WILKINSON NARCISSE EFFETS DES LIQUIDES ALLANTOÏDIENS PORCINS SUR LA PRODUCTION D'INTERLEUKINE-2 ET DE "GRANULOCYTEMACROPHAGE COLONY-STIMULATING FACTOR" PAR DES LYMPHOCYTES DU SANG PÉRIPHÉRIQUE EN CULTURE Mémoire présenté à ta faculté des études supérieures de IUniversité Laval pour l'obtention du grade de maître ès sciences (M-Sc.) Département des sciences animales FACULTÉ DES SCIENCES DE L'AGRICULTURE ET DE L'ALIMENTATION UNIVERSITÉ LAVAL @WilkinsonNarcisse, 1998 1+1 of Canada National Library Bibliothèque nationale du Canada Acquisitions and Bibliographie Services Acquisitions et services bibliographiques 395 Wellington Street 395. rue Wellington Ottawa ON K1A ON4 OttawaON KiAON4 Canada Canada The author has granted a nonexclusive licence allowing the National Library of Canada to reproduce, loan, distribute or sell copies of this thesis in microform, paper or electronic fonnats. L'auteur a accordé une licence non exclusive permettant à la Bibliothèque nationale du Canada de reproduire, prêter, distribuer ou vendre des copies de cette thése sous la fome de microfiche/film, de reproduction sur papier ou sur format électronique. The author retains ownership of the L'auteur conserve la propriété du droit d'auteur qui protège cette thése. Ni la thèse ni des extraits substantiels de celle-ci ne doivent être imprimés ou autrement reproduits sans son autorisation. copyright in this thesis. Neither the thesis nor substantial extracts fiom it may be printed or otherwise reproduced without the author's permission. En periode de péri-implantation chez le porc, plusieurs pertes embryonnaires sont observées. Pour des raisons tant économiques que scientifiques la compréhension des mécanismes impliques est donc importante. L'objectif de cette étude est d'évaluer la concentration de facteurs immunomodulateurs (PGE2, TGFB2) présents dans des liquides embryonnaires prélevés en début de gestation et de corréler ces valeurs avec des marqueurs de la réponse immunitaire. Des PBL humains furent récoltés et cultivés en présence de liquides allantoïdiens. L'incorporation de [3H]thymidine ainsi que la production dTL-2 et de GM-CSF ont été quantifiées. Les concentrations de PGE2 sont significativement plus élevées en jours 2224, comparativement au jour 30. Tous les échantillons de liquides allantoïdiens testh inhibent la production d'IL-2, mais leur effet sur la production de GM-CSFest cependant très variable. Le reaai t de la PGE2 réduit significativement I'effect inhibiteur des liquides dantoïdiens. En jours 22-24, une forte corrélation est observée entre les concentrations de PGE2 et les deux marqueurs de la réponse immunitaire étudiés. Par contre, au jour 30, aucune corrélation n'a pu être obtenue. Ces résultats suggèrent que le liquide allantoïdien porcin peut moduler la réponse immune et que la PGE2 dans ces liquides embryonnaires (jours 22-24) est en partieresponsable de cet effet. Raymonü Lambert AVANT-PROPOS Je tiens tout d'abord à remercier le Dr. Raymond Lambert, mon directeur de recherche, qui m'a si aimablement accueilli dans son laboratoire. Par sa grande disponibilité il a su gagner mon respect et ma plus profonde admiration. Les judicieux conseils et les encouragements qu'il m'a prodigués m'ont été très profitables pour la réalisation de mon projet de recherche. La passion qu'il démontre pour son travail restera pour moi un modèle à suivre. Ma reconnaissance s'adresse également à mon CO-directeur,le Dr. Jean-Paul Laforest, pour sa grande disponibilité et le support apporté lors de la rédaction des articles scientifiques. De plus, j'aimerais remercier le Dr. Jacques Matte pour nous avoir si généreusement fournis les liquides allantoïdiens essentiels à la réalisation de ce projet et également pour ses pertinents commentaires. Je profite aussi de l'occasion pour remercier toute l'équipe du laboratoire et plus particulièrement mes collègues de travail, Vincent Érnond qui par sa gentillesse a su rendre mon séjour au laboratoire des plus agréable ainsi que Marylène Fortin qui a facilité la réalisation de mon projet en me léguant ses techniques et ses derniers travaux de recherche. J'exprime aussi mes remerciements à Mme Lise Lacouline pour l'aide apportée lors de la réalisation des techniques d'ELISA et des différents dosages effectués durant cette étude ainsi qu'à Grant Vandenberg pour la revue de mes articles scientifiques. Je m'en voudrais d'oublier Mlle Annie Chamberland ma meilleure amie et confildente pour sa grande générosité et son support moral. CHAPïlXE 3: Effet modulateur de la PGE2 et du TGFh des liquides allantoïdiens porcins prélevés en début de gestation. sur la production d'IL-2 et de GM-CSF par les lymphocytes du sang périphérique.................................................... -22 3.1 Résumé ........................................................................... 23 3 . 2 Abstract ..........................., ................................................ 24 3.3 Introduction ..................................................................... -26 3.4 Materials and methods ......................................................... -27 3 .4.1 Animals .............................................................. -27 3.4.2 Collection of porcine allantoic fluid................................ 27 ................28 3.4.3 Preparation of lymphocytes ..................... . 3.4.4 CeIf culture ............................................................ 30 3.4.5 Anti-PGE2 affinity column ........................................- 3 0 3.4.6 Fmrnunoassays ................................................... 3 1 3.4.7 Statistical analysis .................................................... 31 3.5 ResuIts ............................................................................ 32 3.5.1 Concentration of PGE2 and TGFp2 in porcine allantoic fluid ..32 3.5.2 Effect of pig allantoic fluid on IL-2 and GM-CSF production . 33 3.5.3 PGE2 in allantoic fluid is partly responsible for the inhibition of ...............................36 IL-2 and GM-CSF production .......... . 3.6 Discussion ...................................................................... - 4 1 3.6.1 PGE2 and cytokine production ..................................... 41 3.6.2 PGE;!and embryonic quality ....................................... 43 3.7 Acknowledgments .............................................................-44 3.8 References ...................................................................... -45 4: Discussion générde ........................................................ 50 LISTE DES OUVRAGES CITÉS.......................................................... 54 ANNIEJE A .................................................................................. -67 LISTE DES ABRÉVIATIONS OC:degré centigrade Ci: curie (i.e., Ci/rnrnol) C M . :complexe majeur d'histocompatibilité Con A: concanavaline A CPM: comptes par minute CSF: colony stimulating factor ELISA: enzyme linked imrnunosorbent assay FBS: fetal bovine serum FïîC: fluorescein isothiocyanate GM-CSF: granulocyte macrophage colony stimulating factor GMG: granulated metriai gland cells HBSS: Hank's balanced salt solution HLA: human lymphocyte antigen ICAM: Intracellular Cell Adhesion Molecule INF:interféron IL-2: interleukine-2 LAK: lymphokine activated M e r LGL: large granular lymphocytes jd: microlitre p: micromolaire mM: miholaire NK:natural killer nm: nanomètre NS : cellules non-stimulées PBL: penpheral blood lymphocytes pg: picograrnrne (i.e., pg/ml) PG: prostaglandine (i.e., PGE2) vii SEM: standard error to the mean TCR:récepteur des lymphocytes T TGF: transforming growth factor (Le., TGFp2) Th: cellule T auxiliaire [3~]~hymidine: thymidine marquée au tritium TNF:tumor necrosis factor viii CISTE DES TABLEAUX Table 1 Concentrations of PGE2 and TGFb2 in porcine allantoic fluid from Day 22-24 and Day 30 of gestation. ...-..----......-.--........-.......................-. 32 LISTE DES FIGURES Figure A Schéma des différentes phases de l'implantation.. ............................ - 4 Fimire 1 Effects of porcine allantoic fluid on [3H]thymidine incorporation in homologous conditions as compared to heterologous conditions ..................-29 Figure 2 Effects of porcine allantoic fluid collected on Day 22-24 or Day 30 of gestation, on [3H]thymidine incorporation and production of IL-2 and GM-CSF by human lymphocytes in vitro. ......................................... .34 Figure 3 Inter-expenment variations of [3H]thymidine incorporation (A) and IL2 (B)and GM-CSF(C) production by lymphocytes after treatment with aLlantoic fluid (final concentration 22.2%, (v/v)). ................................-35 Figure 4 Treatrnent of lymphocytes with porcine allantoic fluid collected on Day 22-24 of gestation (final concentration 22.296, (v/v)) adsorbed on an anti-PGE2 flrnity colurnn. ............................................................ -37 Fimire 5 Conelation between PGE2 concentrations and [3H]thymidine incorporation. ................................................................................ - 3 9 Figure 6 Correlation between PGE2 concentrations and IL-2 production by human lymphocytes in vitro. .......................................................... -40 Annexe A Fimire 1 Pre-treatment effects of porcine allantoic 8uid collected at Day 22-24, on [3H]thymidine incorporation and production of GM-CSFby human lymphocytes in virro. .............................................................. .68 Figure 2 Effects of porcine dlantoic fluid on [3HJthymidineincorporation, the percentage of CD4 positive cells was evaluated and on the CD4 membrane expression. ...................................................................... 69 INTRODUCTION GÉNÉRALE Durant la gestation, les cellules trophoblastiques de I'embryon sont en contact intime avec les cellules immunitaires présentes dans l'utéms. Les cellules trophoblastiques sont exposées aux lymphocytes T, aux macrophages ou aux cellules "natural killer" (NK). Les embryons ayant hérité autant d'antigènes du complexe majeur d'histocompatibilité (CMH) paterne1 que maternel, et étant en contact intime avec les tissus maternels utérins, sont donc considérés comme des étrangers (semi-allogreffes) dans l'utérus gestant. Chez les animaux tout comme chez l'homme, le non rejet automatique de l'embryon constitue un "paradoxe reproductif" très fascinant. Cependant, plusieurs espèces animales démontrent de fortes proportions d'avortements spontanés ou de mortalités embryonnaires (Gendron et Baine, 1988; Baine et Gendron, 1993). Chez l'humain l'efficacité reproductive se situe entre 20 et 30% et il a été estimé qu'entre 24 et 47% des conceptions échouent dans les premiers 28 jours de la gestation (Wilcox, 1983). Chez le porc, une proportion de 30 2 40% de la mortalité embryonnaire survient en début de gestation, soit avant le 30 i'm jour. Ces insuccès reproductifs pourraient être expliqués par différents facteurs infectieux, endocriniens ou d'ordre génétique; par contre, plusieurs recherches tendent à démontrer que la survie embryonnaire pourrait être reliée à certaines anomalies des relations immunitaires materno-foetales pouvant survenir à tous les stades de la gestation. Ainsi, les pertes embryonnaires pourraient être reliées précocement, à une défaillance des mécanismes de reconnaissances nécessaires à l'induction d'une irnmunoprotection locale qui se manifesterait par une réaction immunitaire agressive contre l'embryon ou plus tardivement à un défaut d'immunorégulation. Les réactions immunitaires impliquées pourraient être de type cellulaire comme de type humorale. Malgré un rôle certain des réactions à médiation humorale (phénomène de facilitation immunitaire) dans le maintien de la gestation, divers travaux semblent attribuer à I'immunité à médiation cellulaire, la responsabilité des réactions immunitaires maternelles indésirables. Ceci s'effectue, par le biais des lymphocytes T cytotoxiques normalement responsables des rejets de tissus allogéniques (Billington, 1989). I1 a été démontré que des neutrophiles, des macrophages et des lymphocytes colonisent largement la lumière utérine après que des allogreffes cutanées aient été placees Di zitero (Beer et Billingham, 1976). Les implications immunologiques de Ia colonisation leucocytaire furent décrites chez différentes espèces à placentation hémochoriale (Hunt, 1994) comme les rongeurs et Ies humains, chez qui les cellules trophoblastiques baignent dans le sang maternel et sont en contact direct avec les cellules immunes. Par contre, très peu d'études parlent des implications immunologiques chez les espèces à placentation épithéliochoriale comme le porc, chez qui le contact des cellules trophoblastiques avec le sang maternel est beaucoup moins intime (Figure A). Certains facteurs, dont la PGE2 et le TGFP2, retrouvés à l'interface foeto-maternelle et possédant des propriétés immunosuppressives, furent largement étudiés dans la littérature. Des études ont démontré que lorsque des cellules NK munnes activées à l'IL-2 étaient traitées à la PGE2, elles cessaient de proliférer et devenaient plus granulaires et moins cytolytiques (Linnemeyer et Pollack, 1993). De plus, il fut démontré que le liquide blastocoelique de lapin occasionnait une réduction de l'activité cytolytique des cellules M( (Ouellette et al., 1997) et que cette diminution est associée à la présence de PGE2. Une "down regulation" du pourcentage de cellules CD4+ (lymphocytes T), ainsi qu'une diminution du nombre de récepteurs CD4+ (Ouellette et al., 1997) furent aussi observées et associées à la présence de TGFP;?dans le Liquide blastocoelique de lapin. Finalement, le TGF$2 semble être un facteur immunosuppresseur impliqué dans la survie foetale, puisque des études chez l'humain, révèlèrent que les cellules CD56+ de la décidue produisaient du TGF$2 (Clark et al., 1994), et l'absence de production de TGFp2 par ces cellules suppressives fut corrélée aux avortements spontanés récurrents (Lea et aI., 1995). L'étude des principales populations cellulaires présentes dans l'utérus gestant ainsi que des différents facteurs qu'elles produisent, semble apporter quelques explications au phénomène de mortalité embryonnaire. Cependant, les raisons pour lesquelles certains embryons sont plus vulnérables que d'autres au rejet immunitaire demeurent toujours obscures. Cette étude visera donc à déterminer les concentrations de facteurs immunosuppresseurs (TGFP2 et PGE2) présents dans différents liquides ailantoïdiens porcins et cherchera à évaluer Les effets de ces liquides embryonnaires sur la réponse immunitaire cellulaire maternelle. En fait, nous vérifierons les effets des différents liquides embryonnaires sur certaines fonctions du lymphocyte T dont: 1) la prolifération cellulaire; 2) la production d'IL-2; 3) la production de GM-CSF; ainsi que 4) I'expression membranaire des récepteurs CD4; et 5) le pourcentage de cellules CD4+. De plus, nous tenterons d'établir un lien entre la présence des facteurs immunosuppresseurs étudiés et l'effet que pourraient avoir les liquides embryonnaires porcins sur les différentes fonctions immunitaires à l'étude. Ainsi, l'objectif global de cette démarche de recherche est la caractérisation des différents mécanismes irnmunologiques pouvant être impliqués lors de la reproduction des truies nullipares, a f h de mieux comprendre le phénomène de mortalité embryonnaire retrouvé en début de gestation chez cette espèce animale. I placenta EPfTHEUO-CHORIAL Le disque embryonnaire est arbitrairlocaiist au pble oppose au sice d'implanlarion. ** :Ce stade est la phase Ututte de I'implantotion dans les espCces épithélw-chorides. Figure A: Schéma des différentes phases de I'implantation (Guillomot et al., 1991). CHAPITRE 2 REVUE DES TRAVAUX ANTÉRIEURS Avant de présenter les types ceIlulaires ou Ies facteurs impliqués et /ou responsables des différents phénomènes reliés aux avortements spontanés ou à la mortalité embryonnaire, voyons les caractéristiques de l'embryon qui pourraient occasionner une induction de la réponse immunitaire maternelle. 