Transparents - indico in2p3

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Dynamique nucléaire et pluripotence au cours du
développement embryonnaire
chez les mammifères
Nathalie Beaujean
UMR Biologie du Développement et de la Reproduction
INRA – Jouy en Josas
ALIMENTATION
AGRICULTURE
ENVIRONNEMENT
Notre modèle: l’embryon précoce de mammifère et la reprogrammation
Fécondation
1-cell
2-cell
Blastocyste
Cellules
trophectoderme
Placenta
Foetus
Différencié …………. Totipotent
…………..
Pluripotent ……. Différencié
Reprogrammation
par transfert de
noyaux (clonage)
« ovocyte receveur »
« cellule donneuse »
Pluripotence in vivo et in vitro : une approche multi-espèces
Souris
Lapin
Naive state
ESCs
ICM
Bovin
ICM
ICM
Lif, BMP4
implantation 3 days
2 days
8 days
Primed state
epiblast EpiSCs
Activin, FGF2
gastrulation
gastrulation
implantation
gastrulation
implantation
Analyses in vivo du développement et contrôle de la pluripotence
«comparaison d’espèces »
Souris
Bovin
Lapin
«comparaison de stades»
-ICM (blastocyste)
-Cellules épitheliales
-Epiblaste
OCT4
APE
ERSE
Bovine
- embryologie descriptive :
hybridation in situ sur embryons en 3D avec
les marqueurs de pluripotence
EB
100 µm
200 µm
- Analyses transcriptomiques: comparaisons
inter-espèces et inter-stades
Mouse
100 µm
100 µm
100 µm
100 µm
Jouneau et al., unpublished
Analyses globales par « microarrays » après clonage
4 cell IVF
Excessive transcriptional activation +
Maternal transcripts not degraded
Inappropriate Reprogramming
Somatic
Reprogramming axis
Inappropriate Reprogramming
Excessive transcriptional repression
(embryonic genes not activated)
Proper transcriptional activation
Morulae IVF
Léandri et al., Physiol Genomics 2009
Correct Reprogramming
NT Morulae
Donor cell
Correct Reprogramming
MET
Reprogramming axis
Proper transcriptional repression
Identification de gènes « marqueurs » de la reprogrammation
Fibroblaste
Lignée A
% Blastocystes 42**
% à terme
12.7**
Bui et al., Reproduction 2009 / Khan et al., PloS One 2012
Lignée B
35*
1.8*
Réorganisation nucléaire et épigénétique anormale dans les clones
Cellule donneuse
Transfert
Embryon clone
H3K9me3_DNA
Maalouf, BMC Dev Biol 2009 / Ribeiro Mason, Cell Reprog. 2012
Clone
Fécondé
Centromeric
Pericentric
Centromeric
Pericentric
3D-FISH
Peculiar nuclear
organization
Nombreux
chromocentres (clusters
d’hétérochromatine)
résiduels dans 50% des
embryons
H3K9me3_DNA
Parental
asymetry
with progressive
acquisition of a
decondensed
chromatin state
with permissive
marks
Immuno-fluorescence
Répartition aberrante des
marques épigénétiques
avec absence de
l’asymétrie parentale
(génome male/femelle)
L’efficacité de reprogrammation peut être améliorée …
transfert
Embryon clone
Utilisation de la TSA (trichostatin A) qui provoque une hyper-acétylation
 Diminue le % d’embryons présentant des anomalies d’organisation nucléaire
Moins de
centromeres
isolés
Maalouf, BMC Dev Biol 2009
Perspectives
Etudier le lien entre reprogrammation, expression des gènes et chromatine
Nouveaux outils?
- compaction chromatine /organisation nucléaire : drogues, relation
avec le cycle cellulaire…
-Analyse épigénétique de gènes d’intéret : problème = quantité de
matériel
- microscopie : outils d’analyses en 3D (embryon = 100µm)
Utiliser nos modèles multi-espèces et nos outils (transfert de noyaux)
À la fois
-In vivo: embryons
-In vitro: cellules (ES-EpiSC)
http://www4.jouy.inra.fr/bdr
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