ETUDE
DU DEVELOPPEN{ENT
EN,{tsRYONNAIRE
DE
SESAMIA
NONIAGRIOIDBS
LEF
(LEP.
NOCTUTDAE)
I.IILAI-
ABDET,KADER*
INTRODUCTION
corrune chezla plupart
clc'.s iriscctes,
la morta-lité
des
æul.s
rle la sésamie
tlue
aux facteurs biotiques ou abiotiques est fonction de leurs stades de
déve
loppement.
chez Anagas
ta ku rr
nie
ila zer, re
développement
embryonnarre
est sensible
aux températures
basses
(+4,5' c et + lo c) pnrLurt les phases
de
multiplication nucléaire
et iuste a'ant l'éclosion,
alors que durant les pha-ses
intermédiaires.
la survie
des
o:ur.s
est
prus
grande
(JouRDrIELrn et aI., 1914\.
En 1950, GALMONT a monrré que l'effet des insecticitres
sur la morraliré
embryonnaire d'operophtera brumata L. est fonction de son stade de
développement.
Dans cette é(ude, nous avons essayé d'identitier les principaux stades
embryonnaires
de la Sésamie
à une température
constante
de 1g" C. La
connaissance
de l'échelle
de I'cmbryogenèse
de la sésamie
à cette
température
permettra
de tester
la sensibilité
des
différens stades
aux tempémtures
létales.
cette étude est égalemenr
utile pour préciser la réaction des divers stades
embryonnaires
de la Sésamie
à certains parasites
oophages
ou insecticides
ovicides.
x Programme
olivier - C.R.R.A.
Marrakech
729
MATERIEL ET METHODES
D'ETUDE
Les pontes de s. nonagrioides sont ob(enues
avec des couples élevés
séparérnônt
à 18o c. I-es adultes
sont
nounis avec
une
solution
de saccharose
à
SZ. I-es
aufs qui sont
déposés
sur
de
jeunes
plants de mars sont
prélevés
juste
après
la ponte
et mis dans
tles
boîrcs
d'élevage.
Les
ctufs
sont
ensuite
fixés toutes
lés l0 minutes.
Après la rloisième
iournée, la fixation se fait toutes
les uois
hcur.es.
Pour rnieux
suivre
le tlér'eloppement
embryonnaire
de la Sésarnie,
nous
avons utilisé la technique
"in toto". Les æufs sont fixés au Dubosq Brasil
pendant au moins 24 heures.
A I'aide
d'une
minutie, on pique légèrement
les
micropytes
des crul\ qui sont laissés
pendant
qua$e à cinq heures
dans Ie
nuboiq Brasil afin de parachever
la lixation. Après la fixation. I'embryon
devient blanchâtre
dans le vite'llus
de coloration
jaune. Nous avons procédé
ensuite
à un abondant
lavage
à I'alcool
70'. Après déchorionnage,
les æufs
sont
colorés avec du carmin chlorhyclrique
lrnclant 24 heures.
.Tuste
après la
coloration,
tes
crufs
sonl
dilïérenciés
avec
de
I'alcool
chlorhydrique
(alcool
80' à
| 7" d'acide
chlorhydrique
normal). Ils sont
mis successivemellt
dâns
I'alcool
à
90o,
l'alcool chloflrydrique
(alcool 80 à llc d'acide
chlorhydrique
normal)' Ils
sont
mis successivement
dr'rt I'alcool
à 90o,
I'alcool
absolu
puis dans
le toluène
le vitellus
ttevient
transparent.
A ce stade,
I'embryon
qui prend
une
coloration
rougeâtledevientvisibleda.nslamassevitellineuansparente.Selon
cugwxç,t-oN (1966), Ies (tufs ainsi traités peuvent êlre conservés dans le
toluène
sans
aucune
altération
de
la coloration'
RESULTATS
ET DISCUSSION
1 - Différenciation
de
l'ébauche
embryonnaire
:
Après
12 heures
d'incubation
à 18"
C,
nous avons
observé
in toto,
sur
la face
ventrale des æufs, la premièr'e
ébauche
embryonnaire
qui devient très
reconnaissable
avec sa coloration
rose (Fig. 1 stade
I). L'observation
au
microscope
monre qu'elle est
constiÙée
pâr un pavage uès
régutier
de
cellules
polyédriquesauxnoyauxplusserrésqueceuxdublastoderme.Cestadeque
nous
considérons
comtne
stâde
I dans
notre
étude
provient
de
la condensation
de
la première ébauche
embryonnaire
chez
les
Lépidoptères.
Il a été
décrit
chez
de
no.b..ura, espèces
de Lépidoptères,
notaflrment
chez
Cochtidion limacodes
HIjF.(CI{RIsreNspN,tgs:)etArchopsrosanaL.(GUENNELON'1966).
Enlg66,GUENNELONaproposéletermede"condensation"pourdésigner
les
phénomènes
de
"réduction';
de
cette
ébauche
embryonnaire
en
remplaçant
le
terÂe
"régression"
avancé
par
CHRISTENSEN
(1953)'
130
A ce stade, nous avons rernzu'qué
que cctte ébauclie est par-ticllement
enfoncée
dans
le virellus.