2.1 Antigénicité de I'embryon De plus en plus d'études sont axées sur la compréhension des mécanismes à l'origine de la tolérance du foetus. La compréhension de tels mécanismes devrait offrir des perspectives intéressantes quant aux solutions à apporter aux problèmes de Ia mortalité embryonnaire. Nous savons que le "conceptus" est protégé par le placenta, qui lui sert de barrière anatomique. Le trophoblaste représente la portion du placenta ayant un contact étroit avec les tissus maternels. Le trophoblaste pourrait-il être une barrière de protection neutre pour le "conceptus"? Cette hypothèse a été soulevée il y a quelques années (1954) par Sir Peter Medawar, chercheur anglais et gagnant du prix NobeI de médecine pour ses travaux sur la tolérance immunitaire (Chaouat, 1993). Depuis, plusieurs chercheurs se sont intéressés à la question. Tout comme n'importe lequel individu, le foetus possède des marqueurs du soi à la surface de ses cellules. Ces marqueurs sont très variables d'un individu à l'autre et viennent généralement de la mère comme du père. Le foetus possèdera aussi à la surface de ses celIules des antigènes qui lui seront propres ("Tissue-specific antigènes"). On appelle communément ces marqueurs, les antigènes d'histocompatibilité (0 et ils sont en quelque sorte les empreintes du sujet. Il existe deux types d'antigènes d'histocompatibilité; les antigènes de classe 1 (CMH I) et de classe II (CMH II). Chez l'humain, les CMH 1 sont appelés HLA-A et HLA-B tandis que les CMH II sont appelés HLA-DR. Chez le porc, le complexe est divisé égaiement en classe 1et IL Les classes 1 sont nommées SLA-A (Swine Lymphocyte Antigen-A), B et C et les classes II, SLA-D (Koch, 1985). Ce sont ces marqueurs du soi qui deviennent la cible des anticorps ou des cellules effectrices lors d'une réaction immunitaire initiée contre un tissu étranger (comme dans le cas d'une greffe par exemple). Chez le rat, il a été démontré que des antigènes de classe 1 sont exprimés à la surface des cellules trophoblastiques et ces dernières peuvent ainsi initier une réponse immunitaire maternelle (Smith et al., 1982). Chez la souris, la présence d'antigènes de classe 1( H-2K et D) fut observée sur les celluIes du spongiotrophoblaste du placenta. Ceux-ci sont en contact direct avec la circulation maternelle (Ellington, 1987, Chaouat, 1993)-Une autre étude, faites à partir d'anticorps monoclonaux, démontre que chez le porc, certains antigènes spécifiques sont retrouvés sur les membranes des tissus trophoblastiques (Whyte et al., 1984). Il est bien démontré que ces antigènes sont retrouvés sur le bord des microvilosités du trophectoderme et qu'ils sont absents de nombreux autres tissus porcins aussi bien que des trophoblastes d'autres espèces animales. Chez I'humain, le cytotrophoblaste extravilleux exprime une fome particulière d'antigènes de classe 1 tronqués qui, contrairement aux antigènes de classe 1 classiques, sont peu polymorphes. Ces antigènes ont 86% d'homologie avec les CMH classique et sont communément appelés les "human leukocytes Antigen-G" ou HLA-G (Billington et Burrows, 1986; Ellis, 1990). Le poids moléculaire de la chaîne lourde de cette molécule est de 39KDa, comparativement aux antigènes de classe 1classique, qui ont un poids de 44KDa. Les celhIes foetales portent donc de toute évidence à leur surface, les structures cibles requises à la réactivité du système immunitaire maternel. Par contre différents mécanismes semblent présents afin de diminuer la réactivité des cellules foetales au système immunitaire maternel. Un effet protecteur fut démontré lorsque l'expression de I'HLA-G est élevée sur les cellules. Cette donnée est supportée par le fait que 1'IFNy peut induire, in vitro, l'expression d'antigènes de classe I tronqués (HLA-G) sur des cellules trophoblastiques humaines normales de même que sur la lignée JEG-3 (choriocarcinome), ce qui augmente leur résistance à l'activité cytolytique des cellules déciduales activées à l'IL-2 (King et Lake, 1990). De plus, il y aurait une régulation à la baisse de I'expression des antigènes de classe I et II classiques sur les cellules placentaires ayant un contact direct avec la circulation matemelie. Ce contrôle de l'expression des antigènes de classe I fut démontré sur les cellules cytotrophobIastiqueshumaines et semble être d'ordre transcriptionnel ou post-transcriptionne1 (Kawata et al., 1984). Finalement, d'après une étude chez le porc, différentes substances d'origine placentaire ou différentes macromolécules d'origine maternelle (Koch, 1985), serviraient à réduire l'immunogénicité des marqueurs antigéniques retrouvés à la surface des cellules trophoblastiques placentaires. Malgré la présence de mécanismes, à l'interface foeto-maternelle servant à diminuer l'immunoréactivité du système immunitaire face aux cellules embryonnaires, les phénomènes d'avortements spontanés et la mortalité embryonnaire sont toujours très élevés, ceci chez différentes espèces animales. L'antigénécité de l'embryon est donc bien présente et l'unité foetoplacentaire n'a donc nu1 autre choix que d'être conf?ontée aux cellules immunitaires maternelles. 2.2 Les cellules immunitaires présentes durant la gestation Le système immunitaire des vertébrés est constitué de cellules ayant les caractéristiques de reconnaître et détruire tout ce qui est considéré comme du non-soi par rapport à l'individu. L'appareil reproducteur n'échappera donc pas à cette surveillance immune et on notera la présence de nombreuses cellules hématopoïétiques, principalement des lymphocytes, des macrophages ou des ceIluIes "naturd killer" (NK), dans le stroma utérin des mamrniferes. La présence de ces cellules semble être une propriété générale de l'utérus non-gestant, gestant et même pseudogestant (Hunt, 1994). Par contre certaines modifications au niveau des populations cellulaires surviendront au cours du processus de gestation. 2.2.1 Les Lymphocytes Il existe deux types de lymphocytes remplissant des fonctions distinctes: les celIules T et les cellules B. Les cellules d'une troisième population de lymphocytes, encore mal connue, sont appelées cellules "non-T, non-B" ou cellules nulles. En général, les lymphocytes sont morphologiquement identiques et se distinguent par leurs fonctions et l'assemblage des protéines de surface qui leur servent de carte d'identité. Les lymphocytes T quant à eux, jouent un rôle particulièrement central dans l'initiation des réponses immunitaires spécifiques. Les lymphocytes T sont considérés comme étant les chefs d'orchestre de la réponse immunitaire. Ils seront les premiers à être activés, en réponse à un antigène présenté en association avec une molécule du CMH d'une cellule présentatrice d'antigène (CPA). Plusieurs récepteurs, contre-récepteurs ou molécules d'adhésion (LFA-ICAM) présents à la surface des deux cellules seront alors nécessaires afin de permettre la stabilisation de L'interaction cellulaire, qui déclenchera ensuite une cascade de seconds messagers impliqués dans la transduction des signaux. La spécificité de reconnaissance de l'antigène par le lymphocyte T lui est conférée par son récepteur communément appelé "T ce11 receptor" ou TCR,ayant un poids moléculaire d'environ 80 kDa. La transmission de signaux intracellulaires qui suivra I'activation du lymphocyte, induira I'activation des gênes responsables de la production de diverses cytokines telles; l'IL-2, -3, -4, -5, -6 et -10. Les gènes reliés à certains facteurs de croissance comme le "granulocyte-macrophage colony-stimulating factor" (GM-CSF) ou autres molécules telles le "tumor necrosis factor a" (TNFu) et l'interféron y ( I W y ) , pounont aussi être exprimes suite à I'activation du lymphocyte T. Ces cytokines serviront de messagers paracriniens et endocriniens qui agiront sur d'autres leucocytes et même sur des tissus non immuns. Elles auront des effets de contrôle de la prolifération cellulaire, la différenciation et la fonction de certaines cellules. Il est à noter qu'une cytokine peut avoir des effets multiples sur une même cellule cible (action pléiotrope) et que plusieurs cytokines peuvent avoir des fonctions identiques (effet redondant). L'IL-2est une des cytokines clé de la communication intercellulaire. Elle pourrait être considérée comme la baguette principale du chef d'orchestre puisqu'elle est produite par les lymphocytes T et qu'elle est au centre de l'orchestration de la réponse immune. Cette glycoprotéine de 15.5 kDa est associée à une foule d'activités du système immunitaire telles l'auto-activation, I'activation et la prolifération des lymphocytes T, I'activation de cellules "natural killer" (NK) en cellules "lymphokine-activated killer" (LM)(Drake et Head, 1989), ainsi que l'expansion clonale et la différenciation des lymphocytes B. De plus, cette cytokine peut agir sur de muItipIes cellules portant le récepteur à l'IL-2, pour permettre la synthèse d'autres cytokines telles le TNFa, le facteur de croissance des cellules B (BCGF-1) et l'interféron gamma m y ) . Deux grands groupes de lymphocytes T effecteurs peuvent être activés lors d'une stimulation antigénique: les lymphocytes T auxiliaires (T.& et les lymphocytes T cytotoxiques CT,). Pour ce faire, les antigènes doivent être intemalisés par la cellule présentatrice d'antigènes (CPA), réduits à l'état de peptides dans les lysosomes, et présentés à la surface de la CPA en association avec la molécute du CMH. Les lymphocytes TH sont activés suite à la reconnaissance par leur complexe récepteur (TCWCD3/CD4+), de I'association peptidemolécule de classe II. Cette reconnaissance conduira à la prolifération du lymphocyte T et à la sécrétion de cytokines tel que décrit plus haut. Les TH représentent une sous-population caractérisée par Ia présence du marqueur CD4 chez l'homme et L3T4 chez la souris (Male et al., 1985). La molécule de CD4 se fixe à la molécule du CMH de classe II de la cel1ule présentah-ice d'antigène afïm de renforcer les interactions entre les deux cellules. Les lymphocytes Tc quant à eux, représentent le deuxième mécanisme effecteur majeur de la réponse immunitaire cellulaire. Les cellules Tc, seront elles aussi activées par la reconnaissance du complexe peptide-molécule du CMH. Par contre, l'interaction se fera avec une molécule du CMH de classe I et le complexe récepteur impliqué dans la liaison sera TCR/CD3/CD8+ (Cresswell, 1994). Les lymphocytes Tc seront impliqués lors d'interactions impliquant la présence de protéines virales ou d'antigènes endogènes. On qualifiera la réaction immunitaire impliquée de "réponse à médiation cellulaire". 2.2.1.2 Les Lymphocytes B Les lymphocytes B sont les cellules qui représentent la mémoire imrnurijtaire puisqu'ils ont la capacité de produire des anticorps, suite à une stimulation antigénique. Ces cellules portent à la surface de leurs membranes, des récepteurs pour la portion Fc des irnrnunogIobulines (Ig), plus communément appelés anticorps. Lorsque les lymphocytes B vierges (cellules développées sans l'intervention d'Ag) sont stimulés par un antigène en présence du lymphocyte T et d'une cellule présentatrice d'antigène, la maturation de la cellule B se poursuit, afin de former un clone de cellules possédant les caractéristiques d'une véritable usine de fabrication d'anticorps (Ac), les plasmocytes. On retrouvera dors différents types de plasmocytes soit ceux produisant des IgA, des IgM, des IgD, des IgE ou des IgG, dépendarnment du type d'antigènes ayant initié la réponse immunitaire. Les Ac produits seront ultérieurement excrétés dans le milieu environnant. La demie vie des plasmocytes est de courte durée, soit quelques jours. Ainsi, afin d'assurer la mémoire immunitaire, une partie des cellules B stimulées, après l'activation antigénique, reviendront en phase de quiescence (en Go) pour constituer un "pool" de cellules mémoires spécifiques à l'antigène. Ce type de réaction immunitaire sera qualifié de "réponse à médiation humorale". 2.2.2 Les cellules NK et les macrophages Les Cellules NK font partie d'une catégorie particulière de lymphocytes. Elles ont en fait, I'ultrastructure de grands lymphocytes à granules. Tout comme les lymphocytes B, les NK possèdent des récepteurs pour la portion Fc des immunoglobulines, le marqueur CD16.La majorité de ces cellules NK sont donc semblables aux lymphocytes, mais comme elles ne sont ni des lymphocytes T, ni des lymphocytes B, elles ont été surnommées cellules "nuIles". Les NK sont d'importantes cellules effectrices de la réponse immunitaire à médiation cellulaire. Ces cellules sont équipées d'un potentiel cytolytique très agressif. Elles produisent le TNFa (Parr et al., 19951, et la perforine (ou cytolysine), une protéine présente dans leurs granules et qui est caractéristique des cellules cytolytiques activées (Parr et al., 1990; Lin et al., 1991; King et al., 1993; Rukavina et al., 1995). La présence des cellules NK ainsi que leurs activités ont été étudiés chez différentes espèces animales en relation avec leurs rôles dans le succès ou l'échec de la gestation. Leurs implications seront discutées un peu plus tard dans ce manuscrit (section 2.3.2). Quant aux macrophages, ils sont le produit des monocytes sanguins activés. Les monocytes sont produits dans la moelle osseuse par les cellules souches myéloïdes pour ensuite migrer dans les différents organes ou tissus d'y devenir des macrophages. Elles sont de grandes cellules à granules qui contiennent plusieurs hydrolases acides et une peroxydase, essentielle à la destruction cellulaire des microorganismes. Les principales fonctions des macrophages périphériques sont: 1) la phagocytose de microorganismes et des celluIes tumorales; 2) la présentation d'antigènes aux lymphocytes spécifiques, puisque la plupart d'entre-elles expriment le CMH de classe II. Cependant, cette fonction de présentation des antigènes (immunorégulateur) ne semble pas être accomplie par les macrophages utérins in situ. Durant la gestation, on leur attribuerait plutôt un rôle immunosuppresseur qu'immunorégulateur (Tawfik et al., 1986; Mathews et Searle, 1987). Cette fonction des macrophages sera développée la section 2.3.4. Finalement, l'activité des macrophages est grandement influencée par des hormones stéroïdiennes, des lipides bioactifs, ou des facteurs de croissance, abondamment retrouvés dans l'utéms gestant ainsi qu'au niveau du placenta. 2.3 Implication des cellules immunitaires durant la gestation Les populations cellulaires colonisant I'utéms gestant ainsi que leurs différentes implications immunologiques furent décrites chez différentes espèce à placentation hémochoriale (Hunt, 1994). Cependant, les études sont un peu moins nombreuses chez les espèces à placentation épithéliochoriale comme le porc (Yu et al., 1993). Chez l'humain, une espèce à placentation hémochoriale, la proportion de leucocytes au sein des cellules stromales passe de 8.2% dans la phase proliférative du cycle menstruel à 3 1.7% dans la décidue en début de gestation (Bulmer, 1993). De ces leucocytes, on retrouvera des lymphocytes, des macrophages et des cellules NK. La présence de ces leucocytes, au sein des cellules endoméuiales, fut souvent associée à l'état gestatif ou à la présence de l'embryon. 