Cyprinus carpio (Linnaeus, 1758)

Organisation des Nations Unies pour l'alimentation et l'agriculture
pour un monde libéré de la faim
Département des
pêches et de l'aquaculture
Cultured aquatic species fact sheets
Cyprinus carpio (Linnaeus, 1758)
I. Identification
a. Caractéristiques Biologiques
II. Profil
a. Contexte Historique
b. Principaux Pays Producteurs
c. Habitat Et Biologie
III. Production
a. Cycle De Production
b. Systèmes De Production
c. Maladies Et Mesures De Contrôle
IV. Statistiques
a. Statistiques De Production
b. Marché Et Commercialisation
V. Situation Et Tendances
VI. Problèmes Et Contraintes Majeurs
a. Pratiques Pour Une Aquaculture Responsable
VII. Références
a. Liens Utiles
Identification
Cyprinus carpio Linnaeus, 1758 [Cyprinidae]
FAO Names: En - Common carp, Fr - Carpe commune, Es - Carpa
Caractéristiques biologiques
Corps allongé et trapu. Lèvres épaisses. Deux paires de barbillons à l’angle de la bouche, les plus courts sur la
lèvre supérieure. La longueur de la base de la nageoire dorsale avec 17-22 rayons. Base de la nageoire dorsale
longue avec 17-22 rayons ramifiés et solides, épine dentée en avant; nageoire dorsale de forme concave
antérieurement. Nageoires anales avec 6-7 rayons mous; bord postérieur de la 3ième épine des nageoires
dorsale et anale avec des spinules. Ligne latérale avec 32 à 38 écailles. Dents pharyngiennes 5:5, dents avec
couronnes aplaties. Couleur variable, les carpes sauvages sont brunes à vertes sur le dos et les côtés supérieurs,
nuances jaunes or au niveau du ventre. Les nageoires sont sombres, ventre avec une nuance rouge. La carpe
dorée est reproduite pour un but ornemental.
Profil
Contexte historique
La carpe était considérée comme un met luxueux durant la moitié et la fin de la période Romaine, et, au moyen
âge, elle était consommée durant le jeun. Le poisson était gardé dans des étangs de stockage (’piscinae’) par les
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Romains, et plus tard dans des étangs construits par les monastères chrétiens. Chez les européens la carpe était
élevée en monoculture. Les grands individus étaient sélectionnés comme des géniteurs. Depuis, le 12ième
jusqu’à la moitié du 14ième siècle AD, une sélection involontaire a eu lieu constituant la première étape vers la
domestication. La reproduction semi contrôlée en étangs naturels et l’élevage larvaire de carpe ont commencé
au 19ième siècle en Europe. Les cyprinidés étaient élevés en chine pour plus de 2 000 ans, où ils étaient gardés
dans des étangs qui n’étaient jamais vidés. Les étangs étaient approvisionnés régulièrement avec des juvéniles
originaires des rivières et l’élevage se faisait selon les techniques d’élevage en polyculture basées sur la
nourriture naturelle. Des races semi domestiquées ont été développées dans ce système. De nos jours, les
carpes domestiquées sont produites dans la plupart des zones d’élevage de carpe. Il y a environ 30-35 souches
de carpes communes domestiquées en Europe. Plusieurs souches sont maintenues en Chine. Il y a quelques
souches de carpe Indonésienne, qui n’ont pas encore été examinées et identifiées scientifiquement.
Principaux pays producteurs
Principaux pays producteurs de Cyprinus carpio (Statistiques des Pêches FAO, 2006)
Habitat et biologie
La carpe commune sauvage (généralement référée comme carpe dans cette fiche technique) vit au milieu et à
l’aval des cours d’eau, dans des zones inondées, et des eaux superficielles confinées, comme les lacs, bras
morts de lacs, eaux de réservoirs. La carpe est principalement un poisson qui vit dans le fond mais cherche sa
nourriture dans les couches intermédiaires et supérieures de la colonne d’eau. En Europe, les étangs typiques
de carpes sont peu profonds, eutrophiques avec un fond vaseux et une végétation aquatique très dense au
niveau des digues. Le spectre écologique de la carpe est grand. La meilleure croissance est obtenue quand la
température de l’eau oscille entre 23 et 30 °C. Le poisson peut survivre aux périodes froides de l’hiver. Une
salinité jusqu’à environ 5‰ est tolérée. La gamme de pH optimal est entre 6,5 et 9,0. Cette espèce peut
survivre à des faibles concentrations d’oxygène (0,3-0,5 mg/litre) aussi bien qu’à une sursaturation. Les carpes
sont omnivores, avec une prédominance carnivore (insectes d’eau, larves d’insectes, vers, mollusques, et
zooplanctons). Elle est aussi planctophage: elle consomme les tiges et les graines de plantes aquatiques et
terrestres, les plantes aquatiques décomposées etc. L’élevage de carpes en étangs est basé sur la capacité de
l’espèce d’accepter et d’utiliser les céréales fournies par les éleveurs. La croissance journalière de la carpe peut
être de 2 à 4 pour cent de son poids. Les carpes peuvent atteindre 0,6 à 1,0 kg durant une saison d’élevage en
polycultures dans des étangs dans les zones subtropicales/tropicales. La croissance est beaucoup plus lente dans
les zones tempérées: dans ce cas le poisson atteint un poids de1 à 2 kg après 2 à 4 saisons d’élevage. En
Europe, la carpe femelle a besoin d’environ 11 000 à 12 000 degré-jours pour atteindre la maturité. Les mâles
arrivent à maturité dans une période plus courte de 25-35 pour cent. La période de maturité des souches de
carpes asiatiques est légèrement plus courte. La ponte de la carpe européenne commence quand la température
est aux environs de 17-18 °C. Les souches asiatiques commencent leur ponte quand l’ion dans l’eau diminue
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brusquement au début de la saison pluviale. Les carpes sauvages sont des reproducteurs séquentiels partiels.