L'observa(ion
de plusieurs
æul.s montr-ent
que cer
enfoncement
se fait surtclut
par lcs borcls
de l'ébauche
qui comrnencent
à se
replier dans le vitcllus. c'e phénornène
d'irnmelsion
de l'ébauche
cmbr.yonnaire
dans lc vitellus
a été
décrit
chez
clc nornbreux
Lépidoptèr.es
:
O. Brumata I-. (GAUMONT, 1950),
Christoneura furiferana CLEM
(s'rAIRS, 1960),
Heliotis zea BOD. (prcsscr
c[ r'urscky,
1960)
cr A. Rosana
(GLJENNELON.
1966).
même grandeur
est plus mince.
des bords qui se courbent vers
2 - Formation
et croissance
de la cupule
embryonnaire
:
Après 24 lieures, rcs bo.ds tle l'ébauchc
ernbr.you'ai.e
qui continue sa
condensation
s'anondissent
ûrig. I stadc
II). L'ébauche
clnbryonnaire
prend
ainsi
la fonne d'une
cupule
embry.nna.i.e.
Nous
désignons
ce st1;e II par ie te'ne de
"cupule" déjà utilisé pzu
GIIENNIILON cn 1966 pour un srade
analogue
d'A.
lo:ana. Signalons que ce stade a été obserr,é
chez cl'autres
espèces
de
L,épidoptères
mais
désigné pal tl'autres
teûnes
: "pochc',
chez
Eudemis naevana
IlB. (HUIE, 1918)
et c. furiferana
cLIlM. (srAIRS, 1960)
; "berceaux,,rJécrirs
chez Diacrisia virginica (L) (.IoiIANNSIIN, 1929)
; "barques"
pour.
h,prrestia
kuhniella
ZELL (SIIEL, l93l) ; ,'naccllcs",
"canrËs".u ,,coquiiles
de moules
.bsen'és
chez les
æufs
d'orgf ia anrica L. (cr{RISTLTNSITN,
ri42).
Durant son évolution,
nous
a'ons noté querques
variations
morphoro,tiques
de
cette
cupule que
nous
avons
représentées
par
trois
sous_stades (Fig.
l) :
- stade
II a : La cupule
est petire,
légèrernent
incurvée
et très
épaisse.
- stade
II b : La cupule
est
plus grande,
moi's épaisse
avec
une
profondeur
plus
accentuée.
- Srade
II C : La cupule qui gzu.de
la
L'incurvation
est surtout
laire au niveau
I'intérieur.
Si nous
a'ons pu
suivre
I'évolution
morphologique
de
la cupule
trécrite
dans
ces trois sous
stades,
il n'était
pas
possible
de déterminer
la durée
de chaque
phase
à cette
température.
lJl
O1
llb
Fig. I : Différenciation de I'ébauche
embryonnaire
(I) et formation de Ia
cupule
embrfonnaire
(II)'
132
3 - Première
blastocinèse
de la cupule
:
Pendant
les sous
stades
IIb et IIc, nous
avons
noté que la cupule
der,ient
visible
de
prafil. Elle a subi
ainsi
une rotâtion
de 90o
autour.
tie l,a;ie
longitudinal
de I'æuf qui I'a amené
soit vels le côté tlroit, soit vers le côté gauche.
cetre
première
rotation de I'embryon n'a été signalée
jusqu'à présent
que chez les
Lépidoptères.
ce rnou'ement précoce
cru
jeune embryon
a été obsôrvé
pour la
premièr'e
lbis chcz E. nae'ana par HLIIE en 191g.
Depuis
cette
dare,
il a éré
mendonné
clrez
d'aurres
espèccs
: Grapholitha molesÉa
BUSCK (RUr.scKy,
1949),
c. furiferana (srAlns. 1960).
chez s. nonagrioires,
certe
rotarion
esr
désignée par le stade
IIc oùr
la cupule
est presque
parallèle
aux côtés
de l'auf.
(Fig.
2,
srade IIc).
4 'Allongement
de
r'ébauche
embryonnaire
et
formation
de ra
bandelette
gernrinative
:
Nous appe
rons
ba.trelette
gcrminative
tou{ embryon
cront
les lobes
céphaliques
et ra
p:urie
caucrale
sonr
bien indivi<tualisés
inig.
z srade
IIIa).
ce
stade a été désigné pa. cerlaius auteurs avec d'autres termes ,,embryon
propremenr
dir" (GALI[4ONT. 1950),
cupure
déproyée
(GLIEMrELON, 1966).
La blastocinèse
de la cupure
éta't achevéè,
rejeune
embryon
subit une
protbnde
transformation,
ce qui entraine
ra formation de la bandérette
germinative
avec
une
ex[êmité à deux lobes
procéphaliques
et une
auûe
plus
arrÀndie
qur
indique
la paltie
caudale.
,. Dans cette étape de l'embryogenèse
tle la Sésamie, deux phases de
développement
ont été
notées
:
- stade III a : Avec la lbrmarion
de ra banderette
gerrninadve.
Durant cette
première
phase
de fomation, la bandelette
germinativJs,allonge
en s'étalant
sur
une
grande
partie
de l'æuf
sans
réûécissement.
- Stade IIIb : La partie médiane s'étire et se rérrécit. La bandelette
germinative
qui devient
plus mince et plus allongée
pÉsente
trois pafiies
bien
distinctes
(procéphalique,
et caudale
médiane).
A ce stade
il devient possible
de
reconnaître
I'orientation
de la future
chenille.
@ig.
3, fIIb).
5 - Segmentation
de la bandelette
germinative :
Au quatrième
jour d'incubation,
on observe
une
nouvelle
transformation
morphologique
de I'embryon
par
une
segmentation
de
sa
partie
médiane (Fig.
3,
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