2.3.1 Implication des lymphocytes T Durant la gestation, les lymphocytes, phculièrement les lymphocytes T, jouent un rôle central dans l'initiation des réponses immunitaires. Les études semblent cependant conflictuelles quant à la distribution, au nombre relatif, ainsi qu'aux différentes sous-populations lymphocytaires présentes dans l'utérus durant la gestation (Carter, 1984). Des études effectuées chez I'humain, démontrent qu'en début de gestation, les lymphocytes T représentent moins de 20% de la population leucocytaire totale et qu'environ 70%de ces derniers sont CD8+ (Bulmer et al., 1991). Les lymphocytes T représenteraient Ia plus petite population leucocytaire, de la décidue. La présence des TH est peu commune dans les tissus utérins. En fait, la majorité des lymphocytes qu'on y retrouve sont soit membres d'une sous-population de cellules cytotoxiques/suppressives (CD8+) atypiques ou faisant partie des grands Iymphocytes granulaires ("Large Granular Lymphocytes"ou LGL) qui sont CD56f (marqueur des cellules NK) (Noun et al., 1989 chez la souris; Lee et al., 1988 chez les ovins; Bulmer, 1993 chez l'humain). Comparativement aux lymphocytes du sang périphérique, les cellules CD56+ utérines n'expriment pas la chaîne p55 de l'IL-2 (Bulmer et Johnson, 1986), par contre, elles expriment la chaîne p75 (Starkey, 1991). Quant aux Lymphocytes T suppresseurs, on note une augmentation de ce type cellulaire dans le sang périphérique après une exposition des leucocytes à des cellules foetales portant des molécules de CMH II (Oksenberg et al., 1988). Kabawat et al. (1985) rapportent que très peu de lymphocytes T sont présents au site d'implantation chez I'humain. Chez le porc, quoique le nombre de lymphocytes intra-épithéliaux par unité de membrane basale soit déjà très faible, une réduction significative des lymphocytes intra-épithéliaux hit observée durant les 2ème et 3ème semaines (jours 10 et 19) de la gestation (King, 1988),jours associés à la période de l'attachement chez le porc. En 1986, Head et Billingham démontrent que les lymphocytes T nomalement retrouvés en présence d'allogreffres conventionnelles, sont absents de Ia décidue humaine et murine (Head et Billingham, 1986). Mincheva-Nilsson et al. (1992) ont par la suite caractérisé les populations lymphocytaires de la décidue humaine et ont démontré que la majorité des lymphocytes présents étaient TCRyW/CD56+. II sagit d'une population de cellules effectrices à cytotoxicité NK non restreinte au CMH (Mincheva-Nilsson et al., 1992; Mani et al., 1993). Fait intéressant, des lymphocytes TCRaP+ sont retrouvés normalement en majorité dans la périphérie. Ces lymphocytes TCRy??/CD56* auraient un rôle à jouer dans I'immunoprotection du foetus ainsi que dans la protection de l'utérus et du trophoblaste contre les infections. 2.3.2 Implication des cellules NK Plusieurs études démontrent que les LGL sont les principales ceIlules retrouvées dans l'utérus gestant responsables de l'activité NK chez l'humain et les rongeurs (Yu et al., 1993). Chez le rat et la souris, on retrouve les "granulated metrial gland cells" (GMG) qui sont phénotypiquement similaires aux LGL humains (Stewart, 1994), par contre elles possèdent un profil antigénique différent. Les LGL et les GMG, possèdent des propriétés cytotoxiques différentes des cellules NK périphériques et sont surnommées cellules "NK-like". Plusieurs indications suggèrent que les LGL, isolées d'animaux gestants, peuvent lyser les cellules K562, qui sont des cellules cibles pour les cellules NK périphériques classiques (King et al., 1989; Ritson et Bulmer, 1989). Cependant, l'intensité de la lyse cellulaire serait plus faible que celle observée pour les cellules NK. Elles développent en même temps un phénotype similaire aux cellules NK périphériques, avec une proportion accrue de cellules exprimant le marqueur CD 16 (récepteur du fragment Fc des immunoglobulines) (King et ai., 1992). La présence de cellules NK caractérisées en tant que LGL fut aussi démontrée chez le porc (Kim, 1980), une espèce à placentation épithéliochonale (non-invasive). Cependant, la morphologie des cellules NK porcines, diffère de celie des cellules d'autres espèces. Elles sont plus petites et possèdent un nombre moins élevé de granules (Yang et al., 1987). Des études démontrent que les LGL humains représentent 70% de la population leucocytaire totale tant dans I'endomètre non gravide que dans la décidue (King et al., 1989). Par contre, Bulmer (I993), rapporte que ces cellules se retrouvent au niveau intra-épithélial et que leur nombre augmente en fin de phase sécrétoire du cycle menstruel humain pour atteindre 50% des lymphocytes intra-épithéliaux en début de gestation (Bulmer, 1993). Les facteurs responsables du recrutement, de la prolifération, de la différenciation et de la distribution des LGL ou des GMG dans l'endomètre ne sont pas vraiment connus. Chez Irhumainet la souris, la présence de ces cellules dans I'endomètre ne semble pas être nécessairement liée à la présence de l'embryon, puisqufon peut retrouver ces cellules dans l'endomètre durant le cycle (Bulmer, 1993). Par contre, une activité NK dans Ia décidue fut aussi démontrée chez des modèles porcins (Yu et al., 1994) et chez cette espèce, le développement de I'activité NK est intimement relié à la présence de l'embryon. Très peu de cellules "NK-Like" sont détectées chez la truie durant son cycle, en pseudogestation ou après I'insémination avec du plasma séminal ou des spermatozoïdes morts. Cependant, la présence de l'activité NK dans l'endomètre ne semble pas constante durant toute fa gestation. King et al., en 1989, rapportent que les LGL prédominent dans le stroma utérin et qu'ils sont très abondants durant la période de l'implantation (King et al., 1989). Ceci fut plus tard confirmé par des études chez le porc, où l'activité NK endornétriale fut détectée durant la période d'attachement, soit entre les jours 10 et 20 de la gestation, dors qu'au jour 30, leur activité cytolytique déclinait à des niveaux indétectables (Yu et al., 1993). Les résultats d'une étude de Croy et al. (1985), démontrent une activité accrue des cellules NK au site d'implantation de l'embryon humain, durant la première moitié de la gestation normale (Croy et al., 1985). Une étude plus récente démontre que les cellules NK pourraient avoir un rôle majeur à jouer dans le maintien de la gestation. Cette étude effectuée avec des souris transgéniques déficientes en cellules NK ( c l % de LGL) démontre que l'absence de ces dernières occasionne des pertes foetales de 64% à la mi-gestation avec une réduction de la taille des placentas (Guimond et al., 1998). Il a aussi été démontré que les LGL ainsi que les cellules NK périphériques ne peuvent lyser les cellules trophoblastiques (King et al., 1989). Par contre, une infiltration des ceIlules NK a été associée à des résorptions foetales ou à des avortements spontanés (Clark et al., 1987; Gendron et Baines, 1988; Zheng et al., 1993). En fait, il a été démontré que les LGL prolifèraient in vitro en réponse à l'IL-2 recombinante, et que ces cellules acquierent un potentiel cytolytique caractéristique des cellules "lymphokine-activated killer" ( L U )(King et Loke, 1990). Ces cellules LAK pourraient donc lyser les cellules trophoblastiques in viîro (Drake et Head, 1989). Le trophoblaste murin est aussi sensible à la lyse par les cellules M( périphériques activées à l'IL-2 (Drake et Head, 1989). Cependant, un peu plus récemment, il fut rapporté que les cellules trophoblastiques d'embryons porcins peuvent être reconnues et lysées par les cellules NK de I'endomètre gestant (Yu et al., 1994). La présence des celluIes "NK-like", aussi bien que leur activité ont été rapportées dans la littérature au site d'implantation. De plus, l'activation de ces cellules "NK-like" par {'IL-2,ou comme pour les embryons porcins, la simple présence de ces cellules peut occasionner une lyse des cellules trophoblastiques. Certain mécanismes immunosuppressifs localisés doivent nécessairement être présents à l'interface foeto-matemelIe afin d'assurer la protection des embryons, sans pour autant altérer le système immunitaire materne1 en général. Nous discuterons donc de ces différents mécanismes d'immunosuppression localisés à la section 2.4. 2.3.3 Implication des lymphocytes B Dans un utérus gestant, des anticorps maternels spécifiques peuvent être produits contre les cellules trophoblastiques. En effet, certains antigènes trophoblastiques solubles ou des celIules fœtales intactes peuvent être libérés de l'environnement utérin et passer dans la circulation sanguine maternelle (Wood, 1994). Le passage des cellules embryonnaires dans le sang maternel, mènera dors à la sensibilisation du système immunitaire de la mère, face aux antigènes fœtaux et paternels (Voisin, 1990),ce qui stimulera une production d'anticorps. Par la suite, le placenta formera une barrière qui adsorbera ces anticorps potentiellement dommageables pour l'unité "foeto-placentaire". Il a été démontré que des IgG sont fixés sur les cellules du syncytiotrophoblaste de toutes les gestations humaines menées à terme (Mowbray et al., 1993). De plus, ces anticorps peuvent faciliter La tolérance d'une allogreffe paternelle lorsqu'ils sont injectés à des souris receveuses de lignée maternelle (Voisin, 1990). Ce phénomène de transport de cellules foetales vers la circulation maternelle peut être observé chez toutes les espèces animales, indépendamment du type de placentation. Malgré que le mécanisme de défense humoral de la mère ait sûrement un rôle à jouer dans le maintien de la gestation, il serait pour plusieurs de moindre importance. Des expériences effectuées sur des souris ayant subit une déplétion fonctionnelle des lymphocytes B, démontrent que ces dernières peuvent très bien se reproduire normalement (Rodger, 1985). De plus, très peu de lymphocytes B sont observés au niveau du stroma utérin. Ainsi, peu d'études furent effectuées sur ce type cellulaire et sur le rôle que pourrait avoir Zijouer ce type de cellules durant la gestation. 2.3.4 Implication des macrophages Les macrophages sont abondants dans le stroma de l'utérus cyclique et gestant. Chez l'humain, il fut démontré que les macrophages sont présents au niveau du stroma endornétrial et que leur nombre augmente en début de gestation pour atteindre une proportion de 40% des leucocytes de la décidue (Bulmer, 1993). Il fut par la suite démontré, chez la souris et chez le rat, que les macrophages présents deviennent dispersés au site d'implantation (Wunt, 1994). Les travaux de Hunt et Pollard (1992), démontrent que les macrophages de I'utéms gestant ainsi que ceux retrouvés dans le placenta, auraient des fonctions bénéfiques à la gestation dont la phagocytose, l'immunorégulation et la production de facteurs de croissances (Hunt et Pollard, 1992). De plus, il semblerait que le rôle de ces cellules durant la gestation pourrait être relié à l'immunosuppression locale. En effet, les macrophages synthétisent de grandes concentrations de prostaglandine E2 (Parhar et al., 1989). qui inhibent la prolifération des lymphocytes en inhibant la synthèse d'interleukin-2 (Mathews et Searle, 1987) et en diminuant l'expression des récepteurs à la transferrine (Chouaib et al., 1985). Les macrophages utérins produisent, de plus, certaines cytokines comme l'IL-6 ou certains facteurs de croissance à I'interface foeto-maternelle comme du TGF-P ou le CSF-1. Aussi, il semblerait que les macrophages puissent aussi avoir un rôle à jouer dans la croissance et le développement placentaire (Hunt, 1989). 2.4 Mécanisme d'immunosuppression localisé L'immunosuppression à l'interface foeto-materneHe implique la mise en place de mécanismes diversifiés dont I'accumulation de cellules aux fonctions suppressives. Ceci survient au site dlimpIantation,dans la décidue (Clark et al., 1987; Bulmer et al., 1991) ou dans I'endornètre gestant, pour les espèces sans décidualisation (Croy et al., 1987). Considérant que durant la gestation, les femelles gestantes sont en mesure de répondre efficacement aux infections extérieures ou à des allogreffes expérimentales, les substances immunosuppressives impliquées doivent nécessairement exercer leur action de façon locale à l'interface foetomaternelle (Koch, 1985). Plusieurs études démontrent que des cellules déciduales ainsi que des rnacrqhages utérins isolés par digestion enzymatique ont un rôle de cellules suppressives de par les substances qu9eIles produisent (Tawfik et al., 1986; Mathews et Searle, 1987). Les substances impliqués sont d'origine variées, telles que les hormones, des protéines d'origine placentaires, d'origine foetale ou autres. La progestérone est une des hormones reconnue pour son action irnmunosuppressive à l'interface foeto-maternelle. Lorsqu'administrée localement, la progestérone peut retarder le rejet de greffe cutanée placée dans la lumière utérine (Hansen et al., 1986). De plus, un rôle de régulation de la migration ainsi que la prolifération des lymphocytes CD45+ à activité NK de I'endomètre, a été associé à la progestérone chez la brebis (Gottshall et Hansen, 1992) et la souris (Liu et Hansen, 1993). Cependant, l'effet inhibiteur de la progestérone sur la réponse immunitaire serait plutôt due à l'induction de la sécrétion de facteurs irnmunosuppressifs dans le liquide utérin plutôt qu'à une action directe sur les cellules lymphocytaires (Hansen et al., 1989). Chez le porc, une composante des protéines utérines luminales possédant une activité immunosuppressive a été isolée au jour 15 de la gestation (Segerson et d., 1991). Son activité irnmunosuppressive est maximale au jour 9 de la gestation (Segerson et Gunsett, 1993) et serait essentielle afin de neutraliser l'activité NK de I'endomètre retrouvé durant cette période (Croy et al., 1988). De plus, d'autres facteurs utérins ou protéines sécrétoires possédant des propriétés immunorégulatrices furent observés chez les vaches (Segerson et al., 1984; Segerson et Gunsett, 1990), les ovins (Segerson, 1988) et les humains (Nakayama et al., 1985). Une glycoprotéine de 66 kD fut purifiée à partir des embryons porcins durant la période d'attachement du blastocyste (jour 16) (Murray et al., 1987). Cette glycoprotéine a été reconnue comme possédant une activité immunosuppressive in vitro. De plus, d'autres facteurs solubles, comme la prostaglandine E2 (PGE2) ou le "transforming growth factor-$y (TGFp2) sont bien connus pour leur action immunornodulatrice. En effet, ces molécules furent proposées comme étant des messagers embryonnaires responsables de la modulation de la réponse immunitaire maternelle (Ouellette et al., 1997; Fortin et al., 1997; Ernond et al., 1998). La PGE2 tout comme le TGFj32 sont retrouvés dans les liquides embryonnaires de plusieurs espèces animales. On retrouve la PGE2 dans les embryons d'humains (Holmes et al., 1990), de cheval (Weber et al., 1991), de lapin (Dey et al., 1980; Pakrasi et Dey, 1982), et de porc (Lewis et Waterrnan, 1983). Chez le porc, on remarque que les prostaglandines peuvent être produites et métabolisées in vitro par les blastocystes au jour 16 de la gestation (jour associé à la période d'attachement du blastocyste) W w i s et Waterrnan, 1983). De plus, la PGE2 inhibe l'activité lytique des cellules NK et LAK retrouvées dans l'endomètre gestant (lala, 1989; Linnemeyer et Pollack, 1993; Bergeron et al., 1996). Elle inhibe également la production d'IL-2par les lymphocytes (Parhar et ai., 1989), et est responsable d'une augmentation de la production du GM-CSF produit par les lymphocytes (Fortin et al., 1997). Le GM-CSF est un facteur de croissance produit par différents types cellulaires et est impliqué dans la croissance du trophoblaste (Szito et al., 1993. On discutera de ce facteur dans la section suivante). Chez le porc. de très faibles concentrations de PGE2 inhibent substantiellement I'activité lytique des cellules MC de l'endomètre gestant (Yu et al., 1994) et des études de Kraeling et ai. ( l985), démontrent que I'indométhacine (inhibiteur de la synthèse des prostaglandines) administré par voie orale à des truies en début de gestation, provoque l'échec de la gestation. La production ainsi que I'expression génique du TGFp2, un facteur de croissance de nature peptidique, furent observés durant le développement embryonnaire murin (Heine et al., 1987; Miller et al., 1989), ovin (Doré et al., 1995) et porcin (Gupta et al., 1996). Le TGFp2 est aussi retrouvé dans le liquide blastocoelique de lapin (Ouellette et al., 1997). Chez l'humain, il fut démontré que le TGF$ peut diminuer I'activité cytolytique des LGL en culture (Rook et al., 1986) et l'absence de TGFp2 fut corrélée avec des avortements spontanés récurrents (Lea et d., 1995). Il fut aussi démontré que TGFB2 stimule la production de GM-CSF par les lymphocytes (Fortin et al., 1997) et occasionne une "downregulation" de I'expression membranaire des CD4 retrouvés sur les lymphocytes du sang périphérique (Ouellette et al., 1997). Chez le porc, la présence de TGFp ainsi que son action immunosuppressive sur des lymphocytes porcins furent observés à partir de sécrétions utérines luminales au jour 15 de gestation (Segerson, 1995). De plus, l'expression des trois isoformes du TGFP (TGFPI, TGF$2, TGFP3) fut observée dans les embryons porcins en période de péri-implantation, grâce à une étude immunohistochimique, et I'expression de ces isofonnes ainsi que leurs récepteurs diminuent avec l'avancement de la gestation, soit du jour 12 au jour 14 (Gupta et al., 1996). 