FICHE PRODUIT :
RE-SEQUENÇAGE DE REGIONS CIBLEES
Date de mise à jour :
28/08/2013
Plate-forme BIOPUCES et SEQUENCAGE
IGBMC – 1, rue Laurent FRIES –
67404 ILLKIRCH CEDEX- France
http://www-microarrays.u-strasbg.fr/
Le re-séquençage de régions ciblées combine des techniques d’enrichissement par capture
d’hybrides (SureSelect d’Agilent, …) et de séquençage haut débit. Il permet d’analyser, chez des
patients, des régions génomiques d’intérêt (exome, gènes cibles,…) afin d’y détecter des
variations génétiques par rapport à un génome de référence.
1. SERVICES PROPOSES
La plateforme réalise le séquençage des échantillons avec la technologie HiSeq2500 d’Illumina.
La prestation comprend :
1) Vérification des échantillons
Quantification de l’ADN génomique par spectrophotométrie (Nanodrop) ou fluorimétrie
(Qubit, Invitrogen)
Vérification de l’intégrité de l’ADN par électrophorèse
2) Préparation des librairies
Fragmentation de l’ADN par sonication (Covaris, KBiosciences)
Les fragments d’ADN sont ligués à des adaptateurs de séquençage possédant un index
(code barre de ≥ 6nt).
Vérification de la quantité de l’ADN fragmenté par fluorimètrie (Qubit) et du profil par
électrophorèse capillaire (Bioanalyzer, Agilent)
Capture des fragments d’ADN couvrant les régions d’intérêt du génome
Validation de la librairie par électrophorèse capillaire
3) Séquençage
Chargement des librairies sur la flowcell et génération de clusters avec la Cbot (Illumina)
Séquençage double 2x100 bases (paired-end)
4) Analyse primaire des données
Effectuée avec RTA/CASAVA (Illumina) : extraction des intensités des clusters à partir
des images, base calling, filtrage des séquences en fonction de leur qualité et suppression
des dimères d’adaptateur.
5) Analyse ultérieure (optionnelle)
2. PREPARATION DES ECHANTILLONS PAR LE PORTEUR DE PROJET
Le porteur de projet réalise la préparation de l’ADN génomique et nous le fournit pleine taille ou
fragmenté.
Caractéristiques de l’ADN à fournir
Quantité d’ADN
minimale requise
3 μg quantifiés avec un fluorimètre.
À une concentration ≥ 100 ng/μl dans un volume de 20 μl minimum.
En solution dans de l’eau sur de la carboglace.
Les tubes doivent être clairement identifiés et accompagnés d’une
fiche descriptive indiquant le volume de chaque ADN.
Nous ne commençons un run de séquençage que lorsque la Flowcell (8 pistes) est complète avec
des échantillons dont la longueur de lecture est similaire. Néanmoins, il nous est possible de
réaliser des runs rapides sur une seule piste de la flowcell moyennant un surcoût.
3. CONTROLES QUALITÉ RÉALISÉS PAR LA PLATEFORME
Les contrôles qualité listés ci-dessous, sont effectués par la plateforme et les résultats sont
envoyés par e-mail au porteur de projet à l’issue de chacune des étapes.