % 100 % 20 % Semence de pomme de terre 30 - 50 % 30 - 50 % 100 % 30 % Pomme de terre fécule 30 - 50 % 30 - 50 % 5% 20 % Betterave sucrière 0% 30 - 50 % 10 % 20 % Carottes 100 % 100 % 100 % 100 % Scorsonères 100 % 100 % 100 % 13 - 33 % Chicorée 0% 30 - 50 % 15 - 30 % 30 - 50 % Pois 15 - 30 % 30 - 50 % 30 - 50 % 15 - 30 % NB : Ces chiffres ici ne sont pas des valeurs absolues, ils servent simplement à titre indicatif. Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 55 RÉFÉRENCES ET AUTRES LECTURES Bridge, J., and J.L. Starr 2007. Plant Nematodes of agricultural importance – A color handbook. Academic Press, Boston, USA. 152 pp. Castillo, P., and N. Vovlas 2007. Pratylenchus (Nematoda: Pratylenchidae): Diagnosis, Biology, Pathogenicity and Management. APS Press, St. Paul, USA. 530pp Mulder, A., and L. J. Turkensteen 2005. Potato diseases. NIVAP Holland, The Hague, Netherlands. 280pp. Shurtleff, M. C., and C. W. Averre 2000. Diagnosing Plant Diseases Caused by Nematodes. APS Press, St. Paul, USA. 189pp Whitehead, A. G. 1998. Plant nematode Control, 2nd edition. CAB International Publishing, Oxon, UK. 384pp. 56 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale LÉGENDES ET GLOSSAIRE EXPLICATION DE LA LÉGENDE Le tableau des plantes hôtes de nématodes est composé d’une matrice de différentes couleurs, points et abréviations. Une explication sur la façon d’utiliser ce tableau est donnée en dessous. LÉGENDE DES TYPES DE SOL Type de sol S T SA A Globodera rostochiensis / G. pallida Nématodes à kyste de la pomme de terre S T SA A Heterodera schachtii Nématode à kyste blanc de la betterave ST Heterodera betae Nématode à kyste jaune de la betterave ST Meloidogyne hapla Nématode du Nord à galles S T SA ST S S T SA S T SA A Cela signifie que le nématode à kyste jaune de la betterave est actif seulement dans les sols sableux et tourbeux alors que le nématode à kyste de la pomme de terre et le nématode à kyste blanc de la betterave peuvent être présents dans tous les types de sols. Meloidogyne naasi Nématode à galles des céréales Meloidogyne chitwoodi Meloidogyne fallax Pratylenchus penetrans Nématode des lésions des racines Pratylenchus crenatus LÉGENDE DES TYPES DE SOL S Sableux Sol sableux : contient de la matière organique jusqu’à 8 % T Tourbeux Sol tourbeux : matière organique > 8 % Sablo-Argileux Sol sablo-argileux : limon < 25 % Argileux Sol argileux : à partir de 25 % de limon SA A GLOSSAIRE PCN : Nématode à kyste de la pomme de terre RKN : Nématode à galles TRV : Virus du Rattle du tabac N/A : Non applicable PCR : Polymorphism Chain Reaction - réaction d’amplification aléatoire de l’ADN grâce à ces propriétés de polymorphysme Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 57 Nématodes à kyste Nématodes à kyste de la pomme de terre Nématode à kyste blanc de la betterave Nématode à kyste jaune de la betterave Nématode du Nord à galles Nématode à galles des céréales Nématode de Colombie à galles Faux nématode de Colombie à galles Nématode des lésions des racines Nématode des lésions des racines s.l. Globodera rostochiensis/ G. pallida Heterodera schachtii Heterodera betae Meloidogyne hapla Meloidogyne naasi Meloidogyne chitwoodi Meloidogyne fallax Pratylenchus penetrans Pratylenchus crenatus S T SA A S T SA A ST ST S T SA ST S S T SA S T SA ••• R - - ••• - ••• ••• ••• • Betterave sucrière - ••• R ••• ••• • • ••• • • Oignon - - - • • • • ••• ? Maïs - - - - - •• • ••• ••• Orge d’hiver - - - - ••• •• • •• ••• Colza d’hiver - ••• ? • - ? ? ? ? Blé d’hiver - - - - ••• •• • •• ••• Orge de printemps - - - - ••• • • •• ••• Colza de printemps - ••• ••• • - ? ? ? ? Blé de printemps - - - - ••• •• •• •• ••• Chicorée (café) - - - ? ? - ? •• ? Avoine - - - - - •• ? ••• ••• Chanvre - - - ? ? ? ? ••• ? Luzerne - - - •• ? - ? ••• • Seigle - - - - •• ••• • ••• ••• Triticale - - - - ••• •• • •• ••• Pois