2.5 Réactions immunitaires favorables au développement foetal Jusqu'à maintenant, nous avons vu que différents types cellulaires se retrouvent dans l'utérus lors de la gestation et que différents mécanismes sont présents à l'interface foetomaternelle, impliquant différents facteurs solubles7 afin de supprimer les effets délétères que pourrait avoir la réaction immunitaire matemelle. Cependant, certains faits nous emmènent à penser que la réaction immunitaire peut être favorable au développement du "conceptus". Plusieurs études effectuées sur les avortements spontanés chez l'humain attribuent ceuxci à un manque d'anticorps bloquants dans le sérum maternel (McIntyre et Faulk, 1983). Chez la souns, les grossesses de type dogéniques donnent des portées ainsi qu'un poids placentaire plus élevés que les portées de souris obtenues de grossesses syngéniques (James, 1965; Beer et al., 1975). De plus, chez des souris ayant de haut taux de résorption (CBNJ X DBA/2T), l'immunisation de la femelle contre des leucocytes de souns mâles possédant le même haplotype que les souns DBA/2J (souris BALBk), ramène les taux de résorption à la normale avec en plus, une augmentation du poids fœtal et du placenta (Baines et Gendron, 1993). Il a aussi été démontré que les performances reproductives des truies de premières gestations (nullipares) peuvent être améliorées par exposition de ces dernières aux antigènes de la semence mâle avant la conception (Murray et al., 1983). Chez la rate, une immunisation intra-utérine avec des spermatozoïdes a permis d'observer un plus grand nombre d'embryons dans la come utérine immunisée comparativement à la come contrôle non-immunisée (Beer et Billingham, 1976). Ainsi, lors d'une immunisation, la disparité antigénique menant à la sensibilisation et à La production d'anticorps bloquants par le système immunitaire maternel semble bénéfique aux mécanismes impliqués dans les processus de reproduction. Mais, outre la production d'anticorps bloquant, la stimulation immunitaire de l'utérus maternel semble aussi stimuler la production accrue de cytokines dans I'utérus telles l'IL-3, le "macrophage colony-stirnulating factor" (MCSF) et le "colony-stimulating factor" (CSF- I), qui mènent à une meilleure différentiation des tissus utérins et embryonnaires (Wegmann, 1988; Robertson et Seamark, 1992). 2.5.1 Concept de I'immunotropisme L'immunotropisme est une hypothèse mise de l'avant par Athanassakis et al. (1987) d'expliquer les effets bénéfiques que pouvait avoir I'alloimmunisation sur la gestation (Wegmann, 1993). D'après ce concept, la présence d'embryons allogéniques, induit l'activation d'une réponse immunitaire à médiation cellulaire favorable au développement foetal, par la production de cytokines ou facteurs de croissance embryotrophiques. Ceux-ci viendraient des lymphocytes T. Parmi ces facteurs, l'IL-3, le GM-CSF, et le CSF-I, sont produits par les lymphocytes T activés et seraient responsables de la prolifération des cellules placentaires in vitro (Athanassakis et al. 1987; Armstrong et Chaouat, 1989; Loke et al., 1992). En effet, l'expression du récepteur du CSF-1 (c-fms) par les cellules du trophoblaste et Ia sécrétion du CSF-1 par l'épithélium utérin coïncident avec la croissance placentaire (Arceci et al., 1989). Les cellules trophoblastiques humaines au premier trimestre de la gestation produisent également du GM-CSF, ce qui suggère une régulation paracrine et/ou autocrine du développement placentaire (Jokhi et al., 1994). De plus, en réponse à une exposition avec de la semence ou du plasma séminal, le contenu en GM-CSF du liquide utérin augmente de façon très importante (Robertson et Seamark, 1990; Robertson et al., 1992). La présence de l'IL-3 a aussi été rapportée dans les sumageants de culture de ceIlules placentaires murines (Lin et al., 1993). 2.5.2 L'hypothèse Th2/Thl L'interface foeto-maternelle se voit donc imprégnée de cytokines et de facteurs de croissance bénéfiques (type Th2) au développement foetal incluant les cytokines IL-3,4, -5 et -10, ainsi que d'un certain nombre de cytokines qui sont moins favorables à la gestation (type Thl), incluant l'IL-2, Ie TNFa et 1'INFy. Ces dernières cytokines sont produites par les lymphocytes de type T helper- 1 (Th1) et activent la réponse immunitaire à médiation cellulaire. Quant aux cytokines bénéfiques, elles sont produites par les lymphocytes de type T helper-2 (Th2) favorisant la réponse immunitaire à médiation humorale- L'hypothèse Th2/Th 1 suggère donc un certain équilibre entre les deux types de cytokines: bénéfiques et délétères. En effet, l'administration d'IL-2, de TNFa et d'IFNy à des croisements de souris CBA X DBN2 augmente les taux de résorption foetale (Chaouat et al., 1990). De plus, I'expression du gêne de l'IL-2 ainsi que celui d'autres cytokines de type Th1 telles le TNFa,et 1'INFy fut fortement observée dans le placenta de croisement de souris à haut taux de résorption (CBA X DBA/2), comparativement à l'expression de ces mêmes gênes dans les placentas de croisements normaux (CBA X BALBk) (Tangri et Raghupathy, 1993). Il fut aussi démontré que la prolifération et la différentiation des cellules trophoblastiques humaines, tout comme celles des cellules trophoblastiques murines, sont régulées par certains facteurs de croissance produits par les macrophages comme le GM-CSFet le CSF-1 (cytokines Th2). L'injection de diverses cytokines Th2 telles le GM-CSF, l'IL-3, ou l'IL-IO, occasionne une réduction considérable du nombre de résorption foetale avec une augmentation du poids foetal et placentaire dans le croisement murin de souris à haut taux de résorption CBAU X DBA/2J (Wegmann et al., 1989; Chaouat et al., 1990). Il fut aussi démontré que L'IL-IO,cytokine Th2, pouvait inhiber la production d'IL-2 et de TNFa, considérées comme des cytokines abortives (Fiorentino et al., 1989; Mosmann et Moore, 1991). De plus, l'IL-4 en association à l'IL-1 O inhibe l'immunité cellulaire cytotoxique in vivo (Powrie et al., 1993) et l ' M y , une cytokine Thl, peut, en plus de promouvoir le développement des lymphocytes cytotoxiques et des cellules NK (Drake et Head, 1989), inhiber la prolifération des clones Th2 in vitro (Gajewski et Fitch, 1988). On voit donc que les cytokines Th1 et Th2 forment un réseau complexe de cytokines mutuellement antagonistes. Des études plus récentes démontrent que des liquides embryonnaires prélevés en début de gestation (jour 12) chez le lapin, occasionnent une stimulation de production de cytokines de type Th2 tel le GM-CSF par les PBL, contrairement à un effet inhibiteur observé sur la production d'IL-2, cytokine de type Th1 (Fortin et al., 1997). Par contre. I'hypothèse Th lm2 a quand même ses faiblesses, puisqu'une autre étude démontre que lorsque des LGL sont isolées de la décidue au premier trimestre de la gestation, elles produisent du GM-CSF, et leur production de GM-CSF peut être augmentée par une CO-cultureavec des cellules déciduales stromales ou par stimulation avec de l'IL-2 (Jokhi et al., 1994)' qui est généralement considéré comme une cytokine abortive. Cette contradiction ne peut que nous emmener à conclure que I'hypothèse Thl/Th2 est peut-être un peu simpliste et que dans les faits, les mécanismes impliqués sont beaucoup plus complexes. D'autres études devront inévitablement être mises de l'avant afin de mieux caractériser les mécanismes impliqués, pour éventuellement mieux comprendre ce qui se passe réellement à l'interface foeto-maternelle. 2.6 Hypothèse et objectifs La mortalité embryonnaire étant un phénomène important chez les truies en début de gestation, la présente étude cherchera à caractériser les mécanismes immunologiques pouvant être impliqués dans ce processus. Pour ce faire, nous tenterons d'identifier et de quantifier certains facteurs embryonnaires pouvant influencer la réponse immunitaire maternelle. La présence des molécules PGE;! et TGFP2 au niveau des "conceptus" de diverses espèces animales ainsi que leurs propriétés irnrnunomodulatrices bien connues en font d'excellents candidats. Nous avons formulé les hypothèses suivantes soit: 1) les facteurs immunomodulateurs PGE2 et TGFP2 sont présents dans le liquide allantoïque porcin et 2) chaque embryon peut moduler la réponse immunitaire maternelle de façon autonome afin de favoriser sa propre survie. Nous évaluerons la réponse immunitaire maternelle en termes de prolifération cellulaire (incorporation de thymidine tritiée), production de cytokines (IL-2 et GM-CSF), pourcentages de cellules C D ~ +et, nombre de récepteurs membranaires CD4. L'objectif de la présente étude est donc de tester la capacité des embryons porcins de modifier le phénotype des lymphocytes et/ou d'influencer la production de cytokines in vitro par les PBL. Nous tenterons par la suite d'établir un lien entre les concentrations de facteurs immunomodulateurs présents dans les embryons porcins et les effets sur la réponse immunitaire maternelle. Pour ce faire, nous utiliserons un système de culture hétérologue dans lequel des lymphocytes préparés à partir du sang périphérique humain sont incubés en présence de liquide dantoique porcin. Par la suite, les réponses aux traitements seront évaluées par cytofluonmétrie 3 technique , d'ELISA (dosage des (pourcentage de cellules et nombre de récepteurs ~ ~ 4par cytokines IL-2 et GM-CSF) ou par comptage radioactif (prolifération cellulaire). La quantification des facteurs immunomoduIateurs PGE2 et TGFp2 présents dans les différents liquides embryonnaires sera aussi évaluée par une technique d'ELISA. CHAPITRE 3 EFFET MODULATEUR DE LA PGE? - ET DU TGFp7- DES LIOUIDES ALLANTOÏDIENS PORCINS PRÉLEVÉS EN DÉBUT DE GESTATION. SUR LA PRODUCTION D'IL-2 ET DE GM-CSF PAR LES LYMPHOCYTES DU SANG PERIPKÉRIOUE. 3.1 Résumé PROBLÈME: Des pertes embryonnaires élevées sont généralement associées à la période de péri-attachement. La compréhension des mécanismes impliqués durant cette phase du développement est donc particulièrement importante, puisque les causes de ces pertes embryonnaires sont encore inconnues. Les pertes embryonnaires peuvent être reliées à différents facteurs dont un mauvais contrôle local de la réponse immunitaire maternelle. La prostaglandine E2 (PGE2) et le "transforming growth factor" (T.GFB2), deux facteurs immunomodulateurs, sont associés au succès de la gestation chez différentes espèces animales. L'objectif de cette étude est d'évaluer la concentration de PGE2 et de TGFP2 prisente dans des liquides allantoïdiens porcins pélevés aux jours 22-24 et 30 de la gestation chez le porc et de corréler ces valeurs avec des marqueurs de la réponse immunitaire maternelle. MÉTHODE: Des échantillons de liquides allantoïdiens ont été prélevés aux jours 22-24 et 30 de la gestation. Les concentrations de PGE2 et de TGFj32 ont été évaluées par des techniques d'ELISA. Des lymphocytes du sang périphérique (PBL) humain furent récoltés et cultivés en présence de liquides allantoïdiens. L'incorporation de [fH]thymidine ainsi que la production d'interleukine-2 (IL-2) et de "grariulocyte-macrophage colony stimulating factor" (GM-CSF) ont été quantifiées. RÉSULTATS: Sous les conditions expérimentales utilisées durant cette étude, 15% et 17.9% des pertes embryonnaires surviennent en jours 25 et 50 de la gestation respectivement. Les concentrations de PGE2 sont significativement plus élevées (pc0.000 1) aux jours 22-24 (n=61), comparativement au jour 30 (n=171). Tous les échantillons de liquides allantoïdiens testés inhibent la production d'IL-2par des lymphocytes stimulés à la concanavaline-A (ConA). Les effets des liquides allantoïdiens sur la production de GM-CSFsont très variables; certains échantillons démontrent une inhibition significative tandis que d'autres n'ont aucun effet. De plus, le retrait de la PGE2 par chromatographie d'affinité réduit significativement l'effect inhibiteur des liquides allantoïdiens. En jours 22-24, une forte corrélation est observée entre les concentrations de PGE2 des liquides allantoïdiens et l'inhibition d'incorporation de [3H]thymidine (R:-0.7; pc0.01) ainsi que l'inhibition de la production d'IL-2 ( R 4 . 7 ; p=0.0002). Une telle corrélation n'a pu être obtenue lorsque les PBL sont traités avec des liquides allantoïdiens prélevés en jour 30 de la gestation. CONCLUSION: Ces résultats suggèrent: 1) que le liquide allantoïdien porcin peut moduler la réponse immune; 2) que la PGE2 présente dans les liquides allantoïdiens aux joua 22-24 est impliquée dans I'inhibition de la prolifération des lymphocytes, ainsi que dans l'inhibition de la production d'IL-2 et de GM-CSF et finalement; 3) que la nature des facteurs immunorégulateurs retrouvés dans les liquides dlantoïdiens varie avec la progression de la gestation. 3.2 Abstract PROBLEM: Peri-implantation processes are critical for the control of litter size in several polytocous species. Understanding these processes is particularly relevant to the swine reproduction, as the exact causes for ernbryonic losses are not known. Embryonic losses might be related to an ineffective intrautenne control of the immune response towards the conceptus. Prostaglandin E2 (PGE2) and transforming growth factor 82 (TGFBz), two known immunoregulators, have been associated with successful reproduction. The objectives of the present study were to evaluate PGE2 and TGFp2 concentrations in porcine allantoic fluid taken on Day 22-24 and Day 30 of gestation, and to correlate these values with markers of the materna1 immune response. METHOD: Porcine allantoic fluid were sampled either on Days 22-24 or Day 30 of gestation. ELISA techniques were used to rneasure TGFp2 and PGE2 in these Buids. Human peripheral blood lymphocytes (PBL)were isolated, [3H]thymidine uptake assessed, and the in vitro production of interleukin-2 (IL-2) and granulocyte-macrophage colony stimulating factor (GM-CSF) tested by ELISA. RESULTS: Under the experimental conditicns iised in the present study, 15% and 17.9% of the concephls had died by Day 25 and Day 50 of gestation respectively. PGE2 concentrations were significantly higher (p<0.0001)on Days 22-24 (n=61) than on Day 30 (n=l7 1). AU tested samples of allantoic fluid inhibited concanavalin-A (ConA) induced IL-2 production by lymphocytes. The effect of allantoic fluid on GM-CSF production was highly variable, with some samples showing a significant inhibition while others having no effect. Furthemore, removal of PGE2 by affinity chromatography significantly reduced these inhibitory effects. On Day 22-24 a highly significant correlation is found between PGE2 concentrations in allantoic fluid and inhibition of either [îwthymidine uptake (R:-0.7;pc0.01) or IL-2 production (R:-0.7; p=0.0002). No such correlation could be demonstrated when PBL were tested with Day 30 dantoic fluid. CONCLUSION:These findings suggest that: 1) porcine dlantoic auid can regulate the immune response; 2) PGE2 in Day 22-24 allantoic fluid is involved in the inhibition of lymphocyte proliferation, and in IL-2 and GM-CSF production and 3) nature of the immunoregulatory factors found in allantoic fluid is evolving with progression of gestation. 3.3 Introduction Prenatal rnortality has been a problem for many yean in farm animals. In prolific sheep and pigs, it generdly occurs early in gestation and leads to a reduction of Iitter size (Wilmut et ai., 1986). Embryonic death also increases the time interval between successive births in animais having only one ovulation per estrus (Wilmut et al., 1986). In both cases the economic loss is substantial. A number of factors can influence prenatal survival; environmental factors such as nutrition and stress, genetic factors such as chromosomal aberration, and physiological factors such as insufficient luteal development, utenne space, and fertilization failure (Wilmut et al., 1986). Numerous reports in the literature suggest that embryo survival can also be related to the proper local modulation of the immune response. Recently, prostaglandin E2 (PGE2) and transforming growth factor P2 (TGFP2) have been proposed as embryonic messengers rnodulating the materna1 immune response thus leading to the creation of a uterine environment advantageous to the developing conceptus (Ouellette et al., 1997; Fortin et al., 1997; Emond et al., 1998). Prostaglandin E2 (PGE2) is found in the allantoic fluid of several animal species, including the horse (Weber et al., 1991), the rabbit (Dey et al., 1980; Pakrasi and Dey, 1982), the human (Holmes et al., 1990), and the pig (Lewis and Waterman, 1983). It suppresses the lytic activity of natural killer (NK) cells and lymphocyte-activated killer (LAK) ceils (Lala, 1989; Linnemeyer and Pollack, 1993; Yu et al., 1994; Bergeron et al., 1996). PGE2 also inhibits the production of IL-2 by lymphocytes (Parhar et al, 1989), and causes an increase in the production of granulocyte-macrophagecolony stimulating factor (GM-CSF) (Fortin et al., 1997; Emond et al., 1998). TGFP2 gene expression or antigen production has been observed during murine (Heine et al., 1987; Miller et al., 1989), ovine (Doré et al., 1995), porcine (Gupta et al., 1996), and bovine (Munson et al, 1996) embryonic development. It is found in rabbit (Ouellette et al., 1997) and cow (unpublished data) allantoic fluid. TGFP2 deficiency correlates with human recurrent spontaneous abortions (Lea et al., 1995). It stimulates GM-CSF production (Fortin et al., 1997) and downregulates CD4 membrane expression on human peripheral blood lymphocytes (Ouellette et al., 1997). Given that in pigs: 1) the number of potential offsprings is reduced by 35 to 45 % during gestation (Pope and First, 1985); 2 ) the exact causes of these losses are not known, and; 3) it is an animal species of economic interest, the pig has been chosen for the curent study. The specific objectives were: 1) to evaluate PGE2 and TGFBz concentrations in allantoic fluid of porcine embryos taken on Days 22-24 and 30 of gestation; 2) to rneasure the effects of alIantoic fluid on proliferation of peripheral blood lymphocytes (PBL),and IL-2 and GM-CSF production, and; 3) to correlate PGE2 concentrations to [3H]thymidine incorporation and interleukin-2 (IL-2) production by peripheral blood lymphocytes (PBL). Our results show that PGE2 concentrations are highly variable from one embryo to another and that on Days 22-24, PGE?contents of the allantoic fluids are highly correlated with the inhibition of DHJthyrnidine incorporation and IL-2 production by PBL.Results suggest that pig embryos can promote their survival by leading irnmunological cells to produce less of deûimental cytokines such as IL-2. 3.4 Materiais and methods Cycling nulliparous pigs, weighing approximately 100 kg, were housed individually and given Free access to food and water. The gilts were checked daily with a boar to determine the onset of estrus. The first day of estms was designated as Day O. On that day, the gilts were inserninated once with fresh pooled semen (Centre d'insémination Artif~cielledu Québec, inc.). 3.4.2 Collection of porcine aIIantoic fluid On Days 22-24 or 30 of pregnancy, the pigs were sacrificed (by stunning and exsanguination) and allantoic fluid was taken individually from al1 embryos present. On Day 2224 the uterine w d l was dissected near each of the embryos and the allantoic duid was aspirated with a syringe. On Day 30, a needle was introduced through the utenne waI1 at the apparent location of each of the embryos and allantoic fluid was aspirated with a vacutainer. Allantoic fluids from each embryo were individually fiozen and kept at -20°C. 3.4.3 Preparation of lymphocytes It has already been demonstrated in the rabbit that, under heterologous conditions, the dlantoic fluid prevents [3HJthymidine uptake by lymphocytes upon a Concanavalin A (ConA) stimulation (Pandian et al., 1988; Lambert e t aL, 1989). Since the enzyme-linked immunoadsorbent assay (ELISA) kits used in the present study could not detect porcine cytokines, the feasibility of working in heterologous conditions (human lymphocytes and porcine allantoic fluid) was tested. Under these conditions, human lymphocytes treated with porcine allantoic fluid collected on Day 22-24 or Day 30 of gestation, showed high viability, and the cells maintained their ability to proliferate in response to Con A after removal of the allantoic fluid (results not shown). Results of the heterologous Pmthymidine incorporation versus the homologous situation are shown in Figure 1. Given these results on viability of celIs and lymphoproliferative effect, the heterologous condition (Fig. 1B)was choosen for the rest of the study. Cmtrol: 13261 +/- 238.6 CPM Figure 1. Effects of porcine allanroic fluid on P~lthymidineincorporation in homoIogous conditions (A) as compared to heterologous conditions (B).Results are expressed as the mean f SEM of the percentage of the control (ConA) for 4 samples in homologous and heterologous conditions. *** pSO,001, significantly different from control (no allantoic fluid). Lymphocytes were obtained from blood of healthy human volunteers. The biood was collected in sterile tubes containing heparin and diluted two-fold with sterile Hank's balanced salt solution (HBSS) in 50 ml conical tubes (Falcon VWR Scientific, Toronto, Ontario). Peripheral blood lymphocytes (PBL)were obtained from this blood with an Kistopaque 1077 density gradient (Sigma Diagnostics, St. Louis, MO). Estopaque (10 ml) was added to the bottom of the tube with a sterile Pasteur pipette and the bibe was centrifuged at 800 x g for 20 minutes at room temperature. The PBL were then collected from the interface and washed twice with H B S S . Finally, the PBL were resuspended (4 x 106 celIs/ml) in RPMI 1640 containing glutamine (Gibco), streptomycin ( 100 nghl), penicillin ( 1 0 IU/ml) (dl nom ICN Biomedicals, Costa Mesa, CA), and 10% fetal bovine serum (Fl3S) (HyClone Laboratorïes, inc. Logan, UT). 3.4.4 Ce11 culture Aliquots of 50 pl of cell suspensions (2 x 105 cells per well) were placed in tissue culture plates with 96 Bat-bottom wells (Falcon) dong with 25 pl of ConA at a final concentration of 5 p g / d (Sigma). The allantoic fluid was allowed to thaw at room temperature and was filtered using a sterile Millipore filter (0.45 pm) to remove debris. Aliquots of 50 or 100 fl of allantoic fluid (22.2 or 44.4% (vlv) final concentration) or RPMI 1640 (negative control) were then added. Finally, RPMI containing 6.7% FBS was added to reach a total volume of 225 pI. Plates were incubated at 37°C in humidified atmosphere and 5% CO2, for the appropriate periods of time to allow maximal production of cytokines. Maximum production occured at 12 h for IL-2 and 72 h for GM-CSF(Fortin et al, 1997). [%Jthyrnidineincorporation was measured to v e n e the proliferation of lymphocytes upon Con A stimulation. After a 48 h incubation period, ten microliters of 0.02 mCi/ml of [3H]thyrnidine (2.0 Ci/mmol, NEN Research Products, Mississauga, Ontario) was added, and the incubation was continued for an additional 18 to 24 h. Cells were harvested on glass fiber filters (Fisher Scientific) with a multiple ceIl harvester (Fisher Scientific), and filter discs corresponding to each well were placed into scintillation vials with 3 ml of scintillation fluid (Amersham, Ontario). Incorporated radioactivity was then evaluated by a liquid scintillation counter. 3.4.5 Anti-PGE2 affinity column PGE2 in allantoic fluid was removed by &nity chromatography, using agarose conjugated sheep anti-PGE2 (generously provides by Dr. J.M. Moutquin, Laval University). The affinity column was constructed using 2 mg of anti-PGE2 coupled to 2 ml of agarose. To remove PGE2 from the ailantoic fluid, 1 mi of the fluid was mn twice through the anti-PGEz column. 3.4.6 Irnmunoassays Incubation media from the treated or control cells was coliected at appropriate time intervals and kept frozen at -20°C until analysed. IL-2and GM-CSF were assayed according to the manufacturer's guidelines using a double antibody sandwich in an ELISA kit for the detection of human cytokines (Biosources, Montreal). TGFBz measurements in heat-activated fhids were perfomed by a double antibody sandwich in an ELISA kit detecting human TGFp2 (R&D Systems, Minneapolis). In order to activate TGFB2, samples were heat-treated at 80°C for 10 minutes before being used. For PGE2 determination, 50 pl of allantoic fluid was placed in a 96-well microtiter plate coated with goat anti-rabbit (PGE2). Volumes of 50 pl of acetylcholinesterase-linked PGE2 (tracer) and 50 pl of rabbit anti-PGE2 were added to each sarnplePlates were incubated overnight at room temperature. Al1 wells were then washed with 10 mM phosphate buffer (pH 7.4) containing Tween 20 (0.05%) at pH 7.4. Ellman's reagent (200 pl) (69 m . acetylcholine and 54 rnM 5, 5'-dithio-bis [2-nitrobenzoic acid] in lOmM phosphate buffer, pH 7.4) was added to each well, and the samples were incubated in the dark on a shaker at room temperature before being read with a microplate reader at 410 nm. The interand intra-assay coeff~cientsof variation were 16% and IO%, respectively. 3.4.7 Statistical anaiysis Pearson correlation was performed between PGE2 and TGFP2 concentrations in ailantoic fiuid. Analysis of variance and Dunnet multiple comparison test were performed to detect statistical differences among treatments (InStat 2.1, Graph Pad Software). Pearson correlation was also performed between PGE2 concentration in dlantoic fluid and ~~Hlthyrnidine incorporation and I L 2 production by lymphocytes. To calculate linear regression, PGE2 was defined as the independant variable and Super Anova software (ABACUS Concepts inc. Berkeley, CA) was used. 3.5.1 Concentration of PGE2 and TGFP2 in porcine allantoic fluid Under the housing conditions used in the facilities at the Agriculture and Agrifood Canada Research Centre in Lennoxville, Qc., Canada, the typicd embryo mortdity, based on the number of corpora lutea, for nulliparous sows at Day 25 and Day 50 of gestation is 15% (Guay et al.. unpublished data) and 17.9% (Matte et al., 1993) respectively. Based on this observation, allantoic fiuids were coilected at Day 22-24 and Day 30 of gestation for this study. PGE2 concentrations were evaluated in allantoic fluids from 61 Day 22-24 embryos and from 171 Day 30 embryos. TGFP2 concentrations were also evaluated from 17 Day 22-24 and 8 Day 30 embryos (Table 1). TGFP2 concentrations were highly correlated with PGE2 concentrations in porcine allantoic fhids (pcû.000 1;r=0.875)on Day 22-24 of gestation. Interestingly, TGFp2 concentrations in allantoic fluid collected on Day 30 of gestation were ofien under the detection lirnit of the assay (4pg/ml). Concentrations of PGE2 were significantly lower on Day 30 than on Day 22-24 of gestation (p4.001). Table 1 : Concentrations of PGE2 and TGFPz in porcine allantoic fluid from Day 22-24 and Day 30 of gestation. immunosupressive factors AUantoic fluid Sarnple size -X+/-S.E. (P~/W apearson correlation test on Day 22-24 for PGE;!vs TGFP2 concentrations, r=0.875; ***p<o.ooo 1. bPGEz concentration of D-22-24 vs D-30, pcO.001. CTGFB2 concentration of D-22-24 vs D-30, p>0.05. 3.5.2 Effect of pig allantoic fluid on IL-2 and GM-CSF production Since high PGE2 concentrations were observed in porcine allantoic fiuid and since PGE2 is known to modulate PBL production of cytokines, the effect of allantoic fluids on the production of IL-2 and GM-CSF by human PBL was tested. A dose-dependent inhibition was observed for [ 3 ~ ] t h ~ m i d i nincorporation e (Fig. 2A), production of IL-2 (Fig. 2B), and production of GM-CSF (Fig. 2C). At the concentration of 22.2% (v/v) porcine allantoic fluid, either from Day 22-24 (Fig. 2D-F) or Day 30 (Fig. 2G-I) conceptuses, significantiy inhibited [3H]thymidine incorporation (Fig. 2D, G), IL-2 production (Fig. 2E, H), and GM-CSF production (Fig. 2F, I). In order to verify reproducibility of the data, five samples collected on Day 22-24 of gestation were tested against three different preparations of PBL and production of I L 2 and GM-CSF were measured. Although the suppressive capacity of the fluids varied from one sample to another and although the PBL were not from the sarne donors, for al1 samples tested, results were highly comparable (Fig. 3). The general trend is that the inhibition of IL-2 is more pronounced than the inhibition of GM-CSF. AI1 samples inhibited IL2 production (Fig. 3B) whereas the effect on GM-CSF production was highly variable, some samples showing a significant inhibition and others having no effect (Fïg. 3C). Allantoic fiuid (%, v/v) Figure 2. Efiects of porcine allantoic fluid collected at Day 22-24 (A-F) or Day 30 (G-1). on [3HJthymidine incorporation (A, D, G) and production of IL-2 (B. E,H) and GM-CSF (C, F. 1) by human lymphocytes in vitro. NS: negative control, non-stimulated celIs; ConA: positive control, ConcmavaIin A stimulated cells. * p10.05; ** plO.O1; *** pS0.001, significantly different from the controI (no allantoic fluid); ns, not significantly different from the control. PGE2 concentrations 9 (11) so (IO) 100 (11) 138 (3) 138 (7) Figure 3. Inter-expenment variations of [3~]thymidineincorporation (A) and IL-2 (B) and GMCSF (C) production by lymphocytes after treatment with allantoic fluid (final concentration 22,24, (v/v)). PGE2 concentration in each of the five samples being tested are indicated in the upper panel. Each bar represent the mean f SEM of the three repetitions. ** p10,01, significantly different from control (no allantoic fluid); ns, not significantly different from the control. 3.5.3 PGE2 in allantoic fluid is partly responsible for the inhibition of IL-2 and GM-CSF production In an attempt to test whether PGE;? could be involved in these inhibitory activities, PGE2 was removed from six samples of allantoic fluid using an anti-PGE2 agarose chromatography affinity coiumn. These samples were selected for their particulary strong properties to inhibit [3H]thyrnidine incorporation, and the production of IL-2 and GM-CSF (Fig.4A and 4B). Affinity adsorption removed 88% of the PGE2 content (results not shown), decreased the inhibitory effect of the allantoic fluid on DNA synthesis (Fig. 4A), and significantly reduced the inhibitory effects on the production of IL-2 and GM-CSF (Fig. 4B). Furthermore, addition of PGE2 in a dose-dependent fashion, dlowed the PGE2 affinity adsorbed ailantoic fluid to regain the ability to inhibit IL-2 and GM-CSFproduction by lymphocytes (results not shown). - + - - + lntact allantoic fluid Anti-PGE2 a f f i n e adsorbed allantoic fluid Figure 4. Treatment of lymphocytes with porcine allantoic fluid collected on Day 22-24 of gestation (final concentration 22,2%,(v/v)) adsorbed on an anti-PGE;! affinity column. Each bar represents the mean percentage of control f SEM (n=6). [3~thymidineuptake was measured (A) and the concentrations of I L 2 and GM-CSF (B).The [3~]thymidineuptake of the control (100%) was 11413+/-3005 CPM. Control cytokine production of IL-2and GM-CSF were 746.41+/-100 pglml and 790.28+/-89.56pg/ml respectively. * p10,05; *** pSO,001, significantly different from the control (no allantoic fluid); ns, not significantly different from the control; pS0,05; p50,01, significantly different from intact allantoic Buid. The role of PGE;! in these inhibition was fiuther confirmed when correlation analysis were performed on 37 samples from Day 22-24 and 163 samples from Day 30 concepnises. On Day 22-24, PGE2 concentrations were inversely correlated with either [3H]thymidine uptake (Fig.5A,pc0.01) and IL-2 production (Fig.6A, pd.0002). Conversety, neither inhibition of [3H]thyrnidine uptake (Fig. SB), nor inhibition of IL-2 production (Fig.6B) were correlated with PGE2 content in allantoic fluid coliected at Day 30 of gestation. Figure 5. Correlation between PGE2 concentrations and [3mthymidine incorporation. Results on 37 and 163 samples of allantoic fluid taken on Day 22-24(A)and on Day 30 (B) of gestation respectively, are expressed as percentage of the control (ConA). PGEZ pg/ml Figure 6. Correlation between PGE2 concentrations and IL-2 production by human lymphocytes in vitro. Results are illustrated for 37 samples of allantoic fluid taken on Day 22-24 (A) and 163 samples taken on Day 30 (B) of gestation. Results are expressed as percentage of the control (ConA). 3.6 Discussion 3.6.1 PGE2 and cytokine production This research reveals that allantoic fluid collected from pig embryos can modulate the production of cytokines by PBL.Although this result was predictable from the PGE2 content in porcine allantoic fluid, and from the known effects of PGE2 on cytokine production (Ouellette et al., 1997; Emond et al., 1998), this paper is showing for the first tirne that the mode1 of conceptus-utenne intertalk proposed for the bovine (Emond et al., 1998) might also apply to the porcine species. Al1 samples of allantoic fluid inhibited the production of IL-2 and [3mthymidine incorporation in a dose-dependant fashion, but several exceptions were observed with the effect on the production of GM-CSF- IL-2plays a crucial role in the clonal expansion of lymphocyte populations. It is considered as a rejection cytokine because it can induce detrimental effects on trophoblastic cells (Lala et al., 1990; King and Loke, 1990; Tangri and Raghupathy, 1993). For example, IL-2activated decidual NK cells destroying murine trophoblastic cells in vitro (Drake and Head, 1989). On the other hand, GM-CSF is beneficial to the pregnancy. Trophoblastic ceils of the ecto-placental cone of the mouse (Days 7.5 to 8.5) as wefl as mature placental cells (Days 11.5 to 13.5) proliferate in the presence of purified GM-CSF(Athanassakis et al., 1987; Armstrong and Chaouat, 1989). In the same way, human trophoblastic cells proliferate in vitro in reponse to GM-CSF (Loke et al., 1992). Similar data were recently reported with the bovine embryos (de Moraes and Hansen, 1997). These data are in agreement with the observation that injection of GM-CSF improves the chance of fetal survival in the CBA X DBAI2 matings (Chaouat et al., 1990; Chaouat et al., 1995). Recently, it has been demonstrated that production of GM-CSF by peripheral blood lymphocytes could be increased in the presence of rabbit blastocœlic fluid and that both PGE2 and TGFP2 were involved in this process (Fortin et al., 1997). This induction of GM-CSF production was obtained following pretreatrnent of lymphocytes (Fortin et al., 1997). Such stimulation was not demonstrated in the present study (results not shown). A mean TGFp2 concentration of 0.5 n g h l in pig allantoic fluid on Day 22-24 of gestation, and a 100 fold decrease at Day 30 are reported in the present study. These levels are not sufficiently high to stimulate GM-CSF production. In agreement with the tremendous decrease of TGF& levels with conceptus development, a group that investigated the immunohistochemical localization of TGF$s isoforms (TGFBl, TGFp2 and TGFp3) and their receptors in porcine concepnises, reported that expression of TGFBs varied as gestation progresses. TGFBs and their receptors declined frorn day 12 to 14 of gestation (Gupta et al., 1996). Since the mean concentration of TGFP2 in the porcine allantoic fluid strongly decreases from Day 22-24 to Day 30, it is likely that the peak of TGFB2 production, and therefore its effect on the immune cells, occurs before Day 22-24. This requires funher investigation. Along with their regulation of GM-CSF production, PGE2 and TGFp2 have been identified in other animal species (Bergeron et al., 1996; Ouellette et al., 1997; Fortin et al., 1997; Emond et al, 1998) as the molecular messengers responsible for the effects of allantoic fluid on ce11 proliferation, ce11 phenotype and cytokine production. These same messengers rnight be involved in the pig. Indeed, once PGE2 is removed, the inhibitory effect of porcine allantoic fluid on the production of IL-2 and GM-CSF is considerably reduced. Furthemore, the addition of PGE2 to PGE2-depleted aIlantoic fluid restored the inhibitory activity (results not shown). Finally, PGE2 concentrations in allantoic fluid are correlated with inhibition of IL-2 production. Taken together, these results support the hypothesis that PGE2 in the allantoic fluid from porcine embryos at Day 22-24 is an important inhibitor of IL-2 production by PBL in vitro. There are very large variations among sarnples in the concentrations of PGE2. These variations cannot account solely for the differences in the inhibitory effects of porcine allantoic fluids. Firstly, elution of porcine allantoic fluid on an anti-PGE2 afinity column, while eliminating most of the PGE2, does not completely abolish the inhibitory effects. Secondly, allantoic fluid #138(7) (Fig. 3) is the strongest inhibitory sample, but contains low concentrations of PGEz. Therefore, PGE2 from allantoic fluid is only partly responsible for the inhibitory effect. Other substances present in the Buid (Ball and Day, 1982; Cross and Roberts, 1989; Hamey and Bazer 1989) coufd also be involved. Those substances could possibly have an additional effect or act in concert with PGE2 to potentiate its effect. The absence of correlation between PGE2 concentrations in Day 30 samples and inhibition of [3H]thymidine uptake or inhibition of IL-2 production is in agreement with this possibility. 3.6.2 PGE2 and embryonic quality Relevance of the present data to reproductive success might be high. Studies in pigs have demonstrated that prenatal mortdity cm be divided into embryonic mortality (before Day 30) and fetd mortality (after Day 30) (Lambert and Williams, 1991). In this species, after correcting for fenilization failure, it is generally accepted that 20 to 30% of the embryos die dunng the first 30 days of gestation, with an additional 10 to 20% dying from days 40 to 100 (Zavy and Geisert? 1994). A 20% increased (from 15%to 17.9%) in embryo mortality has k e n observed from Day 25 to Day 50 of gestation according to data collected in Our laboratory (Guay et al., unpublished; Matte et al., 1993). Since at Day 22-24 and Day 30 of gestation a wide variability in PGE2 concentrations was obtained between embryos even within a same sow, it can be hypothesized that the healthiest ernbryos are producing more PGE2, leading to larger concentrations within the allantoic fluid. Recent data collected in Our laboratory have shown correlations between PGE2 concentrations in the allantoic fluid on Day 30 of pregnancy and the weight (rd.36) and length (r=0.38) of the embryos (Laforest et al., 1997). It has not been possible to perform a sirnilar study with Day 22-24 conceptuses. Nevertheless, the capacity for producing or inducing the production of PGE2 by the embryo could be related to the survival and the growth potential within the uterus. At the onset of the normal porcine gestation, it is known that an increase of MC activity in the endometrium occurs and has been associated with the presence of the conceptus (Croy et al., 1988; Yu et al., 1993). The maximal NK lytic activity is reached at Day 10 and 20 of gestation and becomes almost undetectable by Day 30 (Yu et al., 1993). There is therefore a parallelisrn between the NK activity observed in pregnant pig uterus and the concentrations of PGE2 - TGFP2 found in pig allantoic fluids. Knowing that PGE2 is a factor which induces NK cells to ddifferentiate into NK cells exhibiting reduced cytolytic activity (Linnerneyer and Pollack, 1993; Linnemeyer, 1996), and knowing that the cytotoxic activity in vitro of NK-like endornetrial cells isolated from the porcine uterus can be inhibited with PGE2 (Yu et al., 1994), it is proposed that the high PGE;! concentrations found in pig allantoic fluids at Day 22-24 induces functional transformation of NK cells and results, later on in gestation, in much less lytic NK cells such as observed at Day 30 by Yu et al. (1993). Secondly, knowing that each embryo contains a distinct concentration of PGE2 within its own allantoic fluid, it is tempting to speculate that conditioning of NK activity, as well as local modulation of cytokine production, varies from one conceptus to an other and again that variations in the concentration of PGE2 are associated with the growth and eventudly the survival of the conceptus. Lastly, current data were obtained under heterologous experirnental conditions. The rational for testing porcine bioIogicaI materiai on hurnan PBL has been indicated in section Materid and Methods. Since PGE2 induces a similar pattern of cytokine production or gene expression using either human PBL (Fortin et al, 1997) or bovine PBL (Emond et al, I998), it is Iikely that the results of this study would have been sirniIar with porcine PBL. In summary, a better understanding of the local immunmndocrine crosstalk between the conceptus and the endometriurn may lead to new explanations regarding the causes of penimplantation rnortality. The great variability in PGEz concentrations and the correlation between PGE2 concentrations of Day 22-24 dantoic fluid and IL2 production by PBL, further suggest that the control of the matemal immune response varies from one conceptus to anoîher and might be reIated to the embryo quality. 3.7 Acknowiedgrnents The authors wish to thank Lise Lacouline for her technical support and Grant Vandenberg for prereviewing this manuscript. This work was supported by CORPAQ (# 3860)and NSERC. 45 3.8 References Armstrong DT, Chaouat G: Effects of lymphokines and immune complexes on murine placental cell growth in vitro. Bi01 Reprod 1989;40:466-474. Athanassakis 1, Bleackley RC, Paetkau V, Guilbert L, Barr PJ, Wegmann TG: The immunostirnulatory effect of T cells and T c e k lymphokines on murine fetally derived placental cells. J Immunol 1987; 138:37-44. Bal1 GD, Day BN: Bilateral luteai maintenance in unilateral pregnant pigs with infusions of embryonic extracts. J Anim Sci 1982;54 1: 142- 149. Bergeron D, Audette M, Lambert RD: Regulation of leucocyte interleukin 2 and interleukin 2 receptor gene expression by rabbit blastocœlic fluid. J Reprod Fertil 1996; 106:143-151. Chaouat G, Assd-Meliani A, Marta1 J, Raghupathy R, Elliot J, Mosmann T, Wegman TG: IL10 prevents nanirally occuring fetal loss in the CBA X DBA.12 mating combination, and local defect in IL- IO production in this abortion-prone combination is corrected by in vivo injection of INF2.J Immunol 1995; 1 S M 2 6 1-4268. Chaouat G, Menu E, Clark DA, Dy M, Minkowski M, Wegman TG: Control of fetal survival in CBA X DBA/2 mice by lymphokine therapy. J Reprod Feail 1990; 89:447-458. Cross JC, Roberts RM: Porcine conceptuses secrete an interferon during the preattachment period of early pregnancy. Biol Reprod 1989;40: 1109-1 1 18. Croy BA, Waterf~eldA, Wood W, King GJ: Normal murine and porcine embryos recruit NK cells to the uterus. CeU Immunol 1988 ; 1 15:471-480. de Moraes A M , Hansen PJ: Granulocyte-macrophage Colony-stimulating factor promotes developrnent of in vitro produced bovine embryos. Bi01 Reprod 1997;57:1060-1065. Dey SK,Chien SM, Cox CL, Crist RD: Prostaglandin synthesis in the rabbit blastocyst. Prostaglandins 1980;19:449-453. Doré JE, Wilkinson JE, Godkin JD: Early gestational expression of transforrning growth factor beta isofoms by the ovine placenta. Bio: Reprod 1995; 53: 143-152. Drake BL, Head JR: Munne trophoblast can be killed by lymphokine-activated killer cells. J Immunol 1989; 143:9-14. Emond V, Fortier MA, Murphy BD, Lambert RD: Prostaglandine ES regulate both interleukin-2 and granulocyte-macrophage colony-stimulating factor gene expression in bovine lymphocytes. Biol Reprod 1998; 58: 143-15 1. Fortin M, Ouellette M-J, Lambert RD: TGFp2 and PGE2 in rabbit blastocoelic fluid can modulate GM-CSF production by human lymphocytes. Am J Reprod Immun01 1997; 38: 129139. Gupta A, Bazer FW, Anderson LJ: Differential expression of Beta Transforming Growth Factors (TGFB 1 , TGFB2 and TGFP3) and their receptors (Type I and JI)in peri-implantation porcine conceptuses. Bi01 Reprod 1996; 55796-802. Harney JI?, Bazer FW:Effect of porcine conceptus secretory proteins on interestrous interval and uterine secretion of prostaglandins. Biol Reprod 1989; 4 1:277-284. Heine UI,Munoz EF, Randers KC, Ellingsworth LR. Peter Lam H-Y, Thompson NL,Roberts AB, Sporn MB: Role of transforrning growth factor-6 in the development of the mouse embryo. J Ce11 Bi01 1987; 105:2861-2876. Holmes PV, Sjogren A, Hamberger L: Prostaglandin-E2 released by pre-implantation human conceptuses. J Reprod Immunol 1990; 17:79-86. King A, Loke YW: Human trophoblast and JEG choriocarcinoma cells are sensitive to lysis by IL-2-stimulated decidual NK cells. Ce11 Immun01 1990; 129:435-448. Laforest JP,Giguère A, Girard CL, Lambert RD, Matte J: Prostaglandin E2 might be involved in the development and survival of the porcine embryo in early gestation. Fifth international conference on pig reproduction. Program and abstract book, Kerkrade, The Netherlands 1997; p 115 abstr. Lala PK: Similarities between immunoregulation in pregnancy and in malignancy: the role of prostaglandin E2.Am J Reprod Immun01 1989; 20: 147- 152. Lala PK, Scodras JM, Graham CH, Lysiak JI, Parhar RS: Activation of materna1 kiiler cells in the pregnant utems with chronic indornethacin therapy, IL-2 therapy, or a combination therapy is associated with embryonic demise. Cell Irnmunol 1990; 127:368-38 1. Lambert E, Williams DH: The extent and timing of prenatal loss in gilt. Theriogenology 1991; 36:655-665. Lambert RD, Roy R, Morin C,Beaudoin J, Langlais J, Pandian AMC: Modulation of the immunosuppressive activities by blastocœlic fluid during rabbit pregnancy. J Reprod Immunol 1989; 15:257-268. Lea RG, Underwood J, Flanders KC, Hirte H, Banwatt D, Finotto S, Ohno 1, Daya S, Harley C, Michel M, Mowbray .TF, Clark DA: A subset of patients with recurrent spontaneous abortion is deficient in transforming growth factor pz-producing "suppressor cells" in uterine tissue near the placental attachment site. Am J Reprod Irnmunol 1995; 3452-64. Lewis GS, Wateman RA: Metabolism of arachidonic acid in vitro by porcine blastocysts and endometrium. Prostaglandins 1983; 2587 1-880. Linnemeyer PA: The differentiation of naturai killer cells at utenne implantation sites in mice. Am J Reprod Immunol 1996; 35448 abstr. Linnemeyer PA, Pollack SB: Prostaglandin E2-induced changes in the phenotype, morphology, and lytic activity of IL-2-activated naturd killer cells. J Immunol 1993; 150:3747-3754. Loke YW, King A, Gardner L, Carter NP: Evidence for the expression of granulocytemacrophage colony-stimulating factor receptors by human fust trimester extravillous tropkoblast and its response to this cytokine. J Reprod Immun01 1992; 22:33-45. Matte JJ, Girard CL, and TrembIay GF: Effect of long-term addition of folic acid on folate status, growth performance, p u b e attainment, ~ and reproductive capacity of gilts. J Anim Sci 1993; 71: 151-157. Miller DA, Lee A, Pelton RW, Chen EY, Moses HL, Derynck R: Murine transforming growth factor-P2 cDNA sequence and expression in adult tissues and embryos. Mol endocrinol 1989; 3: 1108-1 1 14. Munson L, Wilhite A, Boltz VF, Wilkinson JE: Transforming growth factor placentas. Bi01 Reprod 1996; 55:748-755. P in bovine Ouektte M-J, Dubois CM, Bergeron D, Roy R, Lambert RD: TGFP2 in rabbit blastocœlic fluid regulates CD4 membrane expression: possible role in the success of gestation. Am J Reprod Immunol 1997; 37: 125-136, Pakrasi PL, Dey SK: Blastocyst is the source of prostaglandins in the implantation site in the rabbit. Prostaghndins 1982;24:73-77. Pandian AMC, Lambert RD, Roy R: Irnmunosuppressive effects of rabbit blastocœlic fluid and embryo culture medium. J Reprod Immunol 1988; 13:221-234. Parhar RS, Yagel S, LaIa PK: PGE2-Mediated Immunosupression by first trimester human decidual cells blocks activation of maternai leukocytes in the decidua with potential antitrophoblast activity. Cell Immun01 1989;120:6 1-74. Pope WF, First NL: Factors afTecting the sumival of pig embryo. Theriogenology 1985; 23:911OS. Tangri S, Raghupathy R: Expression of cytokines in placentas of mice undergoing irnrnunologicaUy mediated spontaneous fetal resorptions. Bi01 Reprod 1993; 49:850-856. Weber JA, Freeman DA, Vanderwall DK,Woods GL: Prostaglandin E2 secretion by oviductal transport-stage equine embryos. Bi01 Reprod 1991;45:54O-543. Wilmut 1, Sales DI, Ashworth U:Matemal and ernbryonic factors associated with prenatal loss in marnrnals. J Reprod Fertil 1986; 76:85 1-864Yu 2, Croy BA, Chapeau C, King GJ: EIevated endomeaial naniral killer ceIl activity during early porcine pregnancy is conceptus-mediated. J Reprod Immun01 1993; 24:153- 164. Yu 2,Croy BA, King GJ: Lysis of trophoblast cells by endometrial natural killer-like effector cells in vitro does not require