Les carpes domestiquées libèrent tous les ovocytes matures en quelques heures. Après un traitement hormonal
les carpes émettent leurs ovocytes matures en un temps beaucoup plus court, ce qui rend possible la lacération.
La quantité des ovocytes émis est de 100 à 230 g/kg du poids du corps poids du corps. L’ovocyte devient
adhésif en rentrant en contact avec l’eau.
Le développement embryonnaire des carpes dure environ 3 jours à 20-23 °C (60-70 degré-jours). Sous des
conditions naturelles, les jeunes juvéniles s’attachent au substrat. Environ trois jours après l’éclosion la partie
postérieure de la vessie natatoire se développe, la larve nage horizontalement, et commence à se nourrir avec
des particules d’une taille maximale de 150-180 µm (principalement des rotifères).
Production
Cycle de production
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Cycle de production de Cyprinus carpio
Systèmes de production
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Approvisionnement en juvéniles
Ponte sur niche, algues aquatiques et prairies inondées dans des bassins et étangs
Les carpes peuvent pondre au cours de toute l’année dans les zones tropicales d’Inde, avec des pics en janvier-
mars et juin-août. La reproduction est réalisée dans les hapas, les bassins en béton ou petits étangs. Les plantes
aquatiques submergées sont utilisées comme des substrats pour l’étalement des œufs. Quand les juvéniles sont
de 4 à 5 jours, ils sont stockés dans les étangs de nurserie.
La ‘méthode soudanaise’ est utilisée pour la ponte des carpes en Indonésie. Les géniteurs sont maintenus dans
des étangs pour géniteurs, séparés par sexe. Les géniteurs matures sont transférés à des étangs de ponte de 25-
30 m². Les ‘Kakabans’ (nichets fabriqués à partir de fibre des espèces de Arenga) sont installés dans les étangs.
Le poisson étale ses œufs sur les deux côtés de kakabans. Quand la ponte est terminée, les nichets sont
transférés aux étangs d’éclosion/nurserie.
Les petits étangs sont utilisés pour la ponte de carpes en Chine. L’algue aquatique (Ceratophyllum,
Myrophyllum) où les feuilles de palmiers flottantes sont utilisées comme un substrat pour la ponte.
En Europe, les petits étangs 'Dubits ponds' (120-300 m² superficie) étaient, dans le passé, utilisés pour la ponte,
ainsi que pour une période courte dans la nurserie pour des juvéniles de carpes. Récemment, des étangs avec
une aire allant de quelques centaines de m² jusqu’à 10-30 ha sont aussi utilisés. Deux à quatre semaines après
la ponte, les juvéniles peuvent soit être récoltés de ce grand étang, ou peuvent y rester jusqu’à atteindre la taille
fingerling.
Production de juvéniles en écloserie
C’est la méthode la plus efficace et faible de la production de juvéniles. Les géniteurs sont gardés dans de l’eau
saturée avec de l’oxygène, dans une température variant entre 20 et 24 °C. Ils sont traités par deux doses
d’injections de la glande pituitaires, ou par un mélange antagoniste de GnRH/dopamine, pour induire
l’ovulation et la spérmiation. Les ovules sont fécondés (en appliquant la ‘méthode à sec’) et l’adhésivité de
l’œuf est éliminée par un traitement sel/urée, suivi par un bain d’acide tannique (la ‘méthode de
Woynarovich’). L’incubation est réalisée dans des récipients nommés ‘Zoug jars’. Les juvéniles obtenus sont
gardés dans des bacs coniques pour 1 à 3 jours, quand ils arrivent au stade de nage ou quand ils commencent à
s’alimenter ils sont normalement mis dans des étangs spécialement, préparés. Environ, 300 000 à 800 000 de
juvéniles qui viennent d’éclore peuvent provenir d’une seule femelle.
Nurserie
Grossissement de la carpe commune dans des étangs et bassins
Les étangs vidangeable peu profonds sans algues aquatiques de 0,5 à 1,0 sont les plus convenables pour le
grossissement de carpes. Les étangs de nurserie doivent être préparés avant le stockage pour encourager le
développement des populations rotifères, puisque ils constituent la première nourriture pour les juvéniles. La
densité de stockage est de 100-400 juvéniles/m². Les étangs doivent être ensemencés avec Moina ou Daphnia
après avoir stockés les étangs. Des aliments supplémentaires comme du soja, céréales, viande, ou un mélange
de ces matières, doit être apporté. Des fibres de riz ou des éclats de riz peuvent aussi être utilisés comme
nourriture pour les juvéniles. La durée de la période de nurserie est de 3 à 4 semaines. Le poids final du
poisson est de 0,2-0,5 g et le taux de survie est de 40-70 pour cent.
Si il y a plusieurs prédateurs dans la zone où l’étang sera installé (insectes, serpents, grenouilles, oiseaux,
poissons sauvages), le bassin de nurserie de carpes peut être utilisé. Les bassins d’une superficie de 5-100 m²,
construits en béton, briques ou plastique, peuvent être utilisés comme nurserie pour des juvéniles jusqu’à 1-2
cm. En mettant du foin et du fumier, des populations denses de Paramecium et rotifères peuvent se développer
dans ces bassins contenant quelques centaines de juvéniles par m². Les systèmes de type industriel, tels que les
raceway, ou les systèmes de re-circulation sont aussi convenables pour la nurserie.
Production de fingerlings
La production des fingerlings de carpes prend place normalement dans des étangs semi intensifs, basés sur
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