conserve - - - ••• -- • • ••• • Carotte - - - •• - •• ••• •• • Scorsonère - - - •• - ••• ••• •• ? Épinard - •• •• • - - - • • Haricot - - • ••• - -R - ••• •• Féverolle/Fève - - •• ••• - ? ? ••• ? Fraise - - - ••• - - ••• ••• ? Asperge - - - ? ? ? ••• - ? Poireau - - - • - •• • ••• ? Betterave rouge - ••• ••• • • • ••• • • Céléri-rave - - ? •• ? ? ? •• ? Laitue - ? ? • ? • ? •• ? Chou - ••• ••• • - •• ? • ? Scarole-frisée - - - •• - • - •• ? Dahlia - - - • - ••• R ••• R • - Glaïeul - - - - - ••• R ••• R ? - Lys - - - - - - - ••• - Tulipe - - - - - - ? •• - Chou feuille - ••• ••• ? ? ? ? ? ? Radis fourrager - -- R -R •• - -R •R ••• ? Ray-Grass anglais - - - - ••• • ••• • •• Phacélie - - - •• - • • ••• ? Moutarde jaune - -- R -R • - •• •• ••• ? Ray-Grass d’Italie - - - - ••• •• ••• ••• •• Trèfle de Perse - ? ••• ••• ? ••• ••• ••• ? Trèfle rouge - - ? ? ? ? ? ••• ? Herbe du Soudan - - ? ? ? ? • ••• ? Vesce commune - - •• ••• ? ? •• ••• ? Trèfle blanc - - ? •• R ? •• R •• R ••• •• Tagètes (mai à juin) - - - - - - - -- -- Seigle (semis d’août à octobre) - - - - •• ••• •• •• ••• Type de sol Engrais verts semés de juillet à mi-août Bulbes à fleurs Légumes Grandes cultures Pomme de terre 58 Nématodes des lésions des racines Nématodes à galles DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale Nématodes des tiges Virus du Rattle Nématodes libres des racines Nématode des tiges Maladie vermiculaire Nématode réniforme Nématodes du pin Nématode des racines déformées Nématode des racines déformées Ditylenchus dipsaci Ditylenchus destructor Rotylenchus uniformis Paratylenchus species Trichodorus primitives Trichodorus Paratrichodorus Paratrichodorus similis pachydermus teres S T SA A S T SA A S S T SA A S T SA S T SA S T SA •• ••• • ? •• ••• - - ••• ? •• ••• ••• - ? - ••• •• - ? ? - - • ? • - •• • - • Nématode des racines déformées Steinhorst Nématode des racines déformées Transmis par P. teres ? inconnu ou trop peu de données -- Réduction active - Réduction naturelle • Augmentation faible •• Augmentation modérée ••• Augmentation forte Tobbacco rattle virus S T SA S T SA ••• • •• S ••• ••• •• S ? - •• ••• S ? •• ? ••• ••• ? ? ? •• •• ••• ••• ? ? ••• ••• S ? ••• ? ••• •• ••• S •• S - - • ? •• ? ••• •• • - • ••• ? ? ? ••• ? • - • - ? ? ? •• ••• - ? ? ? - •• •• •• - •• - •• - ? ? ? •• •• ? ? ? ? ? ? ? ? ? ••• - ? ? ? ? ? • •• •• - • ? ? ? ••• ••• •• - - ? ? ? ? ? ? ? ••• - • ? • • ? • • •• - ••• ••• •• • •• •• •• S - - ? ? ? ? • •• • - - ? ? • ? ••• • ••• ••• S •• - ? - ••• ? ••• •• ••• - ? ? ? ? ? ? ? • ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? • - ? ? ? • ? • - - - ••• ? ? ? ? ••• ••• ? ? ? ••• ? ? ? •• ? ? ? ? ? ? ? ? ••• ? ? ? •• ••• ? ? ? •• •• - - ••• ? ? ? •• ••• - - ••• ? ? ••• ••• ••• ••• ••• - ••• R - ? - •• - - ? ? ? - - - - ? ? ? • • • • ? - LÉGENDE : IMPACT SUR LA POPULATION DE NÉMATODES ••• ••• R ? ? ? ? ? ? ? ? ?S ? - ? ? ••• •• •• • - • - •• ? ••• ••• ••• ••• •• ? ? ? ? • ? •• ? ••• ? - ? ? ••• ••• ••• • ••• • - •• ? ••• ••• ••• ••• ••• S ••• ? ? ? ? ? ? ? • ••• ••• ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ••• ? ? • - ••• ••• ? ? ? ? ? ••• ••• ? ? - ? ? ? ? ? ••• S •• - • ? ? ••• ••• ••• •• R Dépendant de la variété S Dépendant du sérotype LÉGENDE : PERTES DE CULTURE inconnu Aucune perte Pertes faibles Pertes modérées Pertes fortes LÉGENDE : TYPES DE SOLS S Sableux – Matière organique < 8 % T Tourbeux Matière organique > 8 % SA Sablo-argileux – Limons < 25 % A Argileux – Limons > 25 % Gestion des nématodes en production végétale / DuPont Solutions 59 60 DuPont Solutions / Gestion des nématodes en production végétale Pour plus d’informations contactez votre interlocuteur local. DuPont Solutions (France) S.A.S. Défense Plaza - 23/25, rue Delarivière Lefoullon Défense 9 - F-92800 Puteaux Tél. 01 41 97 44 00 R.C.S. Nanterre 492 951 306 www.fra.ag.dupont.com