interleukin-2. Bi01 Reprod 1994; 51:1279-1284. Zavy MT, Geisert RD: Embryonic mortality in domestic species. CRS press 1994; 53-77. CHAPITRE 4 DISCUSSION GÉNÉRALE La pérennité des espèces puise sa fécondité dans la reproduction des individus. Les mécanismes biologiques, biochimiques, irnmunologiques et hormonaux générant la gestation et le développement foetal, sont parmi les plus beaux, mais aussi parmi les plus complexes que la nature nous offre. Plusieurs facteurs d'origine foetale et/ou maternelle semblent présents dans l'environnement du foetus afin de créer un équilibre dynamique favorisant son développement et son maintien. Plusieurs études suggèrent que lors de la gestation, différents mécanismes immunosuppresseurs sont mis en place à l'interface foeto-maternelle, afin de réduire l'activité de cellules effectrices cytotoxiques pouvant avoir des conséquences néfastes pour la survie du "conceptus". Les résultats présentés dans ce mémoire viennent appuyer cette hypothèse et nous démontrent que l'embryon porcin peut avoir un rôle actif à jouer dans son propre maintien et développement, en exerçant un contrôle sur la réponse immunitaire maternelle. En effet, les résultats cette recherche montrent une inhibition de la prolifération cellulaire ainsi qu'une inhibition de la production d'IL-2, par les lymphocytes, lorsque du liquide embryonnaire prélevé en début de gestation (J-22-24) est mis en contact avec des lymphocytes du sang périphérique. On sait que l'IL-2 est impliqué dans l'expansion clonale des lymphocytes T et dans l'activation des cellules LGL (King et Loke, 1990). L'IL-2pourrait donc avoir des effets délétères sur l'embryon. On peut supposer qu'en début de gestation chez le porc, l'inhibition de la prolifération cellulaire et de la production de cytokines par les lymphocytes seraient en quelque sorte une stratégie utilisée par les embryons, afin d'empêcher le rejet immunitaire matemel qui est généralement associé à la mortalité embryonnaire. De plus, les résultats démontrent que le contrôle exercé sur la réponse ûnmunitaire maternelle est relié à la présence du facteur immunomodulateur PGE2, présent dans les liquides embryonnaires. Effectivement, les inhibitions observées sont corrélées de façon très significative aux concentrations de PGE2 présentes dans les liquides embryonnaires porcins. Ces derniers résultats viennent confirmer les premiers résultats obtenus par chromatographie d'affinité à l'effet que le retrait de la PGE2 des liquides embryonnaires induit une réduction de l'effet inhibiteur des liquides allantoïdiens porcins sur les lymphocytes. Ainsi, d'après l'étroitesse de la relation qui existe entre les concentrations de PGE2 des liquides embryonnaires et les effets inhibiteurs observables sur les lymphocytes, nous serons tentés de conclure que chaque embryon possède bien ses propres concentrations de facteurs immunosuppresseurs afin de lui permettre son propre contrôle, donc sa propre survie dans l'environnement matemel utérin, potentiellement hostile. Ces résultats sont aussi en accord avec des études effectuées chez la souris et l'humain à l'effet que la PGE2 occasionne une suppression locale de l'activité des cellules NK deciduales (Lala, 1989; Linnerneyer et Pollack, 1993) et LAK (Bergeron et al., 1996). Ces conclusions sont aussi en accord avec une autre étude effectuée dans nos laboratoires et qui démontre que les concentrations de PGE2 présentes dans les liquides allantoïdiens porcins au jour 30 sont corrélées aux poids (R= 0.36) ainsi qu'à Ia longueur (R = 0.38) des embryons (Laforest et al., 1997). Cette étude démontre aussi clairement que certains embryons sont plus efficaces que d'autres dans l'exercice de ce contrôle de la réponse immunitaire maternelle. En effet, nos résultats (chapitre 3, figure 3) montrent que certains embryons inhibent très efficacement la production d'Il-2, une cytokine Thl, avec en plus, une inhibition très significative de la production de GM-CSF, une cytokine Th2 pouvant avoir des effets bénéfiques sur la croissance foetale. On remarquera, cependant, qu'une plus grande majorité des embryons inhibe la production d'IL-2, sans pour autant avoir d'effet inhibiteur signifkatif sur le production de GMCSF. Cette observation peut nous emmener à penser que seuls les embryons qui réussissent à influencer de façon négative la production d'IL-2, sans affecter significativementla production de GM-CSF,auront de meilleures chances de survie dans l'environnement utérin. Ces données vont dans le même sens que l'hypothèse de l'immunotropisme, qui propose que la production locale de certaines cytokines ou facteurs de croissance peut avoir des effets bénéfiques sur le développement embryonnaire (Wegmann, 1993). Un déplacement de l'équilibre des cytokines ThîlTh 1 favoriserait ainsi un environnement utérin propice au développement foetal. Des études effectuées antérieurement dans nos laboratoires ont permis de démontrer une augmentation de la production de GM-CSFpar Les lymphocytes, lorsqu'ils sont incubés en présence de liquides embryonnaires de lapin (Fortin et al., 1997). Cette augmentation fut obtenue après un pré-traitement des lymphocytes et fût associée à la présence de PGE2 et de TGFp2 dans les liquides embryonnaires. Dans la présente étude, effectuée à partir d'embryons porcins, des expériences en pré-traitement n'ont pu permettre l'observation d'une telle augmentation de production de GM-CSF(annexe, Figure 1). De plus, d'autres études chez le lapin démontrent que le liquide blastocoelique entraîne une "downregulation" de l'expression membranaire des CD4 ainsi que du pourcentage des cellules CD$+(Ouellette et al., 1997). Cette diminution a été associée à la présence de TGFp2 dans les Iiquides embryonnaires. La présente étude sur les cellules C D ~ + n'a pu permettre de mettre en évidence une diminution de l'expression membranaire ou du pourcentage de cellules CD4+ (annexe, Figure 2). Pour expliquer ces observations, nous croyons que la modulation de la réponse immune ou du phénotype des leucocytes peut varier d'une espèce à l'autre, dépendamment de leur type de placentation. Cette spécificité d'espèce pourrait être reliée au contenu en facteurs immunomodulateurs, présents dans les Liquides embryonnaires. En effet, la présente étude nous démontre de très faibles concentrations de TGFP2 dans les liquides porcins soit d'environ 0.5 n g h l (chapitre 3, tableau l), comparativement à des concentrations beaucoup plus élevées (2.5 n g / d ) dans les Liquides embryonnaires de lapins (Oueuette et al., 1997). Cette étude aura également permis de constater, qu'en plus des variations interembryonnaires existantes en termes de concentrations de facteurs immunomodulateurs dans les liquides aliantoïques porcins, il existe aussi des variations reliées au jour de gestation. Cette donnée est très intéressante puisque contrairement au jour 22-24 de la gestation, on remarque qu'au jour 30, il n'y a pas de corrélation entre les concentrations de PGE2 des liquides embryonnaires et les effets inhibiteurs sur la réponse lymphocytaire. Ce résultat nous amène à croire que de plus grandes concentrations de PGE2 sont nécessaires lors de la période d'attachement de l'embryon à l'endomètre maternel et lors du début du développement placentaire, afin de favoriser ces processus. Chez le porc, le début de la période d'attachement et de placentation se situe entre les jours 13 et 20 (King et Loke, 1990), ce qui est en accord avec nos résultats qui démontrent de plus fortes concentrations de PGE2 en jour 22-24, comparativement au jour 30 de la gestation. D'autres études seront cependant nécessaires afin de comprendre le rôle exact de la PGE2 dans le processus d'implantation du "conceptus", et dans le développement embryonnaire durant la gestation. Des différences dans le développement embryonnaire ont déjà été associées a la survie embryonnaire (Pope et First, 1985). Les résultats de la présente étude viennent donc confirmer, mais de façon immunologique cette hypothèse, à l'effet que les embryons les plus développés auraient de meilleures chances de survie dans un environnement potentiellement hostiIe. Ainsi, les résultats présentés dans ce mémoire confiurnent bien I'hypothèse de départ à l'effet que chaque embryon exerce un contrôle autonome sur la réponse immunitaire maternelle. Pour conclure, nous pouvons dire qu'en début de gestation. I'infkration cellulaire exige la mise en place de différents mécanismes immunoréguIateurs localisés, stimulateurs et/ou suppresseurs. L'équilibre de ces mécanismes à l'interface foeto-maternelle serait vraisemblablement responsable de la survie ou de la mortalité des embryons dans un utérus gestant. De plus, la présence de facteurs modulateurs de la réponse immunitaire maternelle au niveau des liquides embryonnaires porcins, suggère la participation active des embryons à ces mécanismes d'irnrnunorégulation locale, essentiels à la survie des embryons dans l'utérus. Les très fortes variations inter-embryonnaires en termes de facteurs imrnunomodulateurs et les très fortes corrélations entre les concentrations de ces facteurs et l'inhibition de la réponse lymphocytaire maternelle suggèrent également, que chaque embryon peut exercer un contrôle sur la réponse cellulaire maternelle, de façon indépendante. D'autres expériences seront requises, afin de mieux caractériser les mécanismes à l'origine de la tolérance de t'embryon par sa mère et af3n de comprendre davantage les défaillances immunitaires pouvant être reliées aux avortements spontanés. Des études sur la PGE2 et ses implications au niveau du maintien, du développement foetal ainsi que la découverte d'autres facteurs pouvant être impliqués dans le contrôle de la réponse immunitaire maternelle, permettront probablement un jour de développer une immunothérapie efficace, afin de prévenir ou de diminuer les phénomènes de rejets immunitaires ou de mortalité embryonnaire. De telles recherches permettront aussi de développer des techniques d'évaluation de la qualité embryonnaire, afin d'améliorer les techniques de transfert embryonnaire, pour éventuellement réduire les grossesses multiples causées par le transfert de plusieurs embryons. LISTE DES OUVRAGES CITÉS Arceci, R.J., Shanahan, F., Stanley, R.E.,Pollard, J.W. (1989). Temporal expression and location of colony-stimulating factor4 (CSF-1) and its receptor in the female reproductive tract are consistent with CSF-1 regulated placental development. PNAS USA, 86,88 18-8822. Armstrong, D.T.,Chaouat, G. (1989). Effects of lymphokines and immune complexes on munne placental celI growth in vitro. Bi01 Reprod, 40,466-474. Athanassakis, I., BleacWey, R.C., Paetkau, V., Guilbert, L., Barr, P.J., Wegmann, T.G. (1987). The immunostirnulatory effect of T cells and T cells lymphokines on murine fetally derived placental ceIls. J Immunoi, 138, 37-44. Baines, M.G., Gendron, RL. (1993). Natural and experimental animal models of reproductive failure. In: Chaouat, G. (ed.), Immunology of pregnancy, CRC Press, p. 173-203. Beer, A.E., Billingham, R.E. (1976). The immunobiology of mammaIian reproduction. Prentice-Hall, Englewood Cliffs, NJ, 238 pp. Beer, A.E., Scott, J.R., Billingham, R.E. (1975). Histocompatibility and maternal immunological status as determinants of fetd-placental size and litter weight in rodents. J Exp Med, 142, 180-198, Bergeron, D., OueIlette, M.-J., Lambert, R.D. (1996). PGE2 but not TGFP2 in rabbit blastocœfic fluid regulate the cytotoxic activities of NK and LAIS cells. Bi01 Reprod, soumis. Billington, W.D- (1987). Evidence for trophoblast irnmunogenicity in the induction of maternal alloantibody formation in munne pregnancy. In: Reproductive immunology: Matemo-fetal relationship, Colloque INSERM,154, 17-23. Billington, W.D. (1989). Materna1 immune response to pregnancy. Reprod Fertil Dev, 1, 183191. Billington, W.D., Burrows, FJ. (1986). The rat placenta expresses patemal class I major histocompatibility antigens. J Reprod Immunol, 9 (2), 155- 160. Bulmer, J.N. (1993). Cells of imrnunological relevance in the human uterus during pregnancy. In: Chaouat, G. (ed.), Immunology of pregnancy, CRC Press, p. 61-78. Bulmer, J.N., Johnson, P.M. (1986). The T-lymphocyte population in fust-tnmester human decidua does not express the interleukin-2 receptor. Irnrnunology, 58,685-687. Bulmer, LN., Morrison, L., Longfellow, M., Ritson, A., Pace, D. (1991). Granulated lymphocytes in human endometrium: Histochemical and imrnunohistochernicaI studies. Hum Reprod, 6, 79 1-798. Carter, J. (1984). The matemal immunological response during pregnancy. In: Clarke, J.R. (ed.), Oxford reviews on reproductive biology, 6,47-128. Chaouat, G. (1993). The roots of the problem: "The fetal allograft". In: Chaouat, G. (ed.), Immunology of pregnancy, CRC Press, p. 1-17. Chaouat, G., Menu, E., CIark, D.A., Dy, M., Minkowski, M., Wegrnann, T.G. (1990). Control of fetal survival in CBA X DBA.2 mice by lymphokine therapy. J Reprod Fertil, 89, 447-458. Chouaib, S., Welte, K., Mertelsmann, R. (1985). Prostaglandin E2 acts at two distinct pathways of T lymphocyte activation: Inhibition of interleukin 2 production and down-regdation of transfemne receptor expression. J ~ u n o l 135, . 1172. Clark, D.A., Chaput, A., Slapsys, R.M., Brierley, J., Daya, S., Allardice, R. (1987). Suppressor cells in the uterus. In: Gill, T.J.,Wegmann, T.G.(eds.), Immunoregulation and fetd survival, Oxford University Press, New York, p. 63-77. Clark, D.A., Vince, G., FIanders, K.C.,Hirte, H., Starkey, P. (1994). CD56+ lymphoid cells in human first trimester pregnancy decidua as a source of novel transforming growth factor B2related immunosuppressive factors. Hum Reprod, 9,2270-2277. Cresswell, P. (1994). Assembly, transport, and function of MHC class II molecules. Ann rev irnmunol, 12, 259-293. Croy, B.A., Gambel, P., Rossant, J., Wegmann, T.G. (1985). Characterization of murine decidual natural killer (NK) cells and their relevance to the success of pregnancy. CelI h u n o l , 93, 3 15-326. Croy, B.A., Waterfield, A., Wood, W., King, G.J.(1988). Normal murine and porcine embryos recruit NK cells to the uterus. Ce11 Immunol, 115,471-480. Croy, B.A., Wood, W., King, G.J. (1987). Evahation of intrauterine immune suppression during pregnancy in a species with epitheliochorial placentation. J Immunol, 139, 1088-1095. Dey, S.K., Chien, S.M., Cox, C.L., Crist, R.D.(1980). Prostaglandin synthesis in the rabbit blastocyst. Prostaglandins, 19,44943. Doré, J.E., Wilkinson, J.E., Godkin, J.D. (1995). Eariy gestational expression of transfodng growth factor beta isoforms by the ovine placenta. Bi01 Reprod, 53, 143-152. Drake, B.L., Head, J.R.(1989). Murine trophoblast can be killed by lymphokine-activated killer cells. J Immunol, 143, 9-14. Ellis, S. (1990).HLA G: At the interface. A m J Reprod Immunol, 23,84-86. Emond, V., Fortier, M.A., Murphy, B.D., Lambert, R D . (1998). Prostaglandine E2 regulate both interleukin-2 and granulocyte-macrophage colony-stimulating factor gene expression in bovine lymphocytes. Bi01 Reprod, 58, 143- 151. Fiorentino, D.F., Bond, M.W., Mosmann, T.R. (1989). Two types of mouse T helper ce11 IV. Th2 clones secrete a factor that inhibits cytokine production by Th1 clones. J Exp Med, 170, 208 1-2095. Fortin, M., Ouellette, M.-J., Lambert, R.D. (1997). TGFP2 and PGE;!in rabbit blastocoelic fluid can modulate GM-CSF production by human lymphocytes. Am J Reprod Lmmunol, 38, 129-139. Gajewski, T.F., Fitch, F.W. (1988). Anti-proliferative effect of INF-gamma in immune regdation. 1. INF-gamma inhibits the proliferation of Th2 but not Th1 murine helper T lymphocyte clones. J b u n o l , 140,4245. Gendron, R.L., Baines, M.G. (1988). Infiltrating decidual natural killer cells are associated with spontaneous abortion in mice. CeIl Immunol, 113,26 1-267. Gottshall, S.L., Hansen, P.J. (1992). Regulation of leucocyte subpopulations in the sheep endornetrium by progesterone. Immnol, 76,636-641. Guillomot, M., Fléchon, J.-E., Leroy, F. (1991). Développement et implantation du blastocyste. Dans: Thibault, C., Levasseur, MC. (eds.), La reproduction chez les mammiferes et l'homme, Edition Marketing, Park,p. 377-401. Guimond, M.-J., Wang, B., Croy, B.A. (1998). Engraftment of bone rnarrow from severe combined imrnunodeficient (SCID) mice reverses the reproductive deficits in naturd killer celldeficient tge26 mice. J Exp Med, 187 (Z),217-223. Gupta, A., Bazer, F.W., Anderson, L.J. (1996). Differential expression of beta transfonning growth factors (TGFBI, TGFl32 and TGFB3) and their receptors (type 1 and II) in periimplantation porcine conceptuses. Biol Reprod, 55,796-802. Hansen, P.J.,Bazer, F.W., Segerson, E.C.(1986). Skin gr& sunival in the uterine lumen of ewes treated with progesterone. Am J Reprod Immun01 Microbiol, 12,48-54. Hansen, P.J., Stephenson, D.C., Low,B.G., Newton, GR. (1989). Modification of immune function during pregnancy by products of the sheep uterus and conceptus. J Reprod Fert, 37, 55-6 1, Head, J.R., BilIingharn, R.E. (1986). Conceming the immunology of the uterus. Am J Reprod Irnmunol Microbiol, 10,76-8 1. Heine, U.I., Munoz, E.F., Randers, K.C.,Ellingsworth, L.R., Peter Lam, H.-Y., Thompson, N.L., Roberts, A.B., Sporn, M.B. (1987). Role of transfomiing growth factor-B in the development of the mouse embryo. J Cell Biol, 105 (6),286 1-2876. Holmes, P.V., Sjogren, A., Hamberger, L. (1990). Prostaglandin-E2 released by preimplantation human conceptuses. J Reprod Immunol, 17,79-86. Hunt, J.S. (1989). Cytokine networks in the uteroplacental unit: macrophages as pivotal regulatory cells. J Reprod Immunol, 16, 1-17. Hunt, J.S. (1994). Imrnunologicaily relevant cells in the utems. Bi01 Reprod, 50,461-466. -Hunt, J.S., Pollard, J.W. (1992). Macrophages in the uterus and placenta. In: Gordon, S., Russell, S.W. (eds.), Current topics in rnicrobiology irnmunology, 181, 36-63. James, D.A. (1965). Effects of antigenic dissirnilarity between mother and fetus on placental size in mice. Nature, 205, 6 13-614. Jokhi, P.P., King, A., Loke, Y.W. (1994). Production of granulocyte-macrophage colonystimuiating factor by human trophoblast cells and by decidual large granular lymphocytes. Hum Reprod, 9, 1660- 1669. Kabawat, S.E., Mostoufi-Zadeh, M., Driscoll, S.G., Bhan, A.K. (1985). Implantation site in normal pregnancy. Am J Pathol, 118,76-84. Kawata, M., Pames, J.R., Henenberg, L.A. (1984). Transcriptional control of KLA-A,B,C antigen in human placental cytotrophoblast isolated using trophoblast- and HLA-specific 59 monoclonal antibodies and the fluorescence-activated cell sorter. J Exp Med, 160 (3), 633-651. Kim, Y.B., Huh, N.D., Koren, H.S., Amos, D.B. (1980)- Naturd killing (NK) an antibodydependent cellular cytotoxicity (ADCC) in specific pathogen-fi-ee (SPF) miniature and germfree piglets. 1. Comparaison of NK and ADCC. J Immunol, 125,755-762. King, A., Birkby, C., Loke, Y.W. (1989). Early human decidual cells exhibit NK activity against the K562 ce11 line but not against first trimester trophoblast. Ce11 Immunol, 118, 337344. King, A., Loke, Y.W. (1990). Human trophoblast and JEG chonocarcinorna cells are sensitive to lysis by IL-2-stimulated decidual NK cells. Ce11 Immunol, 129,435448. King, A., Wheeler, R., Carter, N.P., Francis, D.P.,Loke, Y.W. (1992). The response of human decidud leucocytes to IL-2. CelIular immunlogy, 141,409-421. King, A., Wooding, P., Gardner, L., Loke, Y.W. (1993). Expression of perfonn, granzyme A and TIA- 1 by human uterïne CD56+ NK cells implies they are activated and capable of effector functions. Hum Reprod, 8,206 1-2067. King, G.J. (1988). Reduction in uterine intra-epithelial lymphocytes during early gestation in pigs. J Reprod hmunol, 14,41-46. Koch, E. (1985). Establishment of pregnancy and its immunological implications in the pig. J Reprod Fert, suppl, 33, 65-8 1. Kraeling, R-R., Rampacek, G.B., Fiorello, N.A. (1985). Inhibition of pregnancy with indomethacin in mature gilts and prepuberal gilts induced to ovulate. Bi01 Reprod, 32, 105-110. Lala, P.K.(1989). Similarities between immunoregulation in pregnancy and in malignancy: the role of prostaglandin E2. Am J Reprod IrnmunoI, 20, 147-152. Laforest, J.-P., Giguère, A., Girard, C.L., Lambert, R.D., Matte, J. (1997). Prostaglandin E2 rnight be involved in the development and survivai of the porcine embryo in early gestation. Fift international conference on pig reproduction. Program and abstract book, Kerkrade, The Netherlands, p. 115 abstr. Lea, R.G., Underwood, J., Randers, K.C., Hirte, H., Banwatt, D., Finotto, S., Ohno, I., Daya, S., Harley, C., Michel, M., Mowbray, J.F., Clark, D.A. (1995). A subset of patients with recurrent spontaneous abortion is deficient in transforming growth factor $2-producing "suppressor cells" in uterine tissue near the placental attachrnent site. Am J Reprod Immunol, 34, 52-64. Lee, CS., Gogolin-Ewens, K., Brandon, M.R. (1988). Identification of a unique lymphocyte subpopulation in the sheep uterus. Immunol, 63, 157-164. Lewis, G.S., Waterman, RA. (1983). Metabolisrn of arachidonic acid in vitro by porcine blastocysts and endometrium. Prostaglandins, 25, 87 1-880. Lin, H.,Mosmann, T.R.,Guilbert, L., Tuntipopipat, S., Wegmann, T.G. (1993). Synthesis of T helper 2-type cytokines at the matemal-fetd interface. J Immunol, 151,4562-4573. Lin. P.Y., Joag, S.V., Young, J.D.,Chang, Y.-S.,Soong, Y.-K., Kuo, T.-T.(1991). Expression of perfonn by natural kiiler cells within fnst trimester endometrium in humans. Bi01 Reprod, 45, 698-703. Linnemeyer, P.A., Pollack, S.B. (1993). Prostaglandin E2-induced changes in the phenotype, morphology, and lytic activity of IL-Zactivated natural M e r cells. J Irnmunol, 150,3747-3754. Liu, W . 4 , Hansen, P.J. (1993). Effect of the progesterone-induced serpin-like proteins of the sheep endometrium on natural-killer ce11 activity in sheep and rnice. Bi01 Reprod, 49, 10081014. Loke, Y.W., King, A., Gardner, L., Carter, N.P. (1992). Evidence for the expression of granulocyte-macrophage colony-stimulating factor receptors by human first trimester extravillous trophoblast and its response to this cytokine. J Reprod Immunol, 2 2 , 3 3 4 . Male, D., Pryce, G., Roitt, 1. (1985). Motecular andysis of induced idiotypes associated with autoanti-thyroglobulin. Mol Immunol, 22 (3), 255-263. Mathews, C.J., Searle, R.F. (1987). The role of prostaglandins in the immunosuppressive effects of supematants from adherent cells of murine decidual tissue. J Reprod Immunol, 12, 109-124. McIntyre, H.A., Faulk, W.P. (1983). Recurrent spontaneous abortion in human pregnancy: results of immunogenetical, cellular and humoral s u i e s . Am J Reprod Lmmunol, 4, 165471. Miller, D.A., Lee, A., Peiton, R.W., Chen, E.Y., Moses, H.L., Derynck, R. (1989). Murine transforming growth factor-p2 cDNA sequence and expression in adult tissues and embryos. Mol endocrinol, 3 (7), 1108-1114. Mincheva-Nilsson, L., Hammarstrom, S., Hammarstrom, M.L. (1992). Human decidual leukocytes from early pregnancy contain high numbers of gammadelta positive cells and show selective down-regulation of alloreactivity. J Imrnunol, 149, 2203-221 1. Morii, T., Nishikawa, K., Saito, S., Enornoto, M., Ito, A., Kurai, N., Shimomaya, T., Ichijo, M., Narita, M. (1993). T-ce11 receptors are expressed but down-regulated on intradecidual T lymphocytes. Am J Reprod Immunol, 29, 1-4. Mosmann, T.R., Moore, K.W. (1991). The role of IL40 in crossregulation of Th1 and Th2 responses. Immunol Today, 12,49. Mowbray, J.F., Undenvood, J.L., Jalali, G.R. (1993). Irnmunological processes of abortion. In: Chaouat, G. (ed.), Immunology of pregnancy, CRC Press, p. 23 1-244. Murray, F.A., Grifo, A.P., Parker, C.F.(1983). Increased titter size in gilts by intrauterine infusion of seminal and spem antigens before breeding. J Anim Sci, 56,895-900. Murray, M.K., Segerson, E.C.,Hansen, P.J.,Bazer, F.W., Roberts, R.M. (1987). Suppression of lymphocyte activation by a high-molecular-weight glycoprotein released from yreirnplmtation ovine and porcine conceptuses. Am J Reprod Immunol Microbiol, 14,38-44. Nakayama, E., Asano, S., Kodo, H., Miwa, S. (1985). Suppression of mixed lymphocyte reaction by cells of human first trimester pregnancy endomeûitxm. J Reprod Irnrnunol, 8 , 2 5 3 1. Noun, A., Acker, G.M., Chaouat, G., Antoine, J.C., Garabedian, M. (1989). Cells bearing granulocyte-macrophage and T lymphocyte antigens in the rat uterus before and during ovum implantation. Clin Exp Immunol, 78,494. Oksenberg, J.R., Mor-Yosef, S., Ezra, Y., Brautbar, L. (1988). Class II+ antigenspresentating cells exposed to foetal cells induced generation of suppressor cells. Am J Reprod Immunol Microbiol, 16, 151- 158. Ouellette, MA., Dubois, C.M., Bergeron, D.,Roy, R., Lambert, R.D. (1997). TGFp2 in rabbit blastocœlic fluid regulates CD4 membrane expression : possible role in the success of gestation. Am J Reprod Immunol, 37, 125-136. Pakrasi, P.L., Dey, S.K. (1982). Blastocyst is the source of prostaglandins in the implantation site in the rabbit. Prostaglandins, 24 (l), 73-77. Parhar, R.S., Yagel, S., Lala, P.K. (1989). PGE2-mediated immunosuppression by first trimester human decidual cells blocks activation of maternal leucocytes in the decidua with potential anti-trophoblast activity. Ce11 Immunol, 120,6 1. Parr, E.L., Chen, H.-L., Parr, M.B., Hunt, J.S. (1995). Synthesis and granular localization of tumor necrosis factor-alpha in activated NK cells in the pregnant mouse uterus. J Reprod Imrnunol, 28, 31-40. Parr, E.L.,Young, L.H.Y., Parr, M.B., Young, J.D.-E. (1990). Granulated metrial gland cells of pregnant mouse uterus are natural killer-like cells that contain perfonn and senne esterases. J Irnrnunol, 145, 2365-2372. Pope, W.F., First, N.L. (1985). Factors afTecting the survival of pig embryo. Theriogenology, 23 (l), 91-105. Powrie, F., Menon, S., Coffinan, R.L.(1993). Interleukin-4 and interleukin-10 synergize to inhibit ceIl-mediated imrnunity in vivo.Eur J Immunol, 23,3043-3049. Ritson, A., Bulmer, J.N. (1989). Isolation and functional studies of granulated lymphocytes in first trimester human decidua-Clin Exp h u n o l , 77,263-268. Robertson, S.A., Mayrhofer, G., Seamark, R.F. (1992). Uterhe epithelial cells synthesize granulocyte-macrophage colony-stimulating factor and interleukin-6 in pregnant and nonpregnant mice. Bi01 Reprod, 46, 1069- 1079. Robertson, S. A , Searnark, R.F. (1990). Granulocyte-macrophage colony stimulahg factor (GM-CSF) in the murine reproductive tract: stimulation by seminal factors. Reprod Fertil Dev, 2, 359-368. Robertson, S.A., Seamark, R.F. (1992). Granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF): one of a family of epithelial cell-derïved cytokines in the preimplantation uterus. Reprod Fertil Dev, 4,435-448. Rodger, J-C. (1985). Lack of a requirernent for a materna1 humoral immune response to establish or maintain successful allogeneic pregnancy. Transplantation,40,372-375. Rook, A.H., Kehrl, J.H., Wakefield, L.M., Roberts, A.B., Sporn, M.B., Burlington, D.B., Lane, H.C., Fauci, A S . (1986). Effects of transfonning growth factor f3 on the functions of naniral killer cells: depressed cytolytic activity and blunting of interferon responsiveness. J Irnmunol, 136, 39 16-3920. Rukavina, D., Rubesa, G., Gudelj, L., Haller, H., Podack, E.R. (1995). Characteristics of perforin expressing lymphocytes within the first trimester decidua of human pregnancy. Am J Reprod Immunol, 33, 394-404. Saito, S., Nishikawa, K., Moni. T., Enomoto, M., Narita, N., Motoyoshi, K., Ichijo, M. (1993). Cytokine production by CD16- ~ ~ 5 6 natural ~ * gkiller ~ cells ~ in the human early pregnancy decidua Int Immunol, 5,559. Segerson, E.C. (1988). Suppression of interleukin-2-mediated T-lymphocyte blastogenesis by ovine uterine luminal protein. Bi01 Reprod, 38,256-263. Segerson, E.C.(1995). Immunosuppressive activity of a porcine high-molecular weight uterine macromolecule is associated with transfomiing growth factor-8. J Reprod Immunol, 29,47-60. Segenon, E.C.,Gunsett, F.C.(1990). Suppression of interleukin-2 mediated T-lymphocyte blastogenesis by bovine uterine secretions. Am J Reprod h u n o l , 22, 117-123. Segerson, E.C., Gunsett, F.C.(1993). Temporal patterns of secretion of porcine uterine suppressor and stimulatory macromolecules. Theriogenology, 40,669-678. Segerson, E.C., Libby, D.W., Getz, W.R., Randel, R.D. (1984). Immunosuppressive effect of uterine secretory protein fiom Angus and Brahman cows upon lymphocytes in vitro. J Anim Sci, 59, 10474059. Segerson, E.C., Matterson, P.M., Gunsett, F.C. (1991). Endometrial T-lymphocyte subset infiltration during the ovine estous cycle and early pregnancy. J Reprod Imrnunol, 20, 221-236. Smith, R.N., Sternlicht, M., Butcher, G.W. (1982). The dloantibody response in the allogeneically pregnant rat. 1. The primary and secondary responses and detection of Ir gene control. J Immunol, 129, 77 1-776Starkey, P.M. (1991). Expression on cells of early pregnancy decidua, of the p75, IL-2 and p 145, IL-4 receptor proteins. Immunology, 73,64-70. Stewart, LJ. (1994). Granulated metrial gland cells-not part of the naturd killer ce11 lineage? J Reprod Immunol, 26, 1- 15. Tangri, S., Raghupathy, R. (1993). Expression of cytokines in placentas of mice undergoing immunologically mediated spontaneous fetai resorptions. Bi01 Reprod, 49,850-856. Tawfik, O.W., Hunt, J.S., Wood, G.W. (1986). Implication of prostaglandin E2 in soluble factor-mediated immune suppression by murine decidual cells. Am I Reprod Immun01 ~Microbiol,12, 111-1 17. Voisin, G.A. (1990). Reproduction et immunologie: rapports et apports réciproques. Immunologie de la reproduction, p. 43-90. Weber, J.A., Freeman, D.A., Vanderwall, D.K., Woods, G.L. (1991). Prostaglandin E2 secretion by oviductai transport-stage equine embryos. Biol Reprod, 45,540-543. Wegmann, T. G. (1988). Matemal T cells promote placental growth and prevent spontaneous abortion. Immunol Lett, 17, 297-302. Wegmann, T.G. (1993). Lymphohematopoietic cytokines in the placenta: their role in reproduction. In: Chaouat, G. (ed.), Immunology of pregnancy, CRC Press, p. 143-150. Wegmann, T.G., Athanassakis, I., Guilbert, L., Branch, D., Dy, M., Menu, E., Chaouat, G. (1989). The role of M-CSFand GM-CSF in fostering placental growth, fetal growth, and fetal survival. Transpl Proc, 2 1, 566-568. Whyte, A., Bacon, M., Ellis, S. (1984). A monoclonal antibody to an antigen present on the microvillous membrane of the trophectoderm of the preimplantation blastocyst of the pig. J Reprod Fert, 7 1,599-605. Wiicox, A.J. (1983). Surveillance of pregnancy loss in humans populations. Am J Indust Med, 4, 285-291. Wood, G. (1994). 1s restricted antigen presentation the explanation for fetd allograft survival? Immunol Today, 15, 15-18. Yang, W.C., Schultz, R.D.,Spano, J.S. (1987). Isolation and characterization of porcine naturd killer (NK) cells. Vet Immunol Immunopathol, 14,345-356. Yu, Z., Croy, B.A., Chapeau, C., King, G.J. (1993). Elevated endornetrial natural killer ce11 activity during early porcine pregnancy is conceptus-mediated. J Reprod Immunol, 24, 153164. Yu, Z., Croy, B.A., King, G.J. (1994). Lysis of porcine trophoblast cells by endometrial naturai killer-like effector cells ni vitro does not require interleukin-2. Bi01 Reprod, 5 1, 12791284. Zheng, L.M., Ojicus, DM., Young, J.D.E. (1993). Perforin-expressing cells during spontaneous abortion. Bi01 Reprod, 48, 10 14-1019. ANNEXE A Liquide auantoique (%, vfv) Figure 1. Pre-treatment effects of porcine allantoic fluid collected at Day 22-24, on (A) and production of GM-CSF(B) by human lymphocytes in [ 3 ~ ] t h ~ m i d i nincorporation e vitro. The lymphocytes were incubated with C o d or with ConA and allantoic fluid (final concentration 22.2%, vlv) collected on Day 22-24 (n=5). ns, p>0,05,not signifcantly different from the control (no allantoic fluid). Control AIIantoic Fluid Allantoic Fluid Figure 2: Effects of porcine aIIantoic fluid on [3~thymidineincorporation (A), the percentage of CD4 positive cells was evaluated (B) and on the CD4 membrane expression (antibody binding capacity) (C). The lymphocytes were incubated with RPMI (n=2; negative control, non-shulated (NS)), with ConA (n=2) or with ConA and dlantoic fluid (final concentration 44.496, v/v) collected on Day 22-24 (n=3) and Day 30 (n-4) of gestation. Analysis was perforrned with Beston Dickinson's LYSIS program on FACSort flowcytometer. *** pM.001. * pSO.05. significantly different fmm the control (no allantoic fluid);ns, not significanlty